הטיפול בדו משתני משתנה מספר לוקוס-repeat (MLVA) המוצג כאן מאפשר מחקר ברזולוציה גבוהה, חזק ונייד של החיידק הפתוגני של הדג. החל מתרבויות טהורות, היישום משתמש ב-PCR מולטיפלקס ובאלקטרופורזה קפילר כדי לייצר פרופילי MLVA 10-הבסים ליישומי מטה.
Yersinia תרמילי הוא פתוגן חשוב של salmonids ברחבי העולם, אבל כלים פשוטים מתאים לחקירה אפיזוולוגית (זיהום מעקב, וכו ‘) של חיידק זה היו חסרים. משתנה Multi-לוקוס-מספר הטיפול מחזור דו-ממדי (MLVA) הטיפול היה ולכן פותחה ככלי נגיש בקלות חד משמעית ברזולוציה גבוהה הקלדה של מבודד התאושש. עבור שיטת ה-MLVA המוצגת כאן, ה-DNA מופק מתוך התרבית Y. תרמילי דגימות על ידי הרתיחה תאים חיידקיים במים, ואחריו שימוש של supernatant כתבנית עבור ה-PCR. פריימר-זוגות מיקוד עשרה משתנה-מספר חזרה טנדם (VNTR) המקום, בתוספת ברחבי הגנום Y. תרמילי , מופצים באופן שווה בין 2 5-plex התגובות PCR פועל תחת תנאי אופניים זהים. התחל הקדמי מתויג עם אחד משלושת צבעי פלורסנט. מוצרי PCR הבאים ממדוללים על ידי האלקטרופורזה בג, מדולל וחשופים לאלקטרופורזה בקפילר. מתוך הפרופילים electropherogram המתקבל, פסגות המייצגים כל אחד של המישוב VNTR הם בגודל שנקרא ומועסק לחישוב ספירות VNTR חוזר על-ידי סיליקו. פרופילי MLVA המתקבלים מעשר ספרות משמשים להפקת עצים מורחבים מינימליים המאפשרים הערכה אפיתיולוגית בניתוח אשכולות. נתוני פלט ניידים מאוד, בצורה של פרופילי MLVA מספריים, ניתן להשוות במהירות על פני מעבדות ולהציב הקשר הזמני. ההליך כולו מן המושבה התרבותית ועד להערכת אפיזוולוגית ניתן להשלים עד 48 Y. תרמילי בודד בתוך יום עבודה אחד.
משפחת ירזיניה, חיידק גראם שלילי, וחבר במשפחת ירמיהו, גורם לsalmonid ברחבי העולם1. היא מאובחנת בקלות מדגים נגועים על ידי טיפוח על סוגים רבים של התקשורת אגר, אבל עד לאחרונה, מעט ידוע לגבי מבנה האוכלוסייה ואפיזואולוגיה של Y. תרמילי ברחבי העולם ובבתי גידול שונים (מינים מארחים, וכו ‘). מערכות הקלדה קיימות עבור מערכת ההקלדה של Y. תרמילים אינן עקביות, חוסר תאימות הדדית והצעת רזולוציה אפידמיולוגית נמוכה. כמה מחקרים מולקולריים על החיידק נערכו, העסקת טכניקות כגון רצף מקום הקלדה (mlst), פעמו-שדות ג’ל אלקטרופורזה (pfge) או כל הגנום רצף (wgs) ניתוח2,3,4 ,5. עם זאת, MLST אינו מספק ברזולוציה גבוהה מספיק עבור העקיבה שגרתית זיהום, בעוד PFGE היא עבודה תובענית ומייצרת תוצאות כי הם לא ניידים בקלות על פני מעבדות. בעוד ניתוח WGS יספק החלטה כמעט האולטימטיבי, הקמתה ויישום של ניתוחים כאלה היה לקדם את היכולות הטכניות-וביואינפורמטיקה כי עדיין להישאר מוגבלים למספר קטן יחסית של מעבדות.
