This protocol describes a procedure for enriching ECM proteins from tissues or tumors and deglycosylating and digesting the ECM-enriched preparations into peptides to analyze their protein composition by mass spectrometry.
La matrice extracellulare (ECM) è un complesso reticolo di proteine cross-linked che offre spunti biofisici e biochimici che sono i principali regolatori della proliferazione cellulare, la sopravvivenza, la migrazione, ecc ECM svolge un ruolo importante nello sviluppo e nella diverse patologie tra cui cardio-vascolari e le malattie muscolo-scheletriche, la fibrosi e cancro. Così, che caratterizzano la composizione di ECM di tessuti normali e malati potrebbe portare alla identificazione di nuovi biomarcatori prognostici e diagnostici e potenziali bersagli terapeutici. Tuttavia, la natura stessa di proteine ECM (grandi dimensioni, reticolati e un legame covalente, fortemente glicosilata) ha reso analisi biochimiche di ECM impegnativo. Per superare questa sfida, abbiamo sviluppato un metodo per arricchire ECMs dai tessuti e tumori freschi o congelati che sfrutta l'insolubilità di proteine ECM. Descriviamo qui in dettaglio la procedura di decellularization che consiste di i sequenzialencubations a tamponi di diversa pH e concentrazioni di sale e di detersivi e che si traduce in 1) l'estrazione di intracellulare (citosolica, nucleare, membrana e citoscheletro) proteine e 2) l'arricchimento di proteine ECM. Abbiamo poi descritto come deglycosylate e digerire preparati proteici ECM arricchiti in peptidi per la successiva analisi mediante spettrometria di massa.
La matrice extracellulare (ECM) è un complesso reticolo di proteine reticolati e glicosilata che fornisce il supporto architetturale e di ancoraggio per le cellule e definisce, in parte, le proprietà biomeccaniche dei tessuti '1,2. Proteine ECM segnalano anche alle cellule sia direttamente attraverso i loro recettori (ad esempio, integrine, syndecans, etc.) o modulando fattore di crescita segnalazione 3. L'ECM fornisce quindi spunti biofisici e biochimici che sono importanti regolatori del processi cellulari quali la proliferazione, la sopravvivenza, la polarizzazione, la differenziazione, la migrazione, etc.
L'ECM svolge un ruolo chiave nella fisiologia, lo sviluppo e l'invecchiamento 4. Inoltre, diverse patologie, come le malattie cardiovascolari, la fibrosi, malattie muscolo-scheletrici, i tumori, sono causati da, o provocano alterazioni ECM. Inoltre, l'ECM contribuisce al mantenimento di nicchie staminali e identificare molecole ECM chiave tha sostegno staminalità avranno applicazione diretta in ingegneria dei tessuti e medicina rigenerativa 5. Tuttavia, nonostante la sua importanza, la ECM è rimasta, fino a tempi recenti, underexplored 6.
In silico analisi ha rivelato che la matrisome, definito come l'insieme di ECM e proteine ECM-associata, comprende i prodotti di diverse centinaia di geni sia nel umane e murine genomi 1,7,8. Tuttavia, l'insolubilità di proteine ECM ha ostacolato la caratterizzazione sistematica della composizione di matrici extracellulari in vivo di campioni normali e patologici. Abbiamo dimostrato recentemente che questo insolubilità potrebbe essere girato a vantaggio e possono essere usate per arricchire proteine ECM 8-10. Noi ed altri inoltre dimostrato che la spettrometria di massa era un metodo di scelta per caratterizzare la composizione della ECM 8 – 10, 13.
Noidescrivere qui un procedimento decellularization che consiste di incubazione sequenziali in tamponi di pH diversi e concentrazioni saline e detergente. Questa procedura comporta l'estrazione (o esaurimento) di proteine citosoliche, nucleari, di membrana e del citoscheletro e l'arricchimento di proteine ECM. Abbiamo poi descritto come digerire preparati proteici ECM arricchiti in peptidi per la successiva analisi mediante spettrometria di massa.
