Summary

تقييم التعافي الوظيفي لنشاط الحجاب الحاجز Eupneic بعد تشريح الحبل الشوكي العنقي أحادي الجانب في الفئران

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

مضاعفات الجهاز التنفسي هي السبب الرئيسي للوفاة لدى الأفراد الذين يعانون من إصابة الحبل الشوكي العنقي (cSCI). النماذج الحيوانية ل cSCI ضرورية للتقييمات الميكانيكية والدراسات قبل السريرية. هنا ، نقدم طريقة قابلة للتكرار لتقييم الانتعاش الوظيفي لنشاط عضلة الحجاب الحاجز (DIAm) بعد تشريح العمود الفقري C2 أحادي الجانب (C2SH) في الفئران.

Abstract

بعد cSCI ، يمكن أن يتأثر تنشيط DIAm اعتمادا على مدى الإصابة. تصف هذه المخطوطة نموذج تشريح الأنف C2 أحادي الجانب (C2SH) ل cSCI الذي يعطل نشاط تخطيط كهربية العضل (EMG) للغشاء المماثل (iDIAm) أثناء التنفس في الفئران. لتقييم استرداد التحكم في المحرك DIAm ، يجب أولا تحديد مدى العجز بسبب C2SH بوضوح. من خلال التحقق من الخسارة الأولية الكاملة ل iDIAm EMG أثناء التنفس ، يمكن تصنيف التعافي اللاحق على أنه إما غائب أو موجود ، ويمكن تقدير مدى التعافي باستخدام سعة EMG. بالإضافة إلى ذلك ، من خلال قياس الغياب المستمر لنشاط iDIAm EMG أثناء التنفس بعد فترة الصدمة الشوكية الحادة بعد C2SH ، يمكن التحقق من نجاح C2SH الأولي. يمكن أن يوفر قياس نشاط EMG الحجاب الحاجز المقابل (cDIAm) معلومات حول التأثيرات التعويضية ل C2SH ، والتي تعكس أيضا المرونة العصبية. علاوة على ذلك ، يمكن أن توفر تسجيلات DIAm EMG من المستيقظة معلومات فسيولوجية حيوية حول التحكم الحركي في DIAm بعد C2SH. توضح هذه المقالة طريقة لنموذج C2SH صارم وقابل للتكرار وموثوق به من cSCI في الفئران ، وهو منصة ممتازة لدراسة المرونة العصبية التنفسية ، ونشاط cDIAm التعويضي ، والاستراتيجيات العلاجية والمستحضرات الصيدلانية.

Introduction

هناك أكثر من 300000 فرد يعانون من إصابة الحبل الشوكي (SCI) في الولايات المتحدة ، نصفهم تقريبا يعانون من إصابات عنق الرحم1. تؤدي هذه الإصابات إلى خسارة كبيرة في الرفاهية وتضع ضغوطا مالية على الأفراد وعائلاتهم ونظام الرعاية الصحية. لحسن الحظ ، فإن غالبية اصابات النخاع الشوكي غير مكتملة – مما يوفر إمكانية تعزيز المسارات المستثناة1. قد تسمح هذه المرونة العصبية باستعادة بعض الوظائف على الأقل ، بما في ذلك نشاط DIAm ، وهو أمر مهم للسلوكيات التنفسية وغير التنفسية. وبالتالي ، فإن تعزيز المرونة العصبية هو وسيلة واعدة للبحث لمساعدة الأفراد المصابين باصابات النخاعالشوكي 2.