לוקוס-מספר משתנה מספרים ניתוח חוזר (mlva) מייצג כלי מולקולרי הקלדה פשוטה ונגישה, אשר מציעה פתרון גנטי במקרים מסוימים כמעט התאמת את הניתוח של wgs6,7. הטכניקה מבוססת על וריאציה מספר חוזר בחזרה מספר משתנה שנבחרו (VNTR) המקום, וכתוצאה מכך נתוני פלט כי הוא מאוד התחבורה, ביצוע השוואה של מבודד פרופיל לכיוון מסדי נתונים מקוונים ומעבר מעבדות ישיר. למרות mlst נשאר תקן זהב עבור הקלדה אפידמיולוגיים של פתוגנים בקטריאליים רבים, מספר גדל והולך של מחקרים לזהות כוח מפלה גבוה יותר באופן משמעותי של mlst8,9,10. פרוטוקולים מספר פורסמו גם מיקוד דגים-פתוגניים חיידקים, כגון פרנסיזילה noatunensis, edwardsiella פיסקיקידה ו renibacterium salmoninarum11,12, . שלוש עשרה
הפרוטוקול MLVA 10-המקום הציג כאן, אשר לאחרונה יצרה את הבסיס עבור האוכלוסייה הנרחבת של מחקר של Y. תרמילי 14, כרוך הפקת דנ א ממושבות אגר מעובדות, PCR ו אלקטרופורזה קפילר (לסה נ), ואחריו במורד הזרם ביישומים סיליקו. עבור כל בודד נבדק, שני מולטיפלקס בדיקות, שניהם מכילים חמישה זוגות מתויג פלואורוסקופים (6FAM, נד או ויק) כל מיקוד באזור VNTR בודדים, מופעל במקביל בתנאים זהים. לאחר האימות של ה-PCR באמצעות אלקטרופורזה (GE), מוצרי ה-PCR מדוללים לפני ניתוח CE, ופסגות המייצגות את המיפה המתאימים בגודלם מכונים בגודל של הקבצים שנוצרו באמצעות אלקטרופגרמה. יחד עם נוסחאות הספציפיות לוקוס חשבונאות עבור אי-התאמות משניים, ספציפיים לרצף בתבניות הנדידה של CE, שיחות VNTR CE מועסקים לאחר מכן לחישוב ספירות חוזרות של VNTR המשורשרים לפרופילי MLVA בעלי עשר ספרות. אלה משמשות כקלט עבור הערכות אפיזולוגיות (לדוגמה, לפי ניתוח אשכולות בדיאגרמות של עץ פורש מינימלי (MST)).
שני המגה בדיקות הציג כאן הופיעו חזק יחסית בפני איכות ה-DNA של תבנית ירודה, אבל היעדר הגברה PCR היה בכל זאת לעתים בעת שימוש בתבניות עם ריכוזי DNA גבוהה מאוד. סוגיות אלה נפתרו בקלות על ידי דילול התבניות לפני ה-PCR. שיטות אחרות עבור חילוץ DNA מאשר אחד המועסקים כאן עשוי לשמש גם (למשל, ערכות מסחריות).
למרות שחמש הגברה צפויות בכל הנוגע לתגובת ה-PCR, חמש הלהקות הבולטות באופן חזותי לא תמיד צפויות מ-GE, כמו כמה (מתויג שונה) VNTR הרוח בתוך התגובה אותה יש טווחי גודל חופפים. זמן הארכת ה-PCR הסופי של 60 דקות עשוי להיות מקוצר במידת הצורך, אך סביר להניח שיגרום להתרחשות מוגברת של פסגות מפוצלות ב-CE electropherograms העוקבות (ראה להלן). בעיקר, כמטרה של צעד ג ‘ נרל אלקטריק הוא גרידא עבור אימות איכותי של PCR הגברה, זמן ריצה, מתח ו/או ג’ל מתכון ניתן להתאים כמועדפת. אם להקות חלשות במיוחד נצפו על ידי GE, ייתכן שיהיה מומלץ להקטין את מקדם הדילול של דגימות אלה לפני לסה נ.
