Summary

Visualização de monocarboxilatos e outros metabólitos relevantes no cérebro de larvas ex vivo de Drosophila usando sensores codificados geneticamente

Published: October 27, 2023
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Summary

Aqui apresentamos um protocolo para visualizar o transporte de monocarboxilatos, glicose e ATP em células gliais e neurônios usando sensores baseados em transferência de energia de ressonância de Förster codificados geneticamente em uma preparação cerebral ex-vivo de larvas de Drosophila .

Abstract

As altas necessidades energéticas dos cérebros devido à atividade elétrica são uma de suas características mais distintivas. Esses requisitos são atendidos pela produção de ATP a partir da glicose e seus metabólitos, como os monocarboxilatos lactato e piruvato. Ainda não está claro como esse processo é regulamentado ou quem são os principais atores, particularmente em Drosophila.

Usando sensores baseados em transferência de energia de ressonância de Förster codificados geneticamente, apresentamos um método simples para medir o transporte de monocarboxilatos e glicose em células gliais e neurônios em uma preparação cerebral ex-vivo de larvas de Drosophila . O protocolo descreve como dissecar e aderir um cérebro larval expressando um dos sensores a uma lamínula de vidro.

Apresentamos os resultados de um experimento inteiro em que o transporte de lactato foi medido em cérebros de larvas derrubando transportadores monocarboxilatos previamente identificados em células gliais. Além disso, demonstramos como aumentar rapidamente a atividade neuronal e rastrear alterações de metabólitos no cérebro ativo. O método descrito, que fornece todas as informações necessárias, pode ser usado para analisar outros tecidos vivos de Drosophila .

Introduction

O cérebro apresenta elevadas necessidades energéticas devido ao alto custo de restauração de gradientes iônicos em neurônios causados pela geração e transmissão de sinais elétricos neuronais, bem como pela transmissão sináptica 1,2. Há muito se pensa que essa alta demanda energética é atendida pela oxidação contínua da glicose para produzir ATP3. Transportadores específicos na barreira hematoencefálica transferem a glicose no sangue para o cérebro. Níveis glicêmicos constantes garantem que o cérebro receba um suprimento constante de glicose4. Curiosamente, crescentes evidências experimentais sugerem que moléculas derivadas do metabolismo da glicose, como o lactato e o piruvato, desempenham um papel importante na produção de energia das células cerebrais 5,6. No entanto, ainda há algum debate sobre a importância dessas moléculas para a produção de energia e quais células do cérebro as produzem ou utilizam 7,8. A falta de ferramentas moleculares apropriadas com a alta resolução temporal e espacial necessárias para esta tarefa é uma questão significativa que tem impedido que esta controvérsia seja completamente resolvida.

O desenvolvimento e a aplicação de vários sensores metabólicos fluorescentes projetados resultaram em um aumento notável em nossa compreensão de onde e como os metabólitos são produzidos e usados, bem como como os fluxos metabólicos ocorrem durante a atividade neuronal basal e alta9. Sensores metabólicos codificados geneticamente, baseados na microscopia de transferência de energia por ressonância de Förster (FRET), como ATeam (ATP), FLII12Pglu700μδ6 (glicose), lacônico (lactato) e pirônico (piruvato), têm contribuído para o entendimento do metabolismo energético cerebral 10,11,12,13. No entanto, devido aos altos custos e equipamentos sofisticados necessários para a realização de experimentos em animais vivos ou tecidos, os resultados em modelos de vertebrados ainda são primariamente limitados a culturas de células (células gliais e neurônios).

O uso emergente do modelo de Drosophila para expressar esses sensores revelou que as principais características metabólicas são conservadas em todas as espécies e sua função pode ser facilmente abordada com esta ferramenta. Mais importante, o modelo de Drosophila lançou luz sobre como a glicose e o lactato/piruvato são transportados e metabolizados no cérebro das moscas, a ligação entre o consumo de monocarboxilato e a formação da memória, e a notável demonstração de como aumentos na atividade neural e fluxo metabólico se sobrepõem 14,15,16,17. O método apresentado aqui para medir os níveis de monocarboxilato, glicose e ATP usando sensores FRET codificados geneticamente expressos no cérebro da larva permite que os pesquisadores aprendam mais sobre como o cérebro de Drosophila usa energia, que pode ser aplicada aos cérebros de outros animais.

