Здесь мы представляем протокол визуализации транспорта монокарбоксилатов, глюкозы и АТФ в глиальных клетках и нейронах с использованием генетически закодированных датчиков резонансной передачи энергии Фёрстера в препарате головного мозга личинки дрозофилы ex-vivo .
Высокая потребность мозга в энергии из-за электрической активности является одной из его наиболее отличительных особенностей. Этим требованиям удовлетворяет производство АТФ из глюкозы и ее метаболитов, таких как монокарбоксилаты лактат и пируват. До сих пор неясно, как регулируется этот процесс и кто является ключевыми игроками, особенно в случае с дрозофилами.
Используя генетически закодированные датчики переноса энергии резонанса Фёрстера, мы представляем простой метод измерения транспорта монокарбоксилатов и глюкозы в глиальных клетках и нейронах в препарате головного мозга личинки дрозофилы ex-vivo . Протокол описывает, как препарировать и прикрепить мозг личинки, экспрессирующий один из датчиков, к стеклянному покровному стеклу.
Мы представляем результаты целого эксперимента, в котором транспорт лактата измерялся в мозге личинок путем сбивания ранее идентифицированных монокарбоксилатных транспортеров в глиальных клетках. Кроме того, мы демонстрируем, как быстро повысить нейронную активность и отслеживать метаболитные изменения в активном мозге. Описанный метод, дающий всю необходимую информацию, может быть использован для анализа других живых тканей дрозофилы .
Мозг предъявляет высокие потребности в энергии из-за высоких затрат на восстановление ионных градиентов в нейронах, вызванных генерацией и передачей нейрональных электрических сигналов, а также синаптической передачей 1,2. Долгое время считалось, что эта высокая потребность в энергии удовлетворяется за счет непрерывного окисления глюкозы с образованиемАТФ3. Специфические транспортеры на гематоэнцефалическом барьере переносят глюкозу из крови в мозг. Постоянный уровень гликемии гарантирует, что мозг получает стабильное поступление глюкозы4. Интересно, что растущее количество экспериментальных данных свидетельствует о том, что молекулы, полученные в результате метаболизма глюкозы, такие как лактат и пируват, играют важную роль в выработке энергии клетками мозга 5,6. Тем не менее, до сих пор ведутся споры о том, насколько важны эти молекулы для производства энергии и какие клетки мозга производят илииспользуют их. Отсутствие соответствующих молекулярных инструментов с высоким временным и пространственным разрешением, необходимым для решения этой задачи, является существенной проблемой, которая помешала полностью разрешить этот спор.
Разработка и применение нескольких сконструированных флуоресцентных метаболических сенсоров привели к значительному улучшению нашего понимания того, где и как образуются и используются метаболиты, а также как возникают метаболические потоки во время базальной ивысокой активности нейронов. Генетически закодированные метаболические сенсоры, основанные на микроскопии резонансного переноса энергии Фёрстера (FRET), такие как ATeam (АТФ), FLII12Pglu700μδ6 (глюкоза), Laconic (лактат) и Pyronic (пируват), внесли свой вклад в наше понимание энергетического метаболизма мозга 10,11,12,13. Однако из-за высокой стоимости и сложного оборудования, необходимого для проведения экспериментов на живых животных или тканях, результаты в моделях позвоночных по-прежнему в основном ограничиваются клеточными культурами (глиальными клетками и нейронами).
Новое использование модели дрозофилы для выражения этих сенсоров показало, что ключевые метаболические особенности сохраняются у разных видов, и их функции могут быть легко решены с помощью этого инструмента. Что еще более важно, модель дрозофилы пролила свет на то, как глюкоза и лактат/пируват транспортируются и метаболизируются в мозге мухи, на связь между потреблением монокарбоксилатов и формированием памяти, а также на замечательную демонстрацию того, как увеличение нейронной активности и метаболического потока перекрываются 14,15,16,17 . Представленный здесь метод измерения уровней монокарбоксилатов, глюкозы и АТФ с использованием генетически закодированных сенсоров FRET, экспрессируемых в мозге личинок, позволяет исследователям узнать больше о том, как мозг дрозофилы использует энергию, которая может быть применена к мозгу других животных.
Показано, что этот метод эффективен для обнаружения лактата и глюкозы в глиальных клетках и нейронах, и что монокарбоксилатный транспортер (Часки) участвует в импорте лактата в глиальные клетки. Мы также демонстрируем простой метод изучения метаболитных изменений при повышенной активности нейронов, которые могут быть легко индуцированы применением антагониста рецептора ГАМКА . Наконец, мы показываем, что эта методология может быть использована для измерения транспорта монокарбоксилатов и глюкозы в других метаболически значимых тканях, таких как жировые тела.
Использование модели дрозофилы для изучения метаболизма мозга являетсяотносительно новым, и было показано, что она имеет больше общих характеристик с метаболизмом млекопитающих, чем ожидалось, который в основном изучался in vitro в культурах первичных нейронов или…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим всех сотрудников Sierralta Lab. Эта работа была поддержана FONDECYT-Iniciación 11200477 (AGG) и FONDECYT Regular 1210586 (JS). UAS-FLII12Pglu700μδ6 (датчик глюкозы) был любезно предоставлен Пьером-Ивом Пласе (Pierre-Yves Plaçais) и Томасом Преатом (Thomas Preat), CNRS-Paris.
Agarose | Sigma | A9539 | |
CaCl2 | Sigma | C3881 | |
CCD Camera ORCA-R2 | Hamamatsu | – | |
Cell-R Software | Olympus | – | |
CG-GAL4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 7011 | Fat body driver |
Dumont # 5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-30 | |
DV2-emission splitting system | Photometrics | – | |
Glass coverslips (25 mm diameter) | Marienfeld | 111650 | Germany |
Glucose | Sigma | G8270 | |
GraphPad Prism | GraphPad Software | Version 8,0,2 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
ImageJ software | National Institues of Health | Version 1,53t | |
KCl | Sigma | P9541 | |
LUMPlanFl 40x/0.8 water immersion objective | Olympus | – | |
Methylparaben | Sigma | H5501 | |
MgCl2 | Sigma | M1028 | |
NaCl | Sigma | S7653 | |
OK6-GAL4 | Bloomington Drosophila Stock Center | Motor neuron driver | |
Picrotoxin | Sigma | P1675S | CAUTION-Fatal if swallowed |
Poly-L-lysine | Sigma | P4707 | |
Propionic Acid | Sigma | P1386 | |
Repo-GAL4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 7415 | Glial cell driver (all) |
Sodium Lactate | Sigma | 71718 | |
Sodium pyruvate | Sigma | P2256 | |
Spinning Disk fluorescence Microscope BX61WI | Olympus | – | |
Sucrose | Sigma | S0389 | |
Trehalose | US Biological | T8270 | |
UAS-AT1.03NL | Kyoto Drosophila Stock Center | 117012 | ATP sensor |
UAS-Chk RNAi GD1829 | Vienna Drosophila Resource Center | v37139 | Chk RNAi line |
UAS-FLII12Pglu700md6 | Bloomington Drosophila Stock Center | 93452 | Glucose sensor |
UAS-GCaMP6f | Bloomington Drosophila Stock Center | 42747 | Calcium sensor |
UAS-Laconic | Sierralta Lab | – | Lactate sensor |
UAS-Pyronic | Pierre Yves Placais/Thomas Preat | – | CNRS-Paris |
UMPlanFl 20x/0.5 water immersion objective | Olympus | – |