نماذج القوارض من اصابات النخاع الشوكي لديها القدرة على المساهمة بشكل كبير في اكتشاف العلاجات لتحسين صحة الإنسان. أحد النماذج الكلاسيكية لإصابات النخاع الشوكي المستخدمة لدراسة المرونة العصبية هو الاستئصال أحادي الجانب (التشريح) للحبل الشوكي عند C2 (C2SH) ، مما يترك الجانب المقابل سليما3،4،5،6،7،8،9،10،11،12،13. تم الكشف عن تأثير C2SH على الناتج الحجابي وأهمية المسارات المقابلة التي تم تجنيبها لأول مرة منذ أكثر من مائة عام بواسطة Porter12 ، الذي وضعت مقالته الأساسية الأساس للدراسات الحديثة للمرونة العصبية التنفسية. يقطع نموذج C2SH المدخلات الهابطة من المجموعة التنفسية البطنية المنضدية (rVRG) في النخاع ، والتي تحتوي على خلايا عصبية قبل الحركية مسؤولة عن نقل ناتج توليد إيقاع الجهاز التنفسي14. تنقل هذه الخلايا العصبية الحركية rVRG أيضا محرك عصبي استثاري إلى الخلايا العصبية الحركية الحجيبية (الشكل 1). اتخذ العديد من الباحثين مناهج مختلفة لنموذج C2SH10،11،15،16 ، مما قد يفسر جزئيا بعض التباين في التعافي عبر الدراسات. باختصار ، تختلف الأساليب من حيث تجنيب القطائز الظهرية ، أو إجراء تشريح كامل ، أو إجراء قطع جزئي جانبي لا يقطع تماما المدخلات الهابطة من rVRG المماثل. بشكل عام ، تعد نماذج C2SH مفيدة بشكل خاص لدراسة المرونة العصبية التنفسية بسبب معدلات الاسترداد التلقائي لنشاط تخطيط كهربية العضل (EMG) بمرور الوقت ، والذي يمكن تحسينه من خلال عدة عوامل ، بما في ذلك الإشارات العصبية17،18،19،20،21. ومع ذلك ، يجب أولا تحديد الفقدان الأولي للوظيفة – الذي يعرف بأنه إسكات نشاط eupneic iDIAm EMG – قبل أن يتم تصنيف التعافي بوضوح. لم يتم التحقق من صحة عدم النشاط في وقت C2SH في العديد من الدراسات3،4،6،7،11،22،23.

تقدم التقييمات النسيجية للحبل الشوكي المستأصل فقط دليلا على تلف الموقع المناسب للمسارات البصلية الشوكية المثيرة المماثلة التي تعصب الخلايا العصبية الحركية الحجيبية في الحبل الشوكي ، لكن علم الأنسجة لا يحل محل الأدلة الفسيولوجية (على سبيل المثال ، DIAm EMG). علاوة على ذلك ، يتم إجراء التقييمات النسيجية خارج الجسم الحي في نقاط زمنية نهائية (غالبا بعد عدة أسابيع إلى أشهر من الإصابة) ولا توفر معلومات “في الوقت الفعلي”. لاحظ بعض المحققين أن حجم الآفة يتعلق بمقدار العجز الوظيفي أو عدمه5،24،25،26. من المهم ملاحظة أن صحة مثل هذه الادعاءات تعتمد على الأرجح بشكل كبير على كيفية تصنيف “الوظيفة” (أي ما هي المهام الوظيفية وكيف يتم قياسها كميا) ، ويسلط التباين عبر الدراسات الضوء على صعوبة إنتاج آفات متطابقة وظيفيا عبر. في الواقع ، أكد المحققون أن العلاقة بين مدى الإصابة والوظيفة الحركية لعضلات الأطراف (التي تم تحديدها كميا بواسطة درجة Basso و Beattie و Bresnahan (BBB)24) ليست خطية27,28. في الدراسات السابقة ، لم نجد أي علاقة بين مدى C2SH ومدى تعافي نشاط eupneic iDIAm EMG بعد الإصابة10،29،30،31 ، على الرغم من أن باحثين آخرين أبلغوا عن وجود علاقة بين وظيفة التهوية ومدى تجنيب المادة البيضاء5. وبالتالي ، في حالة نموذج C2SH ، فإن اتباع نهج للتحقق الوظيفي من عدم نشاط iDIAm في وقت الجراحة ويفضل أن يكون ذلك في وقت مبكر من تجارب إصابة الحبل الشوكي المزمنة مفيد وضروري.

