Summary

Sıçanlarda Tek Taraflı Servikal Omurilik Hemiseksiyonu Sonrası Eupneik Diyafram Aktivitesinin Fonksiyonel İyileşmesinin Değerlendirilmesi

Published: June 14, 2024
doi:

Summary

Solunum komplikasyonları, servikal omurilik yaralanması (cSCI) olan bireylerde önde gelen ölüm nedenidir. cSCI’nin hayvan modelleri, mekanik değerlendirmeler ve klinik öncesi çalışmalar için gereklidir. Burada, sıçanlarda tek taraflı C2 spinal hemiseksiyon (C2SH) sonrası diyafram kası (DIAm) aktivitesinin fonksiyonel iyileşmesini değerlendirmek için tekrarlanabilir bir yöntem sunuyoruz.

Abstract

cSCI’yi takiben, yaralanmanın boyutuna bağlı olarak DIAm’ın aktivasyonu etkilenebilir. Bu makale, sıçanlarda solunum sırasında öpneik ipsilateral diyafram (iDIAm) elektromiyografik (EMG) aktivitesini bozan tek taraflı birC2 hemiseksiyon (C2SH) cSCI modelini tanımlamaktadır. DIAm motor kontrolünün geri kazanılmasını değerlendirmek için, öncelikle C2SH’ye bağlı açığın derecesi açıkça belirlenmelidir. Solunum sırasında iDIAm EMG’nin tam bir başlangıç kaybını doğrulayarak, sonraki iyileşme yok veya mevcut olarak sınıflandırılabilir ve iyileşmenin derecesi EMG genliği kullanılarak tahmin edilebilir. Ek olarak, C2SH’yi takip eden akut spinal şok döneminden sonra solunum sırasında iDIAm EMG aktivitesinin devam eden yokluğunu ölçerek, ilk C2SH’nin başarısı doğrulanabilir. Kontralateral diyafram (cDIAm) EMG aktivitesinin ölçülmesi, nöroplastisiteyi de yansıtan C2SH’nin telafi edici etkileri hakkında bilgi sağlayabilir. Ayrıca, uyanık hayvanlardan alınan DIAm EMG kayıtları, C2SH sonrası DIAm’ın motor kontrolü hakkında hayati fizyolojik bilgiler sağlayabilir. Bu makale, solunumsal nöroplastisite, telafi edici cDIAm aktivitesi ve terapötik stratejiler ve farmasötikleri incelemek için mükemmel bir platform olan sıçanlarda titiz, tekrarlanabilir ve güvenilir birC2SH cSCI modeli için bir yöntemi açıklamaktadır.

Introduction

Amerika Birleşik Devletleri’nde omurilik yaralanması (SCI) olan 300.000’den fazla kişi vardır ve bunların yaklaşık yarısı servikal yaralanmalara sahiptir1. Bu yaralanmalar önemli ölçüde refah kaybına neden olur ve bireyler, aileleri ve sağlık sistemi üzerinde mali bir yük oluşturur. Neyse ki, SCI’lerin çoğu eksiktir ve korunan yolların güçlendirilmesi için potansiyel sağlar1. Bu nöroplastisite, ventilasyon ve ventilasyon dışı davranışlar için önemli olan DIAm aktivitesi de dahil olmak üzere en azından bazı fonksiyonların geri kazanılmasına izin verebilir. Bu nedenle, nöroplastisiteyi teşvik etmek, SCI2’li bireylere yardımcı olmak için umut verici bir araştırma yoludur.