Utilizzando le procedure dettagliate ed illustrato, abbiamo arricchito con successo e caratterizzato da spettrometria di massa le matrici extracellulari provenienti da dieci diversi tessuti e tipi di tumore: normale polmone murino 8, umano e del colon murino 8,9, fegato umano 9, tumori colorettali umani e derivati metastasi epatiche 9, xenotrapianti melanoma 8, xenotrapianti tumorali mammarie 10, isolotti pancreatici murine e insulinomi murini (Naba et al., non pubblicati). Confronto tra le diverse matrisomes rivelato firme ECM tessutale e tumore-specifici che potrebbero ulteriormente essere usati come potenziali biomarker diagnostici o prognostici.
Crediamo che questo procedimento può essere applicato ad altri campioni senza o relativamente lievi modifiche.
Modifiche
Anche se abbiamo impiegato questa procedura esatta per arricchire la ECM da dieci tessuti e tipi di tumore 8-10, modifiche del protocollo devono essere considerati nei seguenti casi:
1) Individuazione di proteine ECM nelle frazioni intermedie.
Matrici extracellulari da tessuti diversi o tipi di tumore possono essere diversi nella loro estraibilità / insolubilità, come discusso in precedenza per la fibronectina e laminine. Ad esempio, si ritiene che la ECM di tessuti fibrotici o tessuti rimodellamento gira molto dinamico e quindi si potrebbe osservare una proporzione maggiore di proteine ECM in quei tessuti per essere più prontamente estraibili 12. A seconda della frazione in cui vengono rilevate proteine ECM, si consiglia di ridurre il tempo di incubazione della fase provocando l'estrazione delle proteine ECM o omettendo questo passo.
2) Detection di una percentuale significativa di componenti intracellulari nel pellet ECM-arricchito. In alcuni tessuti o tipi di tumore delle cellule rapporto: ECM è (tumori ad esempio, fegato, milza, non desmoplastici) particolarmente elevati. In tal caso, una contaminazione significativa della frazione ECM arricchita dalle proteine intracellulari (in particolare delle proteine citoscheletriche e / o istoni) può essere osservato. Per esaurire proteine intracellulari in modo efficiente, si consiglia di ripetere gli incubazione in tampone M e / o tampone CS (entrambi i detergenti contenenti, questo di solito impoverisce abbondanti proteine intracellulari). Un'altra alternativa sarebbe quella di utilizzare i buffer alternativi con concentrazioni più elevate di detergenti, con l'avvertenza che questo può portare al depauperamento di proteine ECM relativamente più solubili e (vedi paragrafo successivo).
3) In alternativa al utilizzando un kit commerciale.
Non è stato possibile, per ragioni di proprietà, per ottenere la composizione precisa dei buffer from il fornitore del kit di estrazione delle proteine Compartimentale. Tuttavia, abbiamo incluso nella Tabella 1 note sulla base della nostra esperienza con tamponi fatti in casa con detergente definito (NP-40, sodio desossicolato e SDS) concentrazioni di condurre estrazioni simili. Un recente studio ha inoltre evidenziato l'importanza del pH di buffer decellularization di trattenere proteine ECM 13.
Limitazioni della tecnica
Il metodo qui presentato si basa sul fatto che le proteine ECM sono intrinsecamente più insolubili della maggior parte delle proteine intracellulari. Tuttavia, il metodo descritto qui decellularization certamente estrae componenti solubili presenti nella ECM come alcuni fattori di crescita o enzimi-ECM rimodellamento. Sebbene proteine ECM-associata strettamente legati a proteine ECM sono stati rilevati dal proteomica in campioni preparati come descritto, questo metodo può essere troppo severe al profilo completamente la composizione di matrisome associataproteine.
Importanza della tecnica rispetto ad altri metodi
Il vantaggio del metodo presentato qui rispetto ad altri metodi è che può essere adattata alla natura del ECM di interesse: passaggi intermedi può essere omesso o ripetuta per prevenire la perdita di proteine ECM o aumentare l'esaurimento delle proteine contaminanti intracellulari rispettivamente. Questo metodo utilizza anche solo minime quantità di detergenti che sono risciacquato per evitare la loro interferenza con successiva preparazione peptide e spettrometria di massa. Infine, il metodo descritto qui di digerire preparati proteici ricchi di ECM in peptidi ha anche il vantaggio di non richiedere di essere proteine solubili e possono essere condotti su "grezzi" frazioni ECM-arricchito.