تؤكد هذه المقالة على استخدام DIAm EMG للتأكيد في الوقت الفعلي للفقدان الأولي ل DIAm EMG أثناء التنفس بعد C2SH بالإضافة إلى التقييمات التأكيدية اللاحقة في 3 أيام (اليوم 3) بعد الإصابة18،21،31،32،33. في العمل السابق مع نموذج C2SH ، تم إجراء عمليات جراحية متكررة لتسجيل DIAm EMG10،13،30،34. ومع ذلك ، فقد استخدم العمل الأحدث أقطاب EMG المزمنة ، والتي تسمح بتسجيل EMG في الفئران المخدرة واليقظة. بالإضافة إلى ذلك ، تقلل الأقطاب الكهربائية المزمنة من خطر استرواح الصدر ولا تتطلب عمليات استئصال البطن المتكررة ، والتي يمكن أن تسبب تثبيط DIAm35,36. على الرغم من استخدام إصدارات من نموذج C2SH من قبل العديد من الباحثين ، إلا أن تأكيد إسكات نشاط iDIAm لم يتم في وقت الجراحة3،4،6،7،11،22،23. بدون مثل هذا التأكيد على عدم النشاط ، من الصعب معرفة أي جزء من الانتعاش اللاحق ينسبه إلى المرونة العصبية للمسارات المماثلة مقابل المسارات المقابلة ، والتي قد يكون لها تأثيرات تفاضلية. هذا اعتبار مهم لأن المحرك العصبي الشهيقي من rVRG إلى الخلايا العصبية الحركية الحجابي هو في المقام الأول مماثل ، مع فقدان حوالي 50 ٪ من مدخلات glutamatergic المثيرة للخلايا العصبية الحركية الحجابي بعد C2SH33. ومع ذلك ، هناك مدخلات استثارية شهيقية متبقية من rVRG المقابل الذي يتحلل أسفل موقع الآفة لتعصيب الخلايا العصبية الحركية الحجيبية المماثلة ويمكن تقويتها عن طريق المرونة العصبية لتعزيز الانتعاش الوظيفي. عن طريق إزالة المدخلات المثيرة المماثلة السائدة للخلايا العصبية الحركية الحجيبة ، يتم فقدان نشاط eupneic iDIAm EMG (على الأقل تحت التخدير) ، بينما يستمر نشاط cDIAm بل ويعزز. وبالتالي فإن فقدان نشاط iDIAm EMG أثناء التنفس هو مقياس لنجاح C2SH (الشكل 2).

يوجد مستوى معين من نشاط iDIAm EMG في وقت مبكر من 1-4 أيام بعد C2SH في المستيقظة23,37. بالإضافة إلى ذلك ، في المخية ، يكون نشاط iDIAm موجودا في غضون دقائق إلى ساعات بعد تشريح عنق الرحم العلوي ويتم قمعه عن طريق التخدير38. بالإضافة إلى ذلك ، يتم التحقق من نجاح C2SH من خلال تأكيد عدم وجود نشاط iDIAm EMG أثناء التنفس (eupnea) في الفئران المخدرة في اليوم 3 بعد الإصابة. أكدت دراسات التصوير البؤري فقدان المدخلات المشبكية glutamatergic على الخلايا العصبية الحركية الحجابي خلال هذه المرحلة الأولية من الإصابة37. في اليوم 3 بعد الإصابة ، إذا كان هناك أي نشاط eupneic iDIAm EMG المتبقي ، يتم تفسير ذلك على أنه دليل على الإزالة غير الكاملة لمحرك الشهيق الهابط المماثل من rVRG. تنقسم هذه المقالة إلى ثلاثة أقسام: (1) تسجيلات DIAm EMG المزمنة ، (2) C2SH ، و (3) الحصول على بيانات EMG في المستيقظة والمخدرة. يصف هذا البروتوكول نموذج C2SH صارم وقابل للتكرار وموثوق به من cSCI في الفئران ، وهو منصة ممتازة لدراسة المرونة العصبية التنفسية ، ونشاط cDIAm التعويضي ، والاستراتيجيات العلاجية والمستحضرات الصيدلانية.