SCI’nin kemirgen modelleri, insan sağlığını iyileştirmeye yönelik tedavilerin keşfine önemli ölçüde katkıda bulunma potansiyeline sahiptir. Nöroplastisiteyi incelemek için kullanılan klasik SCI modellerinden biri,C2’de (C2SH) omuriliğin tek taraflı bir transeksiyonudur (hemisection), bu da karşı tarafı 3,4,5,6,7,8,9,10,11,12,13 olarak bırakır. C2SH’nin frenik çıktı üzerindeki etkisi ve korunmuş kontralateral yolların önemi ilk olarak yüz yıldan fazla bir süre önce, ufuk açıcı makalesi günümüz solunum nöroplastisitesi çalışmalarının temelini atan Porter12 tarafından ortaya çıkarıldı. C2SH modeli, solunum ritmi üretimi14’ün çıktısını iletmekten sorumlu premotor nöronları içeren medulladaki rostral ventral solunum grubundan (rVRG) azalan girişleri keser. Bu rVRG premotor nöronlar ayrıca frenik motor nöronlara uyarıcı nöral sürücü iletir (Şekil 1). Birkaç araştırmacı, C2SH modeli 10,11,15,16’ya farklı yaklaşımlar benimsemiştir, bu da çalışmalar arasında iyileşmedeki değişkenliğin bir kısmını kısmen açıklayabilir. Kısaca yaklaşımlar, dorsal füniküllerin korunması, tam hemiseksiyon yapılması veya ipsilateral rVRG’den inen girdileri tamamen kesmeyen lateral parsiyel transeksiyon yapılması açısından farklılık gösterir. Genel olarak, C2SH modelleri, nörotrofik sinyalleme 17,18,19,20,21 dahil olmak üzere çeşitli faktörlerle iyileştirilebilen, eupneik iDIAm elektromiyografik (EMG) aktivitesinin zaman içinde spontan iyileşme oranları nedeniyle solunum nöroplastisitesini incelemek için özellikle yararlıdır. Bununla birlikte, eupneik iDIAm EMG aktivitesinin susturulması olarak tanımlanan ilk fonksiyon kaybı, iyileşmenin açıkça sınıflandırılabilmesi için önce kurulmalıdır. C2SHsırasında hareketsizliğin bu doğrulanması, birkaç çalışmadayapılmamıştır 3,4,6,7,11,22,23.

Eksize edilen omuriliğin histolojik değerlendirmeleri, yalnızca omurilikteki frenik motor nöronları innerve eden ipsilateral uyarıcı bulbospinal yolların uygun yerinde hasara dair kanıt sağlar, ancak histoloji fizyolojik kanıtların (örneğin, DIAm EMG) yerini almaz. Ayrıca, histolojik değerlendirmeler in ex vivo olarak terminal zaman noktalarında (genellikle yaralanmadan birkaç hafta ila aylar sonra) gerçekleştirilir ve bunlar “gerçek zamanlı” bilgi sağlamaz. Bazı araştırmacılar, lezyonun büyüklüğünün fonksiyonel eksiklik veya eksikliği ile ilgili olduğunu belirtmişlerdir 5,24,25,26. Bu tür iddiaların geçerliliğinin büyük olasılıkla “işlevin” nasıl sınıflandırıldığına (yani, işlevsel görevlerin ne olduğuna ve nasıl nicelleştirildiğine) bağlı olduğunu ve çalışmalar arasındaki değişkenliğin, hayvanlar arasında işlevsel olarak aynı lezyonların üretilmesinin zorluğunu vurguladığını belirtmek önemlidir. Gerçekten de, araştırmacılar, yaralanmanın derecesi ile ekstremite kas lokomotor fonksiyonu arasındaki ilişkinin (Basso, Beattie ve Bresnahan (BBB) skoru24 ile ölçülür) doğrusal olmadığını vurgulamışlardır 27,28. Önceki çalışmalarda,C2SH’nin kapsamı ile yaralanma sonrası eupneik iDIAm EMG aktivitesinin iyileşme derecesi arasında bir ilişki bulamadık 10,29,30,31, ancak diğer araştırmacılar ventilasyon fonksiyonu ile beyaz cevher koruma derecesi arasında bir ilişki olduğunu bildirmişlerdir 5. Bu nedenle, C2SH modeli söz konusu olduğunda, ameliyat sırasında ve tercihen kronik omurilik yaralanması deneylerinin erken döneminde iDIAm inaktivitesinin fonksiyonel olarak doğrulanması için bir yaklaşım hem yararlı hem de gereklidir.

