Summary

Un modelo de cultivo celular para estudiar el papel de las interacciones de neuronas y glia en isquemia

Published: November 14, 2020
doi:

Summary

Aquí, presentamos un enfoque simple utilizando medios de cultivo específicos que permiten el establecimiento de culturas enriquecidas con neuronas y astrocitos, o cultivos de neurona-glia de la corteza embrionaria, con alto rendimiento y reproducibilidad.

Abstract

El accidente cerebrovascular isquémico es una condición clínica caracterizada por hipoperfusión del tejido cerebral, que conduce a la privación de oxígeno y glucosa, y la consiguiente pérdida neuronal. Numerosas pruebas sugieren que la interacción entre las células gliales y neuronales ejerce efectos beneficiosos después de un evento isquémico. Por lo tanto, para explorar posibles mecanismos de protección, es importante desarrollar modelos que permitan estudiar las interacciones neurona-glia en un entorno isquémico. Aquí presentamos un enfoque sencillo para aislar astrocitos y neuronas de la corteza embrionaria de ratas, y que mediante el uso de medios de cultivo específicos, permite el establecimiento de cultivos enriquecidos con neuronas o astrocitos o cultivos de neurona-glia con alto rendimiento y reproducibilidad.

Para estudiar la conversación cruzada entre astrocitos y neuronas, proponemos un enfoque basado en un sistema de co-cultivo en el que las neuronas cultivadas en cubrelips se mantienen en contacto con una monocapa de astrocitos chapadas en placas multipocillos. Las dos culturas se mantienen separadas por pequeñas esferas de parafina. Este enfoque permite la manipulación independiente y la aplicación de tratamientos específicos a cada tipo de célula, lo que representa una ventaja en muchos estudios.

Para simular lo que ocurre durante un accidente cerebrovascular isquémico, los cultivos se someten a un protocolo de privación de oxígeno y glucosa. Este protocolo representa una herramienta útil para estudiar el papel de las interacciones neurona-glia en el accidente cerebrovascular isquémico.

Introduction

Según datos de la Organización Mundial de la Salud, alrededor de 5,5 millones de personas mueren cada año a causa del accidente cerebrovascular isquémico1. Esta condición se caracteriza por la interrupción del flujo sanguíneo a una determinada región cerebral, lo que resulta en una pérdida reversible o irreversible en el suministro de oxígeno y nutrientes al tejido, que altera la función tisular y conduce a la disfunción mitocondrial, desregulación del calcio, excitotoxicidad glutamato, inflamación y pérdida celular2,,3.

Aparte de las células vasculares, las células neuronales y gliales están involucradas en la fisiopatología del accidente cerebrovascular isquémico4. En particular, los astrocitos son esenciales para el mantenimiento de las neuronas y recientemente se demostró que desempeñan un papel crítico en la respuesta a la lesión isquémica5. Este tipo de célula glial realiza funciones de soporte estructural, defensa contra el estrés oxidativo, síntesis de neurotransmisores, estabilización de la comunicación célula-célula, entre otros6. Junto con las neuronas, los astrocitos juegan un papel directo en la transmisión sináptica, regulando la liberación de moléculas como el trifosfato de adenosina, el ácido gamma-aminobutírico y el glutamato7. Parte de la lesión inducida por la isquemia es causada por la liberación excesiva de glutamato y su acumulación en la hendidura sináptica, lo que conduce a la desactivación excesiva de los receptores de N-metil-D-aspartato, activando cascadas de señalización aguas abajo, resultando en última instancia en excitotoxicidad8. Dado que los astrocitos son capaces de eliminar el glutamato de la hendidura sináptica y convertirlo en glutamina, son cruciales en la defensa contra la excitotoxicidad, ejerciendo así un efecto neuroprotector sobre la isquemia. Estas células también juegan un papel en la neuroinflamación inducida por isquemia. Después del insulto isquémico, los astrocitos activados sufren cambios morfológicos (hipertrofia), proliferan y muestran un aumento en la expresión de la proteína ácida fibribrinaria glial (GFAP). Pueden volverse reactivas (astrogliosis), liberando citoquinas proinflamatorias como el factor de necrosis tumoral-α, interleucina-1 e interleucina-1o, y produciendo radicales libres, incluyendo óxido nítrico y superóxido, que a su vez pueden inducir la muerte neuronal9,,10. Por el contrario, los astrocitos reactivos también pueden reproducir un efecto neuroprotector, ya que liberan citoquinas antiinflamatorias, como la transformación del factor de crecimiento β, que se regula al al al ras detrás del accidentecerebrovascular 11. Además, pueden generar una cicatriz glial, que puede limitar la regeneración tisular mediante la inhibición de la brotación axonal; sin embargo, esta cicatriz glial puede aislar el sitio de la lesión del tejido viable, evitando así una onda en cascada de daño tisular incontrolado12,13.