Metodi decellularization alternativi che utilizzano chaotropes (come guanidina cloridrato) per studiare la composizione di ECM mediante spettrometria di massa hanno been riportati in letteratura (rivisto in 14), e sono stati utilizzati in combinazione con la spettrometria di massa per caratterizzare la composizione ECM della cartilagine 15,16, cuore 17, ghiandola mammaria 18 e 19 e vascolare glomerulare 20 membrane basali.
Raccomandazioni
Metodi decellularization impiegano tripsina per digerire le cellule non devono essere utilizzate se ECM sono arricchiti per proteomica successive analisi, come tripsinizzazione si tradurrà in parziale digestione ECM e la perdita di proteine ECM e peptidi. Allo stesso modo, se digestione collagenasi dovesse essere usato per aiutare frammentazione del tessuto, avrebbe bisogno di essere monitorati attentamente provoca ECM digestione e perdita di proteine ECM e peptidi.
In soluzione contro digestione in gel? Proteine ECM sono interconnessi e altamente insolubile e, anche quando risospese in tampone 3x Laemmli (contenente 6% SDS) e 100 mm DTT, po separataOrly su gel SDS. Così in-gel digestione non è un metodo preferito.
Le future applicazioni
Vale la pena notare che, pur non discusso qui, la composizione di ciascuna delle frazioni intermedie raccolti durante la decellularization potrebbe anche essere analizzato mediante spettrometria di massa. Questo può essere particolarmente prezioso quando si studiano campioni molto piccoli (cioè, biopsie umane) oppure quando si desidera informazioni su altre frazioni cellulari.
The authors have nothing to disclose.
The authors would like to thank Drs. Amanda Del Rosario and Guillaume Carmona for critical reading of the manuscript. This work was supported by grants from the Department of Defense DOD Innovator Award (W81XWH-14-1-0240 to ROH); the National Cancer Institute (U54 CA126515/CA163109); the Broad Institute of MIT and Harvard; the Howard Hughes Medical Institute, of which ROH is an Investigator; and in part by the Support Grant from the National Cancer Institute to the Koch Institute for Integrative Cancer Research at MIT (P30-CA14051). AN received postdoctoral fellowships from the Howard Hughes Medical Institute and the Ludwig Center for Cancer Research at MIT.
Section 1 | |||
Tissue homogenizer: Bullet blender + beads | Next Advance | BB24-AU | http://www.nextadvance.com/api/index.cfm/products.info/c/421/Bullet-Blender |
Compartmental Extraction kit | Millipore | 2145 | http://www.emdmillipore.com/US/en/product/Compartment-Protein-Extraction-Kit,MM_NF-2145 |
Deoxyribonuclease I | Sigma-Aldrich | DN25 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/dn25?lang=en®ion=US |
Ribonuclease A | Qiagen | 19101 | http://www.qiagen.com/products/catalog/sample-technologies/dna-sample-technologies/plasmid-dna/rnase-a/ |
Section 3 | |||
HPLC-grade water | Sigma-Aldrich | 34877 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/34877?lang=en®ion=US |
Urea | Sigma-Aldrich | U4883 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/u4883?lang=en®ion=US |
Dithiotreitol (DTT) | Thermo Scientific | 20291 | http://www.piercenet.com/product/dithiothreitol-dtt |
Ammonium bicarbonate (NH4HCO3) | Sigma-Aldrich | 9830 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/fluka/09830?lang=en®ion=US |
Iodoacetamide | Sigma-Aldrich | A3221 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/a3221?lang=en®ion=US |
Peptide -N-Glycosidase F (PNGaseF) | New England Biolabs | P0704S | https://www.neb.com/products/p0704-pngase-f |
Endoproteinase LysC, mass spectrometry-grade | Wako | 125-05061 | http://www.wako-chem.co.jp/english/labchem/product/life/Lys-C/index.htm |
Trypsin, mass spectrometry-grade | Promega | V5111 | https://www.promega.com/products/mass-spectrometry/proteases-and-surfactants/sequencing-grade-modified-trypsin/ |
Trifluoro-acetic Acid | Sigma-Aldrich | T6508 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sial/t6508?lang=en®ion=US |
Acetonitrile, mass spectrometry-grade | Thermo Scientific | 51101 | http://www.piercenet.com/product/acetonitrile-acn-lc-ms-grade |
Desalting columns: Oasis HLB 1 cc, 10 mg Sorbent per Cartridge | Waters | 186000383 | http://www.waters.com/waters/partDetail.htm?partNumber=186000383 |