Bu makale,C2SH’den sonra solunum sırasında ilk DIAm EMG kaybının gerçek zamanlı doğrulanması için DIAm EMG’nin kullanımının yanı sıra yaralanmadan 3 gün sonra (3. gün) 18,21,31,32,33 sonraki doğrulayıcı değerlendirmelerin altını çizmektedir. C2SH modeli ile daha önceki çalışmalarda, DIAm EMG 10,13,30,34’ü kaydetmek için tekrarlanan laparotomiler yapıldı. Bununla birlikte, daha yeni çalışmalar, anestezi uygulanmış ve uyanık sıçanlarda EMG’nin kaydedilmesine izin veren kronik EMG elektrotlarını kullanmıştır. Ek olarak, kronik elektrotlar pnömotoraks riskini azaltır ve tekrarlanan laparotomiler gerektirmez, bu da DIAm35,36’nın inhibisyonuna neden olabilir. C2SH modelinin versiyonları birçok araştırmacı tarafından kullanılmış olmasına rağmen, ameliyat sırasında iDIAm aktivitesinin susturulmasının doğrulanmasıyapılmamıştır 3,4,6,7,11,22,23. Böyle bir hareketsizlik teyidi olmadan, sonraki iyileşmenin ne kadarının, farklı etkilere sahip olabilecek ipsilateral ve kontralateral yolların nöroplastisitesine atfedileceğini bilmek zordur. Bu önemli bir husustur, çünkü rVRG’den frenik motonöronlara inspiratuar nöral sürücü esas olarak ipsilateraldir veC2SH33’ten sonra frenik motor nöronlara giden uyarıcı glutamaterjik girdilerin yaklaşık% 50’si kaybedilir. Bununla birlikte, kontralateral rVRG’den, ipsilateral frenik motor nöronları innerve etmek için lezyon bölgesinin altına decussate yapan ve fonksiyonel iyileşmeyi teşvik etmek için nöroplastisite yoluyla güçlendirilebilen kalan inspiratuar uyarıcı girdiler vardır. Frenik motor nöronlara baskın ipsilateral uyarıcı girdiyi çıkararak, eupneik iDIAm EMG aktivitesi kaybolur (en azından anestezi altında), cDIAm’ın aktivitesi devam eder ve hatta artar. Solunum sırasında iDIAm EMG aktivitesinin kaybı bu nedenle başarılı bir C2SH’nin bir ölçüsüdür (Şekil 2).

Uyanık hayvanlardaC2SH’yi takiben 1-4 gün gibi erken bir sürede bir miktar iDIAm EMG aktivitesi mevcuttur23,37. Ek olarak, derebrat hayvanlarda, üst servikal hemiseksiyondan dakikalar ila saatler sonra iDIAm aktivitesi mevcuttur ve anestezi ile baskılanır38. Ek olarak, C2SH’nin başarısı, yaralanma sonrası 3. günde anestezi uygulanmış sıçanlarda solunum sırasında (eupnea) iDIAm EMG aktivitesinin olmadığını doğrulayarak doğrulanır. Konfokal görüntüleme çalışmaları, yaralanmanın bu ilk aşaması sırasında frenik motor nöronlar üzerindeki glutamaterjik sinaptik girdilerin kaybını doğruladı37. Yaralanmadan sonraki 3. günde, herhangi bir rezidüel eupneik iDIAm EMG aktivitesi varsa, bu, rVRG’den ipsilateral inleyen inspiratuar sürücünün eksik çıkarılmasının kanıtı olarak yorumlanır. Bu makale üç bölüme ayrılmıştır: (1) kronik DIAm EMG kayıtları, (2) C2SH ve (3) uyanık ve anestezi uygulanmış hayvanlarda EMG verilerinin toplanması. Bu protokol, solunumsal nöroplastisite, telafi edici cDIAm aktivitesi ve terapötik stratejiler ve farmasötikleri incelemek için mükemmel bir platform olan sıçanlarda titiz, tekrarlanabilir ve güvenilir birC2SH cSCI modelini tanımlar.

Protocol

Bu protokol Mayo Clinic Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi tarafından onaylanmıştır (Protokol No: A00003105-17-R23). Bu çalışmadaki hayvanlar, yaklaşık 3 aylık ve 200 g ila 350 g ağırlığında erkek ve dişi Sprague-Dawley sıçanlarının bir karışımıydı. Çalışmada kullanılan reaktiflerin ve ekipmanların detayları Malzeme Tablosunda listelenmiştir. 1. Elektrot implantasyonu Elektrotların hazırlanmasıBeli…