Protocol

تمت الموافقة على هذا البروتوكول من قبل لجنة Mayo Clinic المؤسسية لرعاية واستخدامها (رقم البروتوكول: A00003105-17-R23). كانت في الدراسة الحالية مزيجا من ذكور وإناث فئران Sprague-Dawley التي يبلغ عمرها حوالي 3 أشهر وتزن ما بين 200 جم إلى 350 جم. يتم سرد تفاصيل الكواشف والمعدات المستخدمة في الدراسة في جدول الموا…

Representative Results

يقلل النهج المقدم في هذه المقالة من التباين بين المشغلين من خلال وضع معايير واضحة لتقييم DIAm EMG في نموذج الفئران من C2SH. أولا ، يجب ملاحظة توقف نشاط eupneic iDIAm EMG مباشرة بعد C2SH ، كما هو موضح في الشكل 2. إذا لم يكن الأمر كذلك ، يمكن إجراء عملية نقل ثانوية حتى يختفي نشاط eupne…

Discussion

C2 تشريح العمود الفقري
يؤكد الإجراء الموصوف في هذه المقالة على تقييمات نشاط DIAm EMG التي تعمل بمثابة التحقق من صحة آفة العمود الفقري C2 التي تعبر السكة القطنية الجانبية والبطنية مع تجنيب القطارات الظهرية (الشكل 2 أ). النهج الجراحي المقترح له فائدتان رئيسي…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يقر المؤلفون بمصدر تمويل المعاهد الوطنية للصحة (المعاهد الوطنية للصحة R01HL146114).

Materials

25 G Needle Cardinal Health 1188825100 Covidien Monoject Hypdermic Standard Needles: 25 G x 1" (0.508 mm x 2.5 cm) A
3-0 Vicryl Violet Braided Ethicon J774D 3-0 Suture
Adson-Brown Forceps Fine Science Tools 11627-12 Tip Shape: Straight, Tips: Shark Teeth, Tip Width: 1.4mm, Tip Dimensions: 2 x 1.4 m, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Bowman Style Cage Braintree Scientific POR-530 Weight range: 250 up to 750 g; Maximum length: 9" (228 mm); Basic unit is constructed of .5" (123 mm) jeweled acrylic.
Castroviejo Needle Holder Fine Science Tools 12565-14 Tip Shape: Straight, Tip Width: 1.5 mm, Clamping Length: 10 mm, Lock: Yes, Scissors: No, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14 cm, Serrated:
Yes, Feature: Tungsten Carbide
Clip Lead 1m TP Shielded Biopac Systems, Inc LEAD110S Shielded lead wires for EMG
Data Acquisition Software LabChart LabChart 7.3.8 Data recording, visualization, and analysis software for multi-channel recordings and real-time assessments
Data Analysis Software – Matlab 2023b Mathworks, Inc. Version 23.2 General purpose programming language for post hoc analysis
Dissecting Knife Fine Science Tools 10056-12 Cutting Edge: 4 mm, Thickness: 0.5 mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12.5 cm, Blade Shape: Angled 30°
Dumont #3 Forceps Fine Science Tools 11293-00 Style: #3, Tip Shape: Straight, Tips: Standard, Tip Dimensions: 0.17 x 0.1 mm, Length: 12 cm, Alloy / Material: Dumostar
Electromyogram Amplifier Biopac Systems, Inc EMG100C EMG amplifier
Friedman Rongeur Fine Science Tools 16000-14 Tip Shape: Curved, Cup Size: 2.5mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 13cm, Joint Action: Single
Friedman-Pearson Rongeurs Fine Science Tools 16021-14 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Joint Action: Single, Cup Size: 1mm, Tip Shape: Curved
Isolated Power Supply Module Biopac Systems, Inc IPS100C Operates 100-series amplifier modules indepdent of the Biopac Systems, Inc.'s MP series Data Acquisition System
Kelly Hemostats Fine Science Tools 13019-14 Tips: Serrated, Tip Width: 1.5mm, Clamping Length: 22mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Tip Shape: Curved
Knife Curette V. Mueller VM101-4414 Tip: Sharp, Tip Diameter: 2 mm
Micro Dissecting Scissors Biomedical Research Instruments, Inc. 11-2420 Length: 4", Angle: Straight, Blade Length: 23 mm
Multistranded stainless steel wire Cooner Wire, Inc. AS 631 AWG 40; Overall diameter: 0.011 mm (with insulation), 0.008 mm (without insulation).
PowerLab 8/35 ADInstruments PL3508 Data acquisition system
Scalpel Blade #11 Fine Science Tools 10011-00 Blade Shape: Angled, Cutting Edge: 20 mm, Thickness: 0.4 mm, Alloy / Material: Carbon Steel
Scalpel Handle #3 Fine Science Tools 10003-12 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Sprague Dawley Rat Inotiv Order code: 002 Sprague Dawley outbred rats (female and male)
Surgical Microscope Olympus SZ61 Surgical microscope 
Suture Cutting Scissors George Tiemann & Co. 110-1250SB Alloy / Material: Stainless Steel, Tip Shape: Straight, Tips: Sharp/Blunt, Length: 4.5"
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-08 Tips: Sharp, Cutting Edge: 2.5 mm, Tip Diameter: 0.05 mm, Length: 8 cm, Alloy / Material: Stainless Steel, Serrated: No, Tip Shape: Straight
Weitlaner Retractor Codman 50-5647 Prongs: 2 x 3 Blunt, Length: 4.5"