בעוד פרוטוקול CE המתואר כאן הופעל על מכשיר מסחרי מסוים אלקטרופורזה נימי (ראה טבלת חומרים), מערכות CE שונות עשויות להיות דרישות דוגמה שונות, אשר עשוי בתורו להנחות כמה שינויים בפרוטוקול . עיין במדריך המתאים ליצרן מערכת CE לקבלת הוראות על ריאגנטים/ציוד מתאים, כיול וכו ‘ עבור ניתוח קטע. קיימת גם אפשרות שהאמפליטים המווטים בדפוסי הניידות שנצפו במהלך CE עשויים להיות שונים, יחסית, ממערכות CE ו/או מכונות, כפי שתועד בעבר בפרוטוקולים של mlva15,16. אם הדבר מתרחש במידה שבה מושפעים ספירות החזרה של VNTR סופי (מעוגל), המשמעות היא שהמשתנים והערכים הספציפיים למיקום (טבלה 1), המשמשים לקביעת ספירות חוזרות של vntr, יש לכייל מחדש. זה כולל רגרסיה לינארית על מגרשים השוואת מידות רצף מדויק לעומת שיחות CE גודל, כפי שמתואר על ידי Gulla et al. 201814.
לפצל פסגות ופסגות מגמגם, גם פריטים ידועים ב CE מבוסס מmlva17, ניתן לצפות ב electropherograms במהלך הקריאה בגודל (איור 4). בעוד הפסגות מגמגם צריך להתעלם, השיא ארוך יותר צריך להיבחר בעקביות עבור יישומי מטה במקרה של פסגות מפוצל מופרדים על ידי זוג בסיס יחיד. יתרה מזאת, פסגות חסרות המציינות כי העדר מסוים של VNTR הוא נדיר, אך עלול להתרחש, ובמקרה כזה יש להקצות ספירה חוזרת של ‘ 0 ‘. אם התרבות ההתחלתית ממנו מופק ה-DNA אינו טהור (כלומר, מכיל יותר מסוג Y. תרמילי משנה), פסגות גבוהות מרובות המתאימות לאלולים שונים של אותו מקום/המקום יכול להיות נצפתה בעקבות CE. הזנים המשניים חייבים להתבצע ממושבות בודדות לפני הפקת ה-DNA החדשה להקלדה מחדש.
כאמור בפרוטוקול, ה-DNA תבנית עבור PCR צריך כברירת מחדל להיות מופק מתרבויות טהור של Y. תרמילי. במקרים מסוימים, עם זאת, דגימות ביצים נוזלי בדיקות חיוביות של Y. תרמילי ידי qpcr (Ct-ערכים < 27) היו בהצלחה mlva הוקלד ישירות, ללא culturing מראש, באמצעות כמות מוגברת של דנ א גנומית (מופק עם ערכת מסחרית) כתבנית. למרות שגישה זו לא נבדקה באופן מקיף ולא אומתה, היא מצביעה על הפוטנציאל של שיטת MLVA זו לבדיקת מטריצות ביולוגיות מורכבות המכילות דנ א ממגוון של אורגניזמים שונים בנוסף ל -Y. תרמילי.
הליך ההקלדה MLVA כולו הציג כאן, מ-DNA הפקת הערכה אפיזואוולוגית, ניתן להשלים יום עבודה אחד. עם זאת, מספר הדגימות הנבדקות נמצא בקשר תת-לינארי עם הזמן הנדרש להפקת DNA, PCR ו-CE, ולכן השיטה היא הרבה יותר יעילה בזמן הפעלת דגימות מרובות בו זמנית. זה אף על פי כן המקרה עבור רוב השיטות המבוססות על מעבדה, וככלי עבור הקלדה אפידמיוולוגית של Y. תרמילי, השילוב של ברזולוציה גבוהה, פשטות וניידות עושה את הדבר הזה mlva מעולה לפרוטוקולים שפורסמו בעבר4 ,5. הוא גם שימש כדי לאמת את הרלוונטיות המוגבלת אפידמיולוגיים של Y. תרמילי הקלדה14.