Representative Results

Bu makalede sunulan yaklaşım,C2SH’ninbir sıçan modelinde DIAm EMG’yi değerlendirmek için net kriterler belirleyerek operatörler arası değişkenliği en aza indirir. İlk olarak, Şekil 2’de gösterildiği gibi,C2SH’denhemen sonra eupneik iDIAm EMG aktivitesinin durduğu gözlenmelidir. Aksi takdirde, öpneik iDIAm aktivitesi kaybolana kadar ikincil bir transeksiyon yapılabilir. İkincisi, C2SH sonrası 3. günde, hayvanlar anestezi uygulanırken öp…

Discussion

C2 spinal hemiseksiyon
Bu makalede anlatılan prosedür, dorsal fünikülleri korurken lateral ve ventral fünikülleri kesen bir C2 spinal lezyonunun doğrulanması olarak hizmet eden DIAm EMG aktivitesinin değerlendirmelerini vurgulamaktadır (Şekil 2A). Önerilen cerrahi yaklaşımın iki büyük faydası vardır. İlk olarak, sıçanlarda ambulatuvar fonksiyonu koruyan dorsal fünikülleri korurken, frenik motor nöronlara ipsilateral girdileri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Yazarlar, NIH finansman kaynağını (NIH R01HL146114) kabul eder.

Materials

25 G Needle Cardinal Health 1188825100 Covidien Monoject Hypdermic Standard Needles: 25 G x 1" (0.508 mm x 2.5 cm) A
3-0 Vicryl Violet Braided Ethicon J774D 3-0 Suture
Adson-Brown Forceps Fine Science Tools 11627-12 Tip Shape: Straight, Tips: Shark Teeth, Tip Width: 1.4mm, Tip Dimensions: 2 x 1.4 m, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Bowman Style Cage Braintree Scientific POR-530 Weight range: 250 up to 750 g; Maximum length: 9" (228 mm); Basic unit is constructed of .5" (123 mm) jeweled acrylic.
Castroviejo Needle Holder Fine Science Tools 12565-14 Tip Shape: Straight, Tip Width: 1.5 mm, Clamping Length: 10 mm, Lock: Yes, Scissors: No, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14 cm, Serrated:
Yes, Feature: Tungsten Carbide
Clip Lead 1m TP Shielded Biopac Systems, Inc LEAD110S Shielded lead wires for EMG
Data Acquisition Software LabChart LabChart 7.3.8 Data recording, visualization, and analysis software for multi-channel recordings and real-time assessments
Data Analysis Software – Matlab 2023b Mathworks, Inc. Version 23.2 General purpose programming language for post hoc analysis
Dissecting Knife Fine Science Tools 10056-12 Cutting Edge: 4 mm, Thickness: 0.5 mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12.5 cm, Blade Shape: Angled 30°
Dumont #3 Forceps Fine Science Tools 11293-00 Style: #3, Tip Shape: Straight, Tips: Standard, Tip Dimensions: 0.17 x 0.1 mm, Length: 12 cm, Alloy / Material: Dumostar
Electromyogram Amplifier Biopac Systems, Inc EMG100C EMG amplifier
Friedman Rongeur Fine Science Tools 16000-14 Tip Shape: Curved, Cup Size: 2.5mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 13cm, Joint Action: Single
Friedman-Pearson Rongeurs Fine Science Tools 16021-14 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Joint Action: Single, Cup Size: 1mm, Tip Shape: Curved
Isolated Power Supply Module Biopac Systems, Inc IPS100C Operates 100-series amplifier modules indepdent of the Biopac Systems, Inc.'s MP series Data Acquisition System
Kelly Hemostats Fine Science Tools 13019-14 Tips: Serrated, Tip Width: 1.5mm, Clamping Length: 22mm, Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 14cm, Tip Shape: Curved
Knife Curette V. Mueller VM101-4414 Tip: Sharp, Tip Diameter: 2 mm
Micro Dissecting Scissors Biomedical Research Instruments, Inc. 11-2420 Length: 4", Angle: Straight, Blade Length: 23 mm
Multistranded stainless steel wire Cooner Wire, Inc. AS 631 AWG 40; Overall diameter: 0.011 mm (with insulation), 0.008 mm (without insulation).
PowerLab 8/35 ADInstruments PL3508 Data acquisition system
Scalpel Blade #11 Fine Science Tools 10011-00 Blade Shape: Angled, Cutting Edge: 20 mm, Thickness: 0.4 mm, Alloy / Material: Carbon Steel
Scalpel Handle #3 Fine Science Tools 10003-12 Alloy / Material: Stainless Steel, Length: 12 cm
Sprague Dawley Rat Inotiv Order code: 002 Sprague Dawley outbred rats (female and male)
Surgical Microscope Olympus SZ61 Surgical microscope 
Suture Cutting Scissors George Tiemann & Co. 110-1250SB Alloy / Material: Stainless Steel, Tip Shape: Straight, Tips: Sharp/Blunt, Length: 4.5"
Vannas Spring Scissors Fine Science Tools 15000-08 Tips: Sharp, Cutting Edge: 2.5 mm, Tip Diameter: 0.05 mm, Length: 8 cm, Alloy / Material: Stainless Steel, Serrated: No, Tip Shape: Straight
Weitlaner Retractor Codman 50-5647 Prongs: 2 x 3 Blunt, Length: 4.5"

References

  1. Center NSCIS. . Spinal cord injury model systems 2022 annual report – complete public version. , (2023).
  2. Punjani, N., Deska-Gauthier, D., Hachem, L. D., Abramian, M., Fehlings, M. G. Neuroplasticity and regeneration after spinal cord injury. N Am Spine Soc J. 15, 100235 (2023).
  3. El-Bohy, A. A., Goshgarian, H. G. The use of single phrenic axon recordings to assess diaphragm recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 156 (1), 172-179 (1999).
  4. Fuller, D. D., et al. Modest spontaneous recovery of ventilation following chronic high cervical hemisection in rats. Exp Neurol. 211 (1), 97-106 (2008).
  5. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165 (2-3), 245-253 (2009).
  6. Golder, F. J., et al. Respiratory motor recovery after unilateral spinal cord injury: Eliminating crossed phrenic activity decreases tidal volume and increases contralateral respiratory motor output. J Neurosci. 23 (6), 2494-2501 (2003).
  7. Golder, F. J., Reier, P. J., Davenport, P. W., Bolser, D. C. Cervical spinal cord injury alters the pattern of breathing in anesthetized rats. J Appl Physiol. 91 (6), 2451-2458 (2001).
  8. Goshgarian, H. G. The role of cervical afferent nerve fiber inhibition of the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 72 (1), 211-225 (1981).
  9. Keomani, E., et al. A murine model of cervical spinal cord injury to study post-lesional respiratory neuroplasticity. J Vis Exp. 87, e51235 (2014).
  10. Miyata, H., Zhan, W. Z., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Myoneural interactions affect diaphragm muscle adaptations to inactivity. J Appl Physiol. 79 (5), 1640-1649 (1995).
  11. Moreno, D. E., Yu, X. J., Goshgarian, H. G. Identification of the axon pathways which mediate functional recovery of a paralyzed hemidiaphragm following spinal cord hemisection in the adult rat. Exp Neurol. 116 (3), 219-228 (1992).
  12. Porter, W. T. The path of the respiratory impulse from the bulb to the phrenic nuclei. J Physiol. 17 (6), 455-485 (1895).
  13. Zhan, W. Z., Miyata, H., Prakash, Y. S., Sieck, G. C. Metabolic and phenotypic adaptations of diaphragm muscle fibers with inactivation. J Appl Physiol. 82 (4), 1145-1153 (1997).
  14. Smith, J. C., Ellenberger, H. H., Ballanyi, K., Richter, D. W., Feldman, J. L. Pre-botzinger complex: A brainstem region that may generate respiratory rhythm in mammals. Science. 254 (5032), 726-729 (1991).
  15. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23 (7), 1137-1146 (2006).
  16. Warren, P. M., et al. Rapid and robust restoration of breathing long after spinal cord injury. Nat Commun. 9 (1), 4843 (2018).
  17. Fogarty, M. J., Dasgupta, D., Khurram, O. U., Sieck, G. C. Chemogenetic inhibition of TrkB signalling reduces phrenic motor neuron survival and size. Mol Cell Neurosci. 125, 103847 (2023).
  18. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Targeted delivery of TrkB receptor to phrenic motoneurons enhances functional recovery of rhythmic phrenic activity after cervical spinal hemisection. PLoS One. 8 (5), e64755 (2013).
  19. Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Localized delivery of brain-derived neurotrophic factor-expressing mesenchymal stem cells enhances functional recovery following cervical spinal cord injury. J Neurotrauma. 32 (3), 185-193 (2015).
  20. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Stowe, J. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. TrkB kinase activity is critical for recovery of respiratory function after cervical spinal cord hemisection. Exp Neurol. 261, 190-195 (2014).
  21. Sieck, G. C., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B. Acute intrathecal BDNF enhances functional recovery after cervical spinal cord injury in rats. J Neurophysiol. 125 (6), 2158-2165 (2021).
  22. Fuller, D. D., Golder, F. J., Olson, E. B., Mitchell, G. S. Recovery of phrenic activity and ventilation after cervical spinal hemisection in rats. J Appl Physiol. 100 (3), 800-806 (2006).
  23. Bezdudnaya, T., Hormigo, K. M., Marchenko, V., Lane, M. A. Spontaneous respiratory plasticity following unilateral high cervical spinal cord injury in behaving rats. Exp Neurol. 305, 56-65 (2018).
  24. Basso, D. M., Beattie, M. S., Bresnahan, J. C. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma. 12 (1), 1-21 (1995).
  25. Cloud, B. A., et al. Hemisection spinal cord injury in rat: The value of intraoperative somatosensory evoked potential monitoring. J Neurosci Methods. 211 (2), 179-184 (2012).
  26. Hurd, C., Weishaupt, N., Fouad, K. Anatomical correlates of recovery in single pellet reaching in spinal cord injured rats. Exp Neurol. 247, 605-614 (2013).
  27. Fouad, K., Hurd, C., Magnuson, D. S. Functional testing in animal models of spinal cord injury: Not as straight forward as one would think. Front Integr Neurosci. 7, 85 (2013).
  28. Fouad, K., Popovich, P. G., Kopp, M. A., Schwab, J. M. The neuroanatomical-functional paradox in spinal cord injury. Nat Rev Neurol. 17 (1), 53-62 (2021).
  29. Fogarty, M. J., et al. Novel regenerative drug, SPG302 promotes functional recovery of diaphragm muscle activity after cervical spinal cord injury. J Physiol. 601 (12), 2513-2532 (2023).
  30. Prakash, Y. S., Miyata, H., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Inactivity-induced remodeling of neuromuscular junctions in rat diaphragmatic muscle. Muscle Nerve. 22 (3), 307-319 (1999).
  31. Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Role of neurotrophins in recovery of phrenic motor function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169 (2), 218-225 (2009).
  32. Brown, A. D., et al. Mitochondrial adaptations to inactivity in diaphragm muscle fibers. J Appl Physiol. 133 (1), 191-204 (2022).
  33. Rana, S., Zhan, W. Z., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Disproportionate loss of excitatory inputs to smaller phrenic motor neurons following cervical spinal hemisection. J Physiol. 598 (20), 4693-4711 (2020).
  34. Mantilla, C. B., Rowley, K. L., Zhan, W. Z., Fahim, M. A., Sieck, G. C. Synaptic vesicle pools at diaphragm neuromuscular junctions vary with motoneuron soma, not axon terminal, inactivity. Neuroscience. 146 (1), 178-189 (2007).
  35. Ford, G. T., Whitelaw, W. A., Rosenal, T. W., Cruse, P. J., Guenter, C. A. Diaphragm function after upper abdominal surgery in humans. Am Rev Respir Dis. 127 (4), 431-436 (1983).
  36. Road, J. D., Burgess, K. R., Whitelaw, W. A., Ford, G. T. Diaphragm function and respiratory response after upper abdominal surgery in dogs. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 57 (2), 576-582 (1984).
  37. Rana, S., Sunshine, M. D., Greer, J. J., Fuller, D. D. Ampakines stimulate diaphragm activity after spinal cord injury. J Neurotrauma. 38 (24), 3467-3482 (2021).
  38. Ghali, M. G., Marchenko, V. Dynamic changes in phrenic motor output following high cervical hemisection in the decerebrate rat. Exp Neurol. 271, 379-389 (2015).
  39. Ditunno, J. F., Little, J. W., Tessler, A., Burns, A. S. Spinal shock revisited: A four-phase model. Spinal Cord. 42 (7), 383-395 (2004).
  40. Khurram, O. U., Gransee, H. M., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Automated evaluation of respiratory signals to provide insight into respiratory drive. Respir Physiol Neurobiol. 300, 103872 (2022).
  41. Khurram, O. U., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromotor control of spontaneous quiet breathing in awake rats evaluated by assessments of diaphragm emg stationarity. J Neurophysiol. 130 (5), 1344-1357 (2023).
