Summary

Ingebedde bioprinting van weefselachtige structuren met behulp van κ-carrageen sub-microgelmedium

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

Deze studie introduceert een nieuw κ-carrageen sub-microgel suspensiebad, dat opmerkelijke omkeerbare jamming-unjamming overgangseigenschappen vertoont. Deze eigenschappen dragen bij aan de opbouw van biomimetische weefsels en organen in ingebedde 3D-bioprinting. Het succesvol printen van hart-/slokdarmachtige weefsels met hoge resolutie en celgroei demonstreert hoogwaardige bioprinting- en tissue engineering-toepassingen.

Abstract

Ingebed driedimensionaal (3D) bioprinten met behulp van een korrelig hydrogel-ondersteunend bad is naar voren gekomen als een cruciale techniek voor het maken van biomimetische steigers. Het ontwikkelen van een geschikt gelsuspensiemedium dat een evenwicht vindt tussen nauwkeurige afzetting van bio-inkt en de levensvatbaarheid en functie van de cel, brengt echter meerdere uitdagingen met zich mee, met name bij het bereiken van de gewenste visco-elastische eigenschappen. Hier wordt een nieuw κ-carrageengel ondersteunend bad vervaardigd door middel van een eenvoudig te bedienen mechanisch maalproces, waarbij homogene deeltjes op submicroschaal worden geproduceerd. Deze sub-microgels vertonen typisch Bingham-stromingsgedrag met een kleine vloeigrens en snelle afschuifverdunnende eigenschappen, die de soepele afzetting van bioinks vergemakkelijken. Bovendien zorgen de omkeerbare gel-sol-overgang en het zelfherstellende vermogen van het κ-carrageen-microgelnetwerk voor de structurele integriteit van geprinte constructies, waardoor complexe, meerlagige weefselstructuren met gedefinieerde architecturale kenmerken kunnen worden gecreëerd. Na het printen kunnen de κ-carrageen sub-microgels gemakkelijk worden verwijderd door een eenvoudige fosfaatgebufferde zoutoplossing. Verdere bioprinting met met cellen beladen bioinks toont aan dat cellen binnen de biomimetische constructen een hoge levensvatbaarheid van 92% hebben en pseudopodia snel uitbreiden, evenals robuuste proliferatie behouden, wat het potentieel van deze bioprintstrategie voor weefsel- en orgaanfabricage aangeeft. Samenvattend komt dit nieuwe κ-carrageen sub-microgel-medium naar voren als een veelbelovende weg voor ingebedde bioprinting van uitzonderlijke kwaliteit, met ingrijpende implicaties voor de in vitro ontwikkeling van gemanipuleerde weefsels en organen.

Introduction

Weefselmanipulatiesteigers, waaronder elektrogesponnen vezels, poreuze sponzen en polymeerhydrogels, spelen een cruciale rol bij het herstel en de reconstructie van beschadigde weefsels en organen door een structureel kader te bieden dat celgroei, weefselregeneratie en het herstel van de orgaanfunctieondersteunt1,2,3. Traditionele steigers ondervinden echter uitdagingen bij het nauwkeurig repliceren van inheemse weefselstructuren, wat leidt tot een mismatch tussen de gemanipuleerde en natuurlijke weefsels. Deze beperking belemmert de efficiënte genezing van defecte weefsels, wat de dringende noodzaak benadrukt van vooruitgang in het steigerontwerp om een nauwkeurigere biomimicry te bereiken. Driedimensionaal (3D) bioprinten is een innovatieve productietechniek die complexe biologische weefselstructuren laag voor laag nauwkeurig construeert met behulp van biomateriaalinkten en cellen4. Onder de verschillende biomaterialen komen polymeerhydrogels naar voren als ideale bioinks met hun onderscheidende netwerk dat in situ inkapseling van cellen vergemakkelijkt en hun groei cruciaal ondersteunt 5,6. Desalniettemin hebben veel zachte en sterk gehydrateerde hydrogels de neiging om tijdens het printproces vervaging of snelle ineenstorting van geprinte steigerstructuren te veroorzaken wanneer ze als bio-inkten worden gebruikt. Om deze uitdaging aan te gaan, maakt ingebedde 3D-bioprinttechnologie gebruik van een microgelbad als ondersteunend materiaal, waardoor nauwkeurige afzetting van zachte bioinkt mogelijk is. Na gelering van de hydrogel-bioinks worden verfijnde bionische steigers met ingewikkelde structuren verkregen door het microgelbad te verwijderen. Materialen zoals gelatine 7,8, agarose9 en gellangom10,11 zijn gebruikt om microgelbaden te maken voor ingebedde 3D-bioprinten, waardoor de toepassing van zachte hydrogels in weefselmanipulatie aanzienlijk wordt bevorderd. Het micronniveau en de niet-uniforme deeltjesgrootte van deze deeltjesgels hebben echter een nadelige invloed op de resolutie en getrouwheid van 3D-printen 12,13,14. Er is dringend behoefte aan het fabriceren van een gelachtige suspensiedrijver met kleine en gelijkmatig verspreide deeltjes, die voordelen biedt bij het bereiken van high-fidelity bioprinting.