Mostramos que este método é eficaz na detecção de lactato e glicose em células gliais e neurônios, e que um transportador monocarboxilato (Chaski) está envolvido na importação de lactato para as células gliais. Também demonstramos um método simples para estudar as alterações dos metabólitos durante o aumento da atividade neuronal, que pode ser facilmente induzido pela aplicação em banho de um antagonista do receptorGABA A . Finalmente, mostramos que esta metodologia pode ser usada para medir o transporte de monocarboxilato e glicose em outros tecidos metabolicamente significativos, como corpos adiposos.

Protocol

1. Manutenção de cepas volantes e sincronização larval Para a realização desses experimentos, utilizaram-se culturas de moscas criadas a 25 °C em alimento padrão de Drosophila composto por 10% de levedura, 8% de glicose, 5% de farinha de trigo, 1,1% de ágar, 0,6% de ácido propiônico e 1,5% de metilparabeno. Para seguir este protocolo, use as seguintes linhas: w1118 (fundo de controle experimental), OK6-GAL4 (driver para neurônios motores), repo…

Representative Results

Por até 1 h, esse procedimento permite a fácil medição de alterações intracelulares na fluorescência de sensores de monocarboxilato e glicose. Como mostrado na Figura 4, sensores lacônicos tanto nas células gliais quanto nos neurônios motores respondem a 1 mM de lactato em uma taxa semelhante no início do pulso, mas os neurônios motores atingem um aumento maior em relação à linha de base durante o pulso de 5 min, como demonstrado anteriormente17. Essa c…

Discussion

O uso do modelo de Drosophila para o estudo do metabolismo cerebral é relativamente novo26, e tem sido demonstrado que ele compartilha mais características com o metabolismo de mamíferos do que o esperado, o que tem sido estudado principalmente in vitro em culturas de neurônios primários ou fatias cerebrais. Drosophila se destaca em experimentos in vivo graças à bateria de ferramentas genéticas e sensores codificados geneticamente disponíveis que permit…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a todos os membros do Sierralta Lab. Este trabalho foi apoiado pela FONDECYT-Iniciación 11200477 (para AGG) e FONDECYT Regular 1210586 (para JS). UAS-FLII12Pglu700μδ6 (sensor de glicose) foi gentilmente doado por Pierre-Yves Plaçais e Thomas Preat, CNRS-Paris.

Materials

Agarose Sigma A9539
CaCl2 Sigma C3881
CCD Camera ORCA-R2 Hamamatsu
Cell-R Software Olympus
CG-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center 7011 Fat body driver
Dumont # 5 Forceps Fine Science Tools 11252-30
DV2-emission splitting system Photometrics
Glass coverslips (25 mm diameter) Marienfeld 111650 Germany
Glucose Sigma G8270
GraphPad Prism GraphPad Software Version 8,0,2
HEPES Sigma H3375
ImageJ software National Institues of Health Version 1,53t
KCl Sigma P9541
LUMPlanFl 40x/0.8 water immersion objective Olympus
Methylparaben Sigma H5501
MgCl2 Sigma M1028
NaCl Sigma S7653
OK6-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center Motor neuron driver
Picrotoxin Sigma P1675S CAUTION-Fatal if swallowed
Poly-L-lysine Sigma P4707
Propionic Acid Sigma P1386
Repo-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center 7415 Glial cell driver (all)
Sodium Lactate Sigma 71718
Sodium pyruvate Sigma P2256
Spinning Disk fluorescence Microscope BX61WI Olympus
Sucrose Sigma S0389
Trehalose US Biological T8270
UAS-AT1.03NL  Kyoto Drosophila Stock Center 117012 ATP sensor
UAS-Chk RNAi GD1829 Vienna Drosophila Resource Center v37139 Chk RNAi line
UAS-FLII12Pglu700md6  Bloomington Drosophila Stock Center 93452 Glucose sensor
UAS-GCaMP6f  Bloomington Drosophila Stock Center 42747 Calcium sensor
UAS-Laconic Sierralta Lab Lactate sensor
UAS-Pyronic Pierre Yves Placais/Thomas Preat CNRS-Paris
UMPlanFl 20x/0.5 water immersion objective Olympus

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González-Gutiérrez, A., Gaete, J., Esparza, A., Toledo, J., Köhler-Solis, A., Sierralta, J. Visualizing Monocarboxylates and Other Relevant Metabolites in the Ex Vivo Drosophila Larval Brain Using Genetically Encoded Sensors. J. Vis. Exp. (200), e65846, doi:10.3791/65846 (2023).

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