  42. Rana, S., Zhan, W. Z., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Cervical spinal hemisection alters phrenic motor neuron glutamatergic mRNA receptor expression. Exp Neurol. 353, 114030 (2022).
  43. Mantilla, C. B., Greising, S. M., Zhan, W. Z., Seven, Y. B., Sieck, G. C. Prolonged c2 spinal hemisection-induced inactivity reduces diaphragm muscle specific force with modest, selective atrophy of type IIx and/or IIb fibers. J Appl Physiol. 114 (3), 380-386 (2013).
  44. Jensen, V. N., Romer, S. H., Turner, S. M., Crone, S. A. Repeated measurement of respiratory muscle activity and ventilation in mouse models of neuromuscular disease. J Vis Exp. 122, e55599 (2017).
  45. Navarrete-Opazo, A., Mitchell, G. S. Recruitment and plasticity in diaphragm, intercostal, and abdominal muscles in unanesthetized rats. J Appl Physiol. 117 (2), 180-188 (2014).
  46. Redfern, M., Hughes, R., Chaffin, D. High-pass filtering to remove electrocardiographic interference from torso emg recordings. Clin Biomech (Bristol, Avon). 8 (1), 44-48 (1993).
  47. Seven, Y. B., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Non-stationarity and power spectral shifts in emg activity reflect motor unit recruitment in rat diaphragm muscle. Respir Physiol Neurobiol. 185 (2), 400-409 (2013).
  48. Christensen, H., Sogaard, K., Jensen, B. R., Finsen, L., Sjogaard, G. Intramuscular and surface emg power spectrum from dynamic and static contractions. J Electromyogr Kinesiol. 5 (1), 27-36 (1995).
  49. Belman, M. J., Sieck, G. C. The ventilatory muscles. Fatigue, endurance and training. Chest. 82 (6), 761-766 (1982).
  50. Belman, M. J., Sieck, G. C., Mazar, A. Aminophylline and its influence on ventilatory endurance in humans. Am Rev Respir Dis. 131 (2), 226-229 (1985).
  51. Levine, S., Gillen, J., Weiser, P., Gillen, M., Kwatny, E. Description and validation of an ecg removal procedure for emgdi power spectrum analysis. J Appl Physiol. 60 (3), 1073-1081 (1986).
  52. Schweitzer, T. W., Fitzgerald, J. W., Bowden, J. A., Lynne-Davies, P. Spectral analysis of human inspiratory diaphragmatic electromyograms. J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. 46 (1), 152-165 (1979).
  53. Sharp, J. T. The respiratory muscles in emphysema. Clin Chest Med. 4 (3), 421-432 (1983).
  54. Sinderby, C., Spahija, J., Beck, J. Changes in respiratory effort sensation over time are linked to the frequency content of diaphragm electrical activity. Am J Respir Crit Care Med. 163 (4), 905-910 (2001).
  55. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183 (3), 186-192 (2012).
  56. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235 (1), 197-210 (2012).
  57. Burns, D. P., Murphy, K. H., Lucking, E. F., O’halloran, K. D. Inspiratory pressure-generating capacity is preserved during ventilatory and non-ventilatory behaviours in young dystrophic mdx mice despite profound diaphragm muscle weakness. J Physiol. 597 (3), 831-848 (2019).
  58. Dow, D. E., Mantilla, C. B., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. EMG-based detection of inspiration in the rat diaphragm muscle. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2006, 1204-1207 (2006).
  59. Rana, S., Sieck, G. C., Mantilla, C. B. Diaphragm electromyographic activity following unilateral midcervical contusion injury in rats. J Neurophysiol. 117 (2), 545-555 (2017).
This article has been published
Video Coming Soon
Keep me updated:

.

Cite This Article
Khurram, O. U., Fogarty, M. J., Zhan, W., Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Assessing Functional Recovery of Eupneic Diaphragm Activity Following Unilateral Cervical Spinal Cord Hemisection in Rats. J. Vis. Exp. (208), e66828, doi:10.3791/66828 (2024).

View Video