References

  1. Center NSCIS. . Spinal cord injury model systems 2022 annual report – complete public version. , (2023).
  2. Punjani, N., Deska-Gauthier, D., Hachem, L. D., Abramian, M., Fehlings, M. G. Neuroplasticity and regeneration after spinal cord injury. N Am Spine Soc J. 15, 100235 (2023).
  3. El-Bohy, A. A., Goshgarian, H. G. The use of single phrenic axon recordings to assess diaphragm recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 156 (1), 172-179 (1999).
  4. Fuller, D. D., et al. Modest spontaneous recovery of ventilation following chronic high cervical hemisection in rats. Exp Neurol. 211 (1), 97-106 (2008).
  5. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165 (2-3), 245-253 (2009).
  6. Golder, F. J., et al. Respiratory motor recovery after unilateral spinal cord injury: Eliminating crossed phrenic activity decreases tidal volume and increases contralateral respiratory motor output. J Neurosci. 23 (6), 2494-2501 (2003).
  7. Golder, F. J., Reier, P. J., Davenport, P. W., Bolser, D. C. Cervical spinal cord injury alters the pattern of breathing in anesthetized rats. J Appl Physiol. 91 (6), 2451-2458 (2001).
  8. Goshgarian, H. G. The role of cervical afferent nerve fiber inhibition of the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 72 (1), 211-225 (1981).
  9. Keomani, E., et al. A murine model of cervical spinal cord injury to study post-lesional respiratory neuroplasticity. J Vis Exp. 87, e51235 (2014).
  10. Miyata, H., Zhan, W. Z., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Myoneural interactions affect diaphragm muscle adaptations to inactivity. J Appl Physiol. 79 (5), 1640-1649 (1995).
  11. Moreno, D. E., Yu, X. J., Goshgarian, H. G. Identification of the axon pathways which mediate functional recovery of a paralyzed hemidiaphragm following spinal cord hemisection in the adult rat. Exp Neurol. 116 (3), 219-228 (1992).
  12. Porter, W. T. The path of the respiratory impulse from the bulb to the phrenic nuclei. J Physiol. 17 (6), 455-485 (1895).
  13. Zhan, W. Z., Miyata, H., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Metabolic and phenotypic adaptations of diaphragm muscle fibers with inactivation. J Appl Physiol. 82 (4), 1145-1153 (1997).
  14. Smith, J. C., Ellenberger, H. H., Ballanyi, K., Richter, D. W., Feldman, J. L. Pre-botzinger complex: A brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals. Science. 254 (5032), 726-729 (1991).
  15. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23 (7), 1137-1146 (2006).
  16. Warren, P. M., et al. Rapid and robust restoration of breathing long after spinal cord injury. Nat Commun. 9 (1), 4843 (2018).
  17. Fogarty, M. J., Dasgupta, D., Khurram, O. U., Sieck, G. C. Chemogenetic inhibition of TrkB signalling reduces phrenic motor neuron survival and size. Mol Cell Neurosci. 125, 103847 (2023).
  18. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Targeted delivery of TrkB receptor to phrenic motoneurons enhances functional recovery of rhythmic phrenic activity after cervical spinal hemisection. PLoS One. 8 (5), e64755 (2013).
  19. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Localized delivery of brain-derived neurotrophic factor-expressing mesenchymal stem cells enhances functional recovery following cervical spinal cord injury. J Neurotrauma. 32 (3), 185-193 (2015).
  20. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Stowe, J. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. TrkB kinase activity is critical for recovery of respiratory function after cervical spinal cord hemisection. Exp Neurol. 261, 190-195 (2014).
  21. Sieck, G. C., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B. Acute intrathecal BDNF enhances functional recovery after cervical spinal cord injury in rats. J Neurophysiol. 125 (6), 2158-2165 (2021).