Por lo tanto, es imperativo establecer modelos que permitan estudiar las interacciones de la neurona-glia bajo una lesión isquémica con el fin de encontrar estrategias terapéuticas que limiten o reviertan los efectos de la lesión isquémica. En comparación con otros modelos utilizados para estudiar lesiones isquémicas, a saber, los modelos in vivo 14,15,16, cultivos organotípicos17,18,19 y rebanadas cerebrales agudas20,21,22, cultivos de células primarias son menos complejos, lo que hace posible el estudio de las contribuciones individuales de cada tipo de célula en la fisiopatología de los accidentes cerebrovasculares isquémicos y cómo cada tipo de célula responde posible a las metas terapéuticas posibles. Típicamente, con el fin de estudiar las interacciones entre cultivos enriquecidos con neuronas y cultivos enriquecidos con astrocitos, las neuronas y células gliales de origen posnatal se utilizan23,,24, o células gliales postnatales y neuronas embrionarias25,,26. Aquí se propone un enfoque simple para establecer cultivos enriquecidos con neuronas o astrocitos y cultivos de neurona-glia del mismo tejido. Estas células primarias se obtienen de corteza embrionaria de rata, una región frecuentemente afectada por el accidente cerebrovascular27,,28. Además, la disociación del tejido se realiza sólo mediante un procedimiento mecánico. Por lo tanto, este protocolo permite aislar las células en la misma etapa de desarrollo, de una manera rápida y económica, y con alto rendimiento y reproducibilidad.

La conversación cruzada entre astrocitos y neuronas se puede explorar utilizando un sistema de co-cultivo en el que las neuronas cultivadas en cubreobjetos se mantienen en contacto con una monocapa de astrocitos sembrados en placas multipocillos. Se pueden utilizar pequeñas esferas de parafina para garantizar la separación de los dos cultivos celulares. Este enfoque permite la manipulación independiente de cada tipo de celda antes de que se entren en contacto. Por ejemplo, es posible silenciar un gen específico en los astrocitos y ver cómo puede influir en la vulnerabilidad neuronal o la protección contra el daño inducido por isquémica. Un método establecido para inducir condiciones isquémicas in vitro es la privación de oxígeno y glucosa (OGD)3, que consiste en reemplazar la atmósfera regular (95% aire y 5% CO2)por una atmósfera anóxica (95% N2 y 5% CO2), asociada con la omisión de glucosa.

El método descrito es adecuado para estudiar las interacciones entre neuronas y astrocitos en el contexto del accidente cerebrovascular isquémico, de una manera simple, rápida, reproducible y económica.