באמצעות מחקר מקיף מבוסס MLVA האוכלוסייה מעורבים 484 Y. תרמילי מבודד התאושש מתוך מגוון רחב של מקורות ובתי גידול (מארח דגים, סביבה, וכו ‘), ההבנה שלנו לגבי אפיזואוטיפולוגיה ואוכלוסיה בנה של פתוגן זה דג חשוב הוגדלה באופן משמעותי14. MLVA הקלדה אפשרה מעקב של שיבוטים הפיץ אנתרופוגנתית מעל עשורים, ככל הנראה באמצעות הובלה של דגים, כמו גם זיהוי של זנים סגורים מקומית. יתר על כן, בעוד כמה מתחמי שבטיים של החיידק יכול בבירור להיות מזוהה עם מחלה מארחים דגים מסוימים (הקשת פורל וסלמון אטלנטי, בהתאמה), אחרים רק התאושש ממקורות סביבתיים ו/או דגים מושפעים קלינית דגימות. תחולתה של השיטה אינה מוגבלת רק למעקב אחר זיהום, שכן היא עשויה גם לספק מידע לגבי הרלוונטיות הפוטנציאלית לפיתוח חיסונים, הערכת סיכונים ואחזקה של הביולוגיה הלאומית. הוא נמצא כרגע בשימוש פעיל במכון הווטרינרי הנורבגי ככלי לחקירת האבחונים של Y. תרמילי בחקלאות ימית.
The authors have nothing to disclose.
המחקר הנוכחי מומן על ידי קרן המחקר הנורבגי מאכלי ים, FHF (פרויקט nos. 901119 ו 901505). אנו רוצים להודות לכל התורמים של מבודד חיידקי ודגימות המשמשות במהלך פיתוח השיטה.
22°C/15°C incubator | As preferred. | NA | |
5' Labeled Primer, 10K PMOL, Desalted, Dry | Thermo Fisher Scientific | 450007 | Sequences and labelling in Table 1. Prepare working aliquouts in TE-buffer. |
Agarose, universal, peqGOLD | VWR | 732-2789P/732-2788 | Used during gel electrophoresis. |
Avant 3500xL Genetic Analyzer | Thermo Fisher Scientific | A30469 | Used for capillary electrophoresis fragment analysis. |
BioNumerics7 modules | Applied Maths | NA | Used for generating Minimum spanning trees from MLVA data. |
Centrifuge(s) | As preferred. | NA | |
Custom DNA Oligo, 25N, Desalted, Dry | Thermo Fisher Scientific | A15612 | Sequences in Table 1. Prepare working aliquouts in TE-buffer. |
DNA Gel Loading Dye (6X) | Thermo Fisher Scientific | R0611 | Loading dye used during gel electrophoresis. |
Eppendorf Safe-Lock Tubes, 1.5 mL | Eppendorf | 30120086 | Centrifuge tubes used during DNA extraction. |
Freezer | As preferred. | NA | |
Fume cupboard | As preferred. | NA | |
Gel electrophoresis system | As preferred. | NA | |
GelRed Nucleic Acid Stain, 10,000X in water | Biotium | 41003 | Fluorescent nucleic acid dye used during gel electrophoresis. |
GeneMapper Software 5 | Thermo Fisher Scientific | 4475073 | Used for reading electropherograms from capillary electrophoresis. |
GeneRuler 50 bp DNA Ladder, ready-to-use | Thermo Fisher Scientific | SM0373 | DNA ladder used during gel electrophoresis. |
GeneScan 600 LIZ dye Size Standard v2.0 | Thermo Fisher Scientific | 4408399 | Size standard used during capillary electrophoresis. |
Heating block | As preferred. | NA | |
Hi-Di Formamide | Thermo Fisher Scientific | 4311320/4440753 | Deionized formamide used during capillary electrophoresis. Prepare working aliquouts. |
Milli-Q water | NA | NA | Purified water used during PCR and capillary electrophoresis. Standard recipe; produced in-house. |
Multiplex PCR Plus Kit | Qiagen | 206151/206152 | |
PCR thermal cycler | As preferred. | NA | |
POP-7 Polymer for 3500 Dx/3500xL Dx Genetic Analyzers | Thermo Fisher Scientific | A26077/4393713/4393709 | Separation matrix used during capillary electrophoresis. |
Pure culture Yersinia ruckeri | NA | NA | E.g. cryopreserved or fresh. |
RNase-free water | Qiagen | NA | In: Multiplex PCR Plus Kit |
Tris-borate-EDTA (TBE) buffer | NA | NA | Standard recipe; produced in-house. |
Trypsine soy agar/bovine blood agar | NA | NA | Standard recipe; produced in-house. |
UV-based gel imaging/visualisation system | As preferred. | NA | |
Vortexer | As preferred. | NA |