Summary

Bioimpresión integrada de estructuras similares a tejidos utilizando medio sub-microgel de κ-carragenina

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

Este estudio presenta un nuevo baño de suspensión de submicrogel de κ-carragenina, que muestra notables propiedades de transición reversibles de atasco-desatasco. Estos atributos contribuyen a la construcción de tejidos y órganos biomiméticos en bioimpresión 3D integrada. La impresión exitosa de tejidos similares al corazón y al esófago con alta resolución y crecimiento celular demuestra aplicaciones de bioimpresión e ingeniería de tejidos de alta calidad.

Abstract

La bioimpresión tridimensional (3D) incrustada que utiliza un baño de soporte de hidrogel granular se ha convertido en una técnica crítica para crear andamios biomiméticos. Sin embargo, la ingeniería de un medio de suspensión de gel adecuado que equilibre la deposición precisa de biotinta con la viabilidad y la función celular presenta múltiples desafíos, particularmente para lograr las propiedades viscoelásticas deseadas. Aquí, se fabrica un novedoso baño de soporte de gel de κ-carragenina a través de un proceso de molienda mecánica fácil de operar, que produce partículas submicroscópicas homogéneas. Estos submicrogeles exhiben un comportamiento de flujo típico de Bingham con un pequeño límite elástico y propiedades de adelgazamiento rápido por cizallamiento, que facilitan la deposición suave de las biotintas. Además, la transición reversible gel-sol y las capacidades de autocuración de la red de microgel κ-carragenina garantizan la integridad estructural de las construcciones impresas, lo que permite la creación de estructuras tisulares complejas de varias capas con características arquitectónicas definidas. Después de la impresión, los submicrogeles de κ-carragenina se pueden eliminar fácilmente con un simple lavado con solución salina tamponada con fosfato. La bioimpresión adicional con biotintas cargadas de células demuestra que las células dentro de las construcciones biomiméticas tienen una alta viabilidad del 92% y extienden rápidamente los seudópodos, además de mantener una proliferación robusta, lo que indica el potencial de esta estrategia de bioimpresión para la fabricación de tejidos y órganos. En resumen, este nuevo medio de submicrogel de κ-carragenina surge como una vía prometedora para la bioimpresión integrada de calidad excepcional, con profundas implicaciones para el desarrollo in vitro de tejidos y órganos modificados.

Introduction

Los andamios de ingeniería de tejidos, incluidas las fibras electrohiladas, las esponjas porosas y los hidrogeles poliméricos, desempeñan un papel fundamental en la reparación y reconstrucción de tejidos y órganos dañados al proporcionar un marco estructural que apoya el crecimiento celular, la regeneración de tejidos y la restauración de la función de los órganos 1,2,3. Sin embargo, los andamios tradicionales enfrentan desafíos para replicar con precisión las estructuras de los tejidos nativos, lo que lleva a un desajuste entre los tejidos diseñados y los naturales. Esta limitación dificulta la cicatrización eficiente de los tejidos defectuosos, lo que enfatiza la necesidad urgente de avances en el diseño de andamios para lograr una biomímesis más precisa. La bioimpresión tridimensional (3D) es una técnica de fabricación innovadora que construye con precisión estructuras complejas de tejidos biológicos capa por capa utilizando biomateriales, tintas y células4. Entre varios biomateriales, los hidrogeles poliméricos emergen como biotintas ideales con su red distintiva que facilita la encapsulación in situ de las células y apoya su crecimiento de manera crucial 5,6. Sin embargo, muchos hidrogeles blandos y altamente hidratados tienden a inducir un desenfoque o un colapso rápido de las estructuras de andamios impresas durante el proceso de impresión cuando se utilizan como biotintas. Para hacer frente a este desafío, la tecnología de bioimpresión 3D integrada emplea un baño de microgel como material de soporte, lo que permite una deposición precisa de biotinta blanda. Tras la gelificación de las biotintas de hidrogel, se obtienen andamios biónicos refinados con estructuras intrincadas mediante la eliminación del baño de microgel. Materiales como la gelatina 7,8, la agarosa9 y la goma gellan10,11 se han empleado para crear baños de microgel para la bioimpresión 3D integrada, lo que ha avanzado significativamente en la aplicación de hidrogeles blandos en la ingeniería de tejidos. Sin embargo, el tamaño de partícula a nivel de micras y no uniforme de estos geles de partículas afecta negativamente la resolución y la fidelidad de la impresión 3D 12,13,14. Existe una necesidad urgente de fabricar un flotador de suspensión similar a un gel con partículas pequeñas y uniformemente dispersas, que ofrezca ventajas para lograr una bioimpresión de alta fidelidad.