Protocol

Todos los animales utilizados fueron criados en el Centro de Investigación Científica de la Salud CICS-UBI de acuerdo con los requisitos éticos nacionales para la investigación animal y con el Convenio Europeo para la Protección de los Animales Vertebrados utilizados para fines experimentales y otros fines científicos (Directiva 2010/63/UE). 1. Cultivo de la corteza primaria de la corteza de embriones de rata Preparación de medios culturales Preparar el medio neurobasa…

Representative Results

Para caracterizar los cultivos, la inmunocitoquímica para evaluar el número de células que expresaron GFAP o MAP2, se realizaron marcadores ampliamente utilizados de astrocitos y neuronas (Figura 2), en cada tipo de cultivo cortical. Este análisis reveló que los cultivos enriquecidos con astrocitos presentaban el 97% de las células que expresaban GFAP (Figura 2A). En cuanto al cultivo enriquecido con neuronas, el 78% de las células expresaron MAP2, el 4% …

Discussion

El método aquí descrito consiste en el aislamiento de astrocitos y neuronas del tejido cortical embrionario de rata, permitiendo el establecimiento de cultivos enriquecidos con neuronas o astrocitos o cultivos de neurona-glia. Fue adaptado de un estudio previo de nuestro grupo5,donde se describió el aislamiento de las neuronas corticales-glia y los cultivos embrionarios enriquecidos con neuronas y se caracterizaron los dos cultivos. Usando estas culturas, Roque et al. encontraron que los astroc…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Los autores reconocen el apoyo de financiación de la Fundación para la Ciencias y la Tecnología a través de los Proyectos UIDB/00709/2020, POCI-01-0145-FEDER-029311 y la beca SFRH/BD/135936/2018 a JP, por ”Programa Operacional do Centro, Centro 2020″ a través del proyecto CENTRO-01-0145-FEDER-000013 y financiación a la Plataforma PPBI-Portugués de BioImaging a través del Proyecto POCI-01-0145-FEDER-022122.

Materials

24 -well culture plates Thermo Fischer Scientific 142475
95% N2/5% CO2 gas cylinder ArLíquido
Anti-mouse conjugated to Alexa Fluor 488 Invitrogen A11001 1/1000 dilution; incubation period – 1 h at room temperature
Anti-rabbit conjugated to Alexa Fluor 546 Invitrogen A11010 1/1000 dilution; incubation period – 1 h at room temperature
B27 supplement (50x) Gibco 17504-044
Dako Fluorescence Mounting Medium Dako S3023
D-glucose anhydrous Fisher Scientific G/0450/60 3.4 g/L
Epifluorescence microscope Zeiss AxioObserver Z1x 63x objective
Fetal Bovine Serum (FBS) Biochrom S0615 10%
Gentamicin Sigma-Aldrich G1272 120 µg/mL
Glutamate Sigma-Aldrich G8415 25µM
Glutamine Sigma-Aldrich G3126 0.5 mM
Hoechst 33342 Invitrogen H1399 2 µM; incubation period – 10 min at room temperature
Hypoxia incubation chamber Stemcell Technologies 27310 Chamber used for OGD induction
Insulin from bovine pancreas Sigma-Aldrich I5500 5 mg/L
Ketamine Sigma-Aldrich K-002 87.5 mg/Kg
Minimum Essential Medium Eagle medium Sigma-Aldrich M0268 warm up to 37 °C before use
Mouse Anti-MAP2 Santa Cruz Biotechnology Sc-74421 1/500 dilution; incubation period overnight at 4 °C
Neurobasal medium Gibco 21103-049 warm up to 37 °C before use
Paraffin pastilles for histology Sigma-Aldrich 1.07164 Solidification point 56-58°C
Paraformaldehyde Sigma -Aldrich P6148 4% in PBS
Penicilin/Streptomycin Biochrom A 2213 penicillin (12U/mL) /streptomycin (12µg/mL)
Poly-D-lysine Sigma-Aldrich P1024
Rabbit Anti-GFAP DAKO Z0334 1/2000 dilution; incubation period overnight at 4 °C
Sodium hydrogen carbonate Fisher Scientific S/4240/60 2.2g/L
Xylazine Sigma-Aldrich X1126 12 mg/Kg

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Gava-Junior, G., Roque, C., Mendes-Oliveira, J., Bernardino, A. C., Serrenho, I., Pires, J. P., Baltazar, G. A Cell Culture Model for Studying the Role of Neuron-Glia Interactions in Ischemia. J. Vis. Exp. (165), e61388, doi:10.3791/61388 (2020).

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