Summary

遺伝子コードセンサーを用いた ex vivoショウジョウバエ 幼虫脳におけるモノカルボン酸塩およびその他の関連代謝産物の可視化

Published: October 27, 2023
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Summary

ここでは、 ex-vivoショウジョウバエ の幼虫の脳調製において、遺伝的にコードされたフェルスター共鳴エネルギー伝達ベースのセンサーを使用して、グリア細胞およびニューロンにおけるモノカルボン酸塩、グルコース、およびATPの輸送を視覚化するプロトコルを提示します。

Abstract

電気的活動による脳の高いエネルギー要件は、脳の最も際立った特徴の1つです。これらの要件は、グルコースおよび乳酸モノカルボン酸塩およびピルビン酸塩などのその代謝産物からのATPの産生によって満たされる。このプロセスがどのように規制されているのか、特にショウジョウバエでは、誰が主要なプレーヤーなのかはまだ不明です。

遺伝的にコードされたフェルスター共鳴エネルギー移動ベースのセンサーを使用して、 ex-vivoショウジョウバエ 幼虫の脳調製物におけるグリア細胞およびニューロンにおけるモノカルボン酸塩およびグルコースの輸送を測定するための簡単な方法を提示します。このプロトコルでは、センサーの1つを発現している幼虫の脳を解剖し、ガラスのカバースリップに接着する方法を説明しています。

本稿では、幼虫の脳において、グリア細胞において同定されたモノカルボン酸トランスポーターをノックダウンすることにより、乳酸輸送を測定した実験全体の結果を提示する。さらに、神経細胞の活動を急速に増加させ、活動脳の代謝物の変化を追跡する方法を実証します。すべての必要な情報を提供する記載の方法は、他の ショウジョウバエ の生体組織を分析するために使用することができる。

Introduction

脳は、神経細胞の電気信号の生成と伝達、およびシナプス伝達によって引き起こされるニューロンのイオン勾配を回復するためのコストが高いため、高いエネルギー要件を持っています1,2。この高いエネルギー需要は、グルコースの連続的な酸化によって満たされ、ATP3を生成すると長い間考えられてきました。血液脳関門の特定のトランスポーターは、血液中のグルコースを脳に伝達します。一定のグリセミックレベルは、脳がグルコース4の安定した供給を受けることを保証します。興味深いことに、乳酸やピルビン酸などのグルコース代謝に由来する分子が、脳細胞のエネルギー産生に重要な役割を果たしていることを示唆する実験的証拠が増えています5,6。しかし、これらの分子がエネルギー生産にとってどれほど重要であるか、そして脳内のどの細胞がそれらを生成または使用するかについては、まだいくつかの議論があります7,8。この課題に必要な高い時間的・空間的分解能を備えた適切な分子ツールの欠如は、この論争を完全に解決することを妨げている重要な問題です。

いくつかの人工蛍光代謝センサーの開発と応用により、代謝産物がどこでどのように生成され、使用されるか、および基礎および高ニューロン活動中に代謝フラックスがどのように発生するかについての理解が著しく向上しました9。ATeam(ATP)、FLII12Pglu700μδ6(グルコース)、ラコニック(乳酸)、ピロニック(ピルビン酸)などのフェルスター共鳴エネルギー移動(FRET)顕微鏡に基づく遺伝的にコードされた代謝センサーは、脳のエネルギー代謝の理解に貢献しています10,11,12,13しかし、生きた動物や組織で実験を行うには高いコストと高度な機器が必要であるため、脊椎動物モデルの結果は、主に細胞培養(グリア細胞とニューロン)に限定されています。

ショウジョウバエモデルを用いてこれらのセンサーを発現させることで、主要な代謝的特徴が種を超えて保存されており、その機能にこのツールで簡単に対処できることが明らかになりました。さらに重要なことに、ショウジョウバエモデルは、グルコースと乳酸/ピルビン酸がハエの脳内でどのように輸送および代謝されるか、モノカルボン酸の消費と記憶形成の関連性、および神経活動と代謝流束の増加がどのように重なるかの驚くべき実証に光を当てました14,15,16,17.幼虫の脳に発現する遺伝的にコードされたFRETセンサーを用いて、モノカルボン酸、グルコース、ATPレベルを測定するために今回紹介した方法により、研究者はショウジョウバエの脳がエネルギーをどのように使用しているかについてさらに学ぶことができ、それを他の動物の脳に適用することができます。