  22. Fuller, D. D., Golder, F. J., Olson, E. B., Mitchell, G. S. Recovery of phrenic activity and ventilation after cervical spinal hemisection in rats. J Appl Physiol. 100 (3), 800-806 (2006).
  23. Bezdudnaya, T., Hormigo, K. M., Marchenko, V., Lane, M. A. Spontaneous respiratory plasticity following unilateral high cervical spinal cord injury in behaving rats. Exp Neurol. 305, 56-65 (2018).
  24. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  25. Cloud, B. A., et al. Hemisection spinal cord injury in rat: The value of intraoperative somatosensory evoked potential monitoring. J Neurosci Methods. 211 (2), 179-184 (2012).
  26. Hurd, C., Weishaupt, N., Fouad, K. Anatomical correlates of recovery in single pellet reaching in spinal cord injured rats. Exp Neurol. 247, 605-614 (2013).
  27. Fouad, K., Hurd, C., Magnuson, D. S. Functional testing in animal models of spinal cord injury: Not as straight forward as one would think. Front Integr Neurosci. 7, 85 (2013).
  28. Fouad, K., Popovich, P. G., Kopp, M. A., Schwab, J. M. The neuroanatomical-functional paradox in spinal cord injury. Nat Rev Neurol. 17 (1), 53-62 (2021).
  29. Fogarty, M. J., et al. Novel regenerative drug, SPG302 promotes functional recovery of diaphragm muscle activity after cervical spinal cord injury. J Physiol. 601 (12), 2513-2532 (2023).
  30. Prakash, Y. S., Miyata, H., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Inactivity-induced remodeling of neuromuscular junctions in rat diaphragmatic muscle. Muscle Nerve. 22 (3), 307-319 (1999).
  31. Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Role of neurotrophins in recovery of phrenic motor function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169 (2), 218-225 (2009).
  32. Brown, A. D., et al. Mitochondrial adaptations to inactivity in diaphragm muscle fibers. J Appl Physiol. 133 (1), 191-204 (2022).
  33. Rana, S., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Disproportionate loss of excitatory inputs to smaller phrenic motor neurons following cervical spinal hemisection. J Physiol. 598 (20), 4693-4711 (2020).
  34. Mantilla, C. B., Rowley, K. L., Zhan, W. Z., Fahim, M. A., Sieck, G. C. Synaptic vesicle pools at diaphragm neuromuscular junctions vary with motoneuron soma, not axon terminal, inactivity. Neuroscience. 146 (1), 178-189 (2007).
  35. Ford, G. T., Whitelaw, W. A., Rosenal, T. W., Cruse, P. J., Guenter, C. A. Diaphragm function after upper abdominal surgery in humans. Am Rev Respir Dis. 127 (4), 431-436 (1983).
  36. Road, J. D., Burgess, K. R., Whitelaw, W. A., Ford, G. T. Diaphragm function and respiratory response after upper abdominal surgery in dogs. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 57 (2), 576-582 (1984).
  37. Rana, S., Sunshine, M. D., Greer, J. J., Fuller, D. D. Ampakines stimulate diaphragm activity after spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (24), 3467-3482 (2021).
  38. Ghali, M. G., Marchenko, V. Dynamic changes in phrenic motor output following high cervical hemisection in the decerebrate rat. Exp Neurol. 271, 379-389 (2015).
  39. Ditunno, J. F., Little, J. W., Tessler, A., Burns, A. S. Spinal shock revisited: A four-phase model. Spinal Cord. 42 (7), 383-395 (2004).
  40. Khurram, O. U., Gransee, H. M., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Automated evaluation of respiratory signals to provide insight into respiratory drive. Respir Physiol Neurobiol. 300, 103872 (2022).
  41. Khurram, O. U., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromotor control of spontaneous quiet breathing in awake rats evaluated by assessments of diaphragm emg stationarity. J Neurophysiol. 130 (5), 1344-1357 (2023).