En este protocolo, se presenta un novedoso baño de suspensión de κ-carragenina granulado de sacrificio con un nivel submicrónico uniforme para la impresión 3D integrada. Este innovador comportamiento de baño de sub-microgel de transición rápida de atasco-desatasco facilita la fabricación precisa de andamios de hidrogel biomimético con alta fidelidad estructural15. Utilizando este nuevo medio de suspensión, se imprimen con éxito una serie de construcciones biomiméticas de tejidos y órganos con estructuras de tejido multicapa, empleando una biotinta compuesta por metacrilato de gelatina y fibrometacrilato de seda. En este estudio, elegimos el esófago como objeto biomimético de bioimpresión 3D principalmente porque el esófago no solo tiene una estructura de tejido de múltiples capas, sino que también su capa muscular exhibe una estructura de capas compleja circular interna y longitudinal externa. Asegurar la alineación y organización adecuadas de estas capas es esencial para la regeneración funcional de los tejidos. Por lo tanto, deseamos mucho replicar la arquitectura multicapa del esófago. Y lo que es más importante, utilizamos submicrogeles de κ-carragenina como baño de suspensión y GelMA/SFMA como biotinta para diseñar y construir un andamio biomimético para la ingeniería de tejidos. El esófago impreso se puede liberar fácilmente mediante un lavado repetido con solución salina tamponada con fosfato. Además, el baño de submicrogel de κ-carragenina está libre de sustancias citotóxicas, lo que garantiza una alta citocompatibilidad15. Las células musculares lisas cargadas dentro de andamios anisotrópicos exhiben una notable actividad de propagación. Este medio de suspensión uniforme de submicrogel ofrece una nueva vía para la fabricación de tejidos y órganos complejos a través de la bioimpresión 3D integrada.

Protocol

1. Preparación del baño de suspensión de submicrogel de κ-carragenina Prepare 500 mL de baño en suspensión de κ-carragenina (0,35% en peso/vol) añadiendo 1,75 g de polvo de κ-carragenina en 500 mL de solución salina tamponada con fosfato (PBS, pH 7,4) dentro de un frasco de vidrio de 1.000 mL. Introduzca una barra agitadora magnética de 70 mm en la botella de vidrio para agitar la mezcla acuosa. Apriete la tapa de la botella de vidrio y luego afl?…

Representative Results

El baño de gel de κ-carragenina granular se generó rompiendo mecánicamente los hidrogeles a granel en una suspensión de gel de partículas. El estudio más reciente demostró que las partículas de κ-carragenina exhibieron un diámetro promedio de aproximadamente 642 ± 65 nm con morfologías uniformes a 1000 rpm de mezcla mecánica15, significativamente menor que las dimensiones de los microgeles reportadas previamente en la literatura 16,17,18…

Discussion

La preparación de baños de suspensión de submicrogel de κ-carragenina para su uso en bioimpresión es un proceso cuidadosamente orquestado que implica varios pasos críticos para garantizar que el medio resultante exhiba las propiedades deseadas para soportar las biotintas. Inicialmente, se prepara una solución de κ-carragenina disolviendo el polvo de κ-carragenina en agua desionizada a temperaturas elevadas, creando una mezcla homogénea.</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta investigación contó con el apoyo de la Fundación de Ciencias Naturales de Ningbo (2022J121, 2023J159), el proyecto clave de la Fundación de Ciencias Naturales de la ciudad de Ningbo (2021J256), la Fundación Abierta del Laboratorio Estatal Clave de Ingeniería Molecular de Polímeros (Universidad de Fudan) (K2024-35) y el Laboratorio Clave de Medicina de Precisión para Enfermedades Ateroscleróticas de la provincia de Zhejiang, China (2022E10026). Gracias por el apoyo técnico de las Instalaciones Principales, Centro de Ciencias de la Salud de la Universidad de Ningbo.

Materials

3D bioprinter Custom-designed
4’,6-Diamidino-2-Phenylindole Solarbio Life Science C0065 Ready-to-use
405 nm UV light EFL XY-WJ01
Cell Counter Corning Cyto smart 6749
Confocal laser scanning microscope Leica STELLARIS 5
DMEM high glucose VivaCell C3113-0500 High Glucose, with Sodium Pyruvate and L-Glutamine
Dynamic rotational rheometer TA Instrument Discovery HR-20
Esophageal smooth muscle cells Supplied by the Department of Cell Biology and Regenerative Medicine, Health Science Center, Ningbo University Primary cells from the rabbit esophagus
Fetal bovine serum UE F9070L
Fluorescein isothiocyanate labeled phalloidin Solarbio Life Science CA1610 300T
Gelatin methacrylate EFL EFL-GM-60 60% substitution
k-carrageenan Aladdin C121013-100g Reagent grade
Lithium Phenyl (2,4,6-trimethylbenzoyl) phosphinate Aladdin L157759-1g 365~405 nm
Live-Dead kit beyotime C2015M
Microplate reader Potenov PT-3502B
Paraformaldehyde Solarbio Life Science P1110  4%
Penicillin/streptomycin Solarbio Life Science MA0110 100 ´
Phosphate buffered saline VivaCell C3580-0500 pH 7.2-7.4
Silk fibroin methacrylate EFL EFL-SilMA-001 39% substitution
Triton X-100 Solarbio Life Science T8200
Trypsin-EDTA VivaCell C100C1 0.25%, without phenol red

References

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Zhang, H., Zhu, T., Luo, Y., Xu, R., Li, G., Hu, Z., Cao, X., Yao, J., Chen, Y., Zhu, Y., Wu, K. Embedded Bioprinting of Tissue-like Structures Using κ-Carrageenan Sub-Microgel Medium. J. Vis. Exp. (207), e66806, doi:10.3791/66806 (2024).

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