In dit protocol wordt een nieuw opofferingsgranulaat κ-carrageen suspensiebad met een uniform submicronniveau gepresenteerd voor ingebed 3D-printen. Dit innovatieve sub-microgelbadgedrag van snelle overgang van vastlopen naar vastlopen vergemakkelijkt de nauwkeurige fabricage van biomimetische hydrogelsteigers met een hoge structurele getrouwheid15. Met behulp van dit nieuwe suspensiemedium wordt met succes een reeks biomimetische weefsel- en orgaanconstructies met meerlaagse weefselstructuren geprint, waarbij gebruik wordt gemaakt van een samengestelde bioink bestaande uit gelatinemethacrylaat en zijdefibromethacrylaat. In deze studie kozen we de slokdarm als het 3D-bioprintende biomimetische object, voornamelijk omdat de slokdarm niet alleen een meerlagige weefselstructuur heeft, maar ook omdat de spierlaag een interne cirkelvormige en externe longitudinale complexe gelaagdheidsstructuur vertoont. Zorgen voor een goede uitlijning en organisatie van deze lagen is essentieel voor functionele weefselregeneratie. Daarom willen we de meerlagige architectuur van de slokdarm nabootsen. Wat nog belangrijker is, we gebruikten κ-carrageen sub-microgels als het suspensiebad en GelMA/SFMA als de bioink om een biomimetische steiger voor weefselmanipulatie te ontwerpen en te bouwen. De geprinte slokdarm kan gemakkelijk worden losgelaten door herhaaldelijk met fosfaat gebufferde zoutoplossing te wassen. Bovendien is het κ-carrageen sub-microgelbad vrij van cytotoxische stoffen, wat zorgt voor een hoge cytocompatibiliteit15. De gladde spiercellen die in anisotrope steigers zijn geladen, vertonen een opmerkelijke verspreidende activiteit. Dit uniforme sub-microgel suspensiemedium biedt een nieuwe weg voor de fabricage van complexe weefsels en organen door middel van ingebed 3D-bioprinten.

Protocol

1. Bereiding van het κ-carrageen sub-microgel suspensiebad Bereid 500 ml κ-carrageen suspensiebad (0,35% gew./vol) door 1,75 g κ-carrageenpoeder toe te voegen aan 500 ml fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS, pH 7,4) in een glazen fles van 1.000 ml. Steek een magnetische roerstaaf van 70 mm in de glazen fles om het waterige mengsel te roeren. Draai de dop van de glazen fles vast en draai deze vervolgens een halve slag los. Plaats de glazen fles …

Representative Results

Het korrelige κ-carrageengelbad werd gegenereerd door de bulkhydrogels mechanisch af te breken tot een deeltjesvormige gelslurry. De meest recente studie toonde aan dat de κ-carrageendeeltjes een gemiddelde diameter vertoonden van ongeveer 642 ± 65 nm met uniforme morfologieën bij 1000 tpm mechanische menging15, aanzienlijk kleiner dan de afmetingen van microgels die eerder in de literatuur werden gerapporteerd 16,17,18</su…

Discussion

De bereiding van κ-carrageen sub-microgel suspensiebaden voor gebruik bij bioprinting is een zorgvuldig georkestreerd proces dat verschillende kritieke stappen omvat om ervoor te zorgen dat het resulterende medium de gewenste eigenschappen vertoont voor het ondersteunen van bio-inkten. In eerste instantie wordt een κ-carrageenoplossing bereid door het κ-carrageenpoeder op te lossen in gedeïoniseerd water bij verhoogde temperaturen, waardoor een homo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd ondersteund door Ningbo Natural Science Foundation (2022J121, 2023J159), Key project of Natural Science Foundation of Ningbo City (2021J256), Open Foundation of the State Key Laboratory of Molecular Engineering of Polymers (Fudan University) (K2024-35) en Key Laboratory of Precision Medicine for Atherosclerotische Diseases van de provincie Zhejiang, China (2022E10026). Bedankt voor de technische ondersteuning door het Core Facilities, Health Science Center van Ningbo University.

Materials

3D bioprinter Custom-designed
4’,6-Diamidino-2-Phenylindole Solarbio Life Science C0065 Ready-to-use
405 nm UV light EFL XY-WJ01
Cell Counter Corning Cyto smart 6749
Confocal laser scanning microscope Leica STELLARIS 5
DMEM high glucose VivaCell C3113-0500 High Glucose, with Sodium Pyruvate and L-Glutamine
Dynamic rotational rheometer TA Instrument Discovery HR-20
Esophageal smooth muscle cells Supplied by the Department of Cell Biology and Regenerative Medicine, Health Science Center, Ningbo University Primary cells from the rabbit esophagus
Fetal bovine serum UE F9070L
Fluorescein isothiocyanate labeled phalloidin Solarbio Life Science CA1610 300T
Gelatin methacrylate EFL EFL-GM-60 60% substitution
k-carrageenan Aladdin C121013-100g Reagent grade
Lithium Phenyl (2,4,6-trimethylbenzoyl) phosphinate Aladdin L157759-1g 365~405 nm
Live-Dead kit beyotime C2015M
Microplate reader Potenov PT-3502B
Paraformaldehyde Solarbio Life Science P1110  4%
Penicillin/streptomycin Solarbio Life Science MA0110 100 ´
Phosphate buffered saline VivaCell C3580-0500 pH 7.2-7.4
Silk fibroin methacrylate EFL EFL-SilMA-001 39% substