Мы представляем протокол для структурного и композиционного анализа природных устной биопленки из ортодонтических аппаратов с<em> На месте</em> Гибридизации (FISH) и конфокальной микроскопии лазерного сканирования (CLSM). Устные образцы биопленки были собраны из небных расширителей, очищая акриловой смолы отслаивается их поверхности и направлять их для молекулярных обработки.
Конфокальной микроскопии лазерного сканирования (CLSM) природных гетерогенных биопленки сегодня способствует широкий спектр окраски техники, одним из которых является флуоресценции в гибридизация (FISH). 1,2 Мы провели пилотное исследование, в котором образцы устного биопленки собранной со стационарных ортодонтические аппараты (небные расширители) окрашивали по FISH, цель которого оценить трехмерной организации природного биопленки и налета накопления. 3,4 FISH создает возможность для окрашивания клеток в их родной среде биопленки с помощью флуоресцентно меченного 16S рРНК-таргетинга зондов. 4-7,19 По сравнению с альтернативными методами, как иммунофлуоресцентного маркировке, это недорогой, точный и простой маркировки техники для исследования различных групп бактерий в смешанных консорциумов биопленки. 18,20 генеральный зондами, которые связываются с эубактерий ( EUB338 + + EUB338II EUB338III; далее EUBmix), 8-10 Firmicutes (LGC354 переменного тока;. LGCmix далее), 9,10 и Bacteroidetes (Bac303) 11 Кроме того, специфические зонды связывания с стрептококками (MUT590) 12,13 и Porphyromonas gingivalis (POGI) 13,14 использовались . Чрезвычайной твердости поверхности материалов, используемых (из нержавеющей стали и акриловые смолы) заставила нас искать новые способы подготовки биопленки. Как эти поверхностные материалы не могут быть легко резать замораживающий микротом, различные методы отбора проб были исследованы получить нетронутыми устной биопленки. Наиболее действенным из этих подходов, представленные в этой связи. Малый хлопья биопленки несущих акриловые смолы соскабливают стерильным скальпелем, стараясь не повредить структуру биопленки. Пинцет были использованы для сбора биопленки из стальных поверхностей. Собранные образцы были установлены и помещены непосредственно на polysine покрытием слайды стекло. FISH была выполнена непосредственно на эти слайды с м зондовentioned выше. Различные протоколы FISH были объединены и изменены, чтобы создать новый протокол, который был прост в обращении. 5,10,14,15 Впоследствии образцы были проанализированы с помощью конфокальной микроскопии лазерного сканирования. Известный конфигураций 3,4,16,17 могут быть визуализированы, в том числе грибов стиле формирований и групп кокковые бактерии проникнут каналов. Кроме того, бактериальный состав этих типичных структур биопленки, были проанализированы и 2D-и 3D-изображений, созданных.
Описанный здесь протокол является весьма реальный подход к образованию пятен биопленки собраны из жестких материалов. Отбор проб и гибридизации наиболее важных шагов. Во время отбора проб, необходимо позаботиться, что ломтики достаточной толщины собираются для того, чтобы биопленки структура остается без изменений. Во время гибридизации, важно, чтобы избежать чрезмерных колебаний температуры, что позволяет избежать неспецифического связывания, или потеря обязательными, из флуоресцентно меченых зондов. Эта рыба протокол изящный метод, чтобы окрасить нормальным гетерогенных биопленки прямо на стеклах, не нарушая его состав. Слайды могут быть немедленно использованы для микроскопии без необходимости перехода образца в очередной раз. Таким образом, улучшение по сравнению с окрашиванием в трубах достигается за счет меньшей поперечной силы, применяемых к биопленки. Ломтики> 50 мкм могут быть подготовлены и исследованы в такой форме.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана гигиены Фонды медицинского университета Граца. Все испытуемые дали свое информированное согласие. Институциональные одобрения протокола исследования была получена из Медицинского университета Граца.
Oligonucleotides | Target organism | Fluorochrome |
---|---|---|
EUB338 – 338III | Eubacteria | Cy3 |
LGC354 A-C | Firmicutes | FITC |
Bac303 | Bacteroidetes | Cy5 |
Mut590 | Streptococcus mutans | FITC |
POGI | Porphyromonas gingivalis | FITC |
Table 3. Oligonucleotides (refer to probeBase13 for details).
Component | Company | Comments |
---|---|---|
4% paraformaldehyde | 4% solution in PBS | |
1 x PBS | 3 x solution prepared | |
ddH2O | Millipore | |
Ethanol (100%) | Merck | |
Lysozyme | Roth | 100 mg/ml stock solution |
Formamide | Roth | 99.5% solution |
5 M NaCl | Roth | |
1 M Tris-HCl | Roth | |
2% SDS | Roth | |
FISH probes (oligonucleotides) | Invitrogen, Sigma | |
ProLong Gold antifadent | Invitrogen | |
Nail polish | ||
Equipment | ||
Incubator | Thermo Scientific | |
Water bath | IKA Tez | |
50 ml tubes | Sarstedt | |
Polysine-coated slides | Thermo Scientific |
Table 4. Materials and equipment.