本手法がグリア細胞や神経細胞の乳酸やグルコースの検出に有効であること、グリア細胞への乳酸の取り込みにモノカルボン酸トランスポーター(Chaski)が関与していることを明らかにしました。また、GABAA 受容体拮抗薬の浴中塗布によって容易に誘導できる、神経活動の増加中の代謝物の変化を研究するための簡単な方法も示します。最後に、この方法論を使用して、脂肪体などの他の代謝的に重要な組織におけるモノカルボン酸およびグルコース輸送を測定できることを示します。

Protocol

1.ハエのひずみ維持と幼虫の同期 これらの実験を行うには、酵母10%、グルコース8%、小麦粉5%、寒天1.1%、プロピオン酸0.6%、メチルパラベン1.5%からなる標準的な ショウジョウバエ の餌で25°Cで飼育したハエ培養物を使用します。 このプロトコルに従うには、次の行を使用します: w1118 (実験的制御バックグラウンド)、OK6-GAL4(運動ニューロン用ド…

Representative Results

この手順により、最大1時間、モノカルボン酸およびグルコースセンサーの蛍光の細胞内変化を簡単に測定できます。 図4に示すように、グリア細胞と運動ニューロンの両方のラコニックセンサーは、パルスの開始時に1mMの乳酸に同様の速度で応答しますが、運動ニューロンは、以前に実証されたように、5分間のパルス中にベースラインよりも高い増加に達します<sup clas…

Discussion

ショウ ジョウバエ モデルを脳代謝の研究に用いるのは比較的新しいことであり26、哺乳類の代謝と予想以上に多くの特徴を共有することが示されており、これは主に初代ニューロン培養または脳スライスで in vitro で研究されてきた。 ショウジョウバエ は、一連の遺伝的ツールと遺伝的にコード化されたセンサーのおかげで、研究者が誘発された活動や…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Sierralta Labのメンバーの皆様に感謝いたします。この研究は、FONDECYT-Iniciación 11200477 (AGGへ) と FONDECYT Regular 1210586 (JSへ) の支援を受けました。UAS-FLII12Pglu700μδ6 (グルコースセンサー) は、CNRS-ParisのPierre-Yves Plaçais氏とThomas Preat氏のご厚意により寄贈されました。

Materials

Agarose Sigma A9539
CaCl2 Sigma C3881
CCD Camera ORCA-R2 Hamamatsu
Cell-R Software Olympus
CG-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center 7011 Fat body driver
Dumont # 5 Forceps Fine Science Tools 11252-30
DV2-emission splitting system Photometrics
Glass coverslips (25 mm diameter) Marienfeld 111650 Germany
Glucose Sigma G8270
GraphPad Prism GraphPad Software Version 8,0,2
HEPES Sigma H3375
ImageJ software National Institues of Health Version 1,53t
KCl Sigma P9541
LUMPlanFl 40x/0.8 water immersion objective Olympus
Methylparaben Sigma H5501
MgCl2 Sigma M1028
NaCl Sigma S7653
OK6-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center Motor neuron driver
Picrotoxin Sigma P1675S CAUTION-Fatal if swallowed
Poly-L-lysine Sigma P4707
Propionic Acid Sigma P1386
Repo-GAL4 Bloomington Drosophila Stock Center 7415 Glial cell driver (all)
Sodium Lactate Sigma 71718
Sodium pyruvate Sigma P2256
Spinning Disk fluorescence Microscope BX61WI Olympus
Sucrose Sigma S0389
Trehalose US Biological T8270
UAS-AT1.03NL  Kyoto Drosophila Stock Center 117012 ATP sensor
UAS-Chk RNAi GD1829 Vienna Drosophila Resource Center v37139 Chk RNAi line
UAS-FLII12Pglu700md6  Bloomington Drosophila Stock Center 93452 Glucose sensor
UAS-GCaMP6f  Bloomington Drosophila Stock Center 42747 Calcium sensor
UAS-Laconic Sierralta Lab Lactate sensor
UAS-Pyronic Pierre Yves Placais/Thomas Preat CNRS-Paris
UMPlanFl 20x/0.5 water immersion objective Olympus

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González-Gutiérrez, A., Gaete, J., Esparza, A., Toledo, J., Köhler-Solis, A., Sierralta, J. Visualizing Monocarboxylates and Other Relevant Metabolites in the Ex Vivo Drosophila Larval Brain Using Genetically Encoded Sensors. J. Vis. Exp. (200), e65846, doi:10.3791/65846 (2023).

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