  42. Rana, S., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Cervical spinal hemisection alters phrenic motor neuron glutamatergic mRNA receptor expression. Exp Neurol. 353, 114030 (2022).
  43. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Zhan, W. Z., Seven, Y. B., Sieck, G. C. Prolonged c2 spinal hemisection-induced inactivity reduces diaphragm muscle specific force with modest, selective atrophy of type IIx and/or IIb fibers. J Appl Physiol. 114 (3), 380-386 (2013).
  44. Jensen, V. N., Romer, S. H., Turner, S. M., Crone, S. A. Repeated measurement of respiratory muscle activity and ventilation in mouse models of neuromuscular disease. J Vis Exp. 122, e55599 (2017).
  45. Navarrete-Opazo, A., Mitchell, G. S. Recruitment and plasticity in diaphragm, intercostal, and abdominal muscles in unanesthetized rats. J Appl Physiol. 117 (2), 180-188 (2014).
  46. Redfern, M., Hughes, R., Chaffin, D. High-pass filtering to remove electrocardiographic interference from torso emg recordings. Clin Biomech (Bristol, Avon). 8 (1), 44-48 (1993).
  47. Seven, Y. B., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Non-stationarity and power spectral shifts in emg activity reflect motor unit recruitment in rat diaphragm muscle. Respir Physiol Neurobiol. 185 (2), 400-409 (2013).
  48. Christensen, H., Sogaard, K., Jensen, B. R., Finsen, L., Sjogaard, G. Intramuscular and surface emg power spectrum from dynamic and static contractions. J Electromyogr Kinesiol. 5 (1), 27-36 (1995).
  49. Belman, M. J., Sieck, G. C. The ventilatory muscles. Fatigue, endurance and training. Chest. 82 (6), 761-766 (1982).
  50. Belman, M. J., Sieck, G. C., Mazar, A. Aminophylline and its influence on ventilatory endurance in humans. Am Rev Respir Dis. 131 (2), 226-229 (1985).
  51. Levine, S., Gillen, J., Weiser, P., Gillen, M., Kwatny, E. Description and validation of an ecg removal procedure for emgdi power spectrum analysis. J Appl Physiol. 60 (3), 1073-1081 (1986).
  52. Schweitzer, T. W., Fitzgerald, J. W., Bowden, J. A., Lynne-Davies, P. Spectral analysis of human inspiratory diaphragmatic electromyograms. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 46 (1), 152-165 (1979).
  53. Sharp, J. T. The respiratory muscles in emphysema. Clin Chest Med. 4 (3), 421-432 (1983).
  54. Sinderby, C., Spahija, J., Beck, J. Changes in respiratory effort sensation over time are linked to the frequency content of diaphragm electrical activity. Am J Respir Crit Care Med. 163 (4), 905-910 (2001).
  55. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183 (3), 186-192 (2012).
  56. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235 (1), 197-210 (2012).
  57. Burns, D. P., Murphy, K. H., Lucking, E. F., O’halloran, K. D. Inspiratory pressure-generating capacity is preserved during ventilatory and non-ventilatory behaviours in young dystrophic mdx mice despite profound diaphragm muscle weakness. J Physiol. 597 (3), 831-848 (2019).
  58. Dow, D. E., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. EMG-based detection of inspiration in the rat diaphragm muscle. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2006, 1204-1207 (2006).
  59. Rana, S., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Diaphragm electromyographic activity following unilateral midcervical contusion injury in rats. J Neurophysiol. 117 (2), 545-555 (2017).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Khurram, O. U., Fogarty, M. J., Zhan, W., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Assessing Functional Recovery of Eupneic Diaphragm Activity Following Unilateral Cervical Spinal Cord Hemisection in Rats. J. Vis. Exp. (208), e66828, doi:10.3791/66828 (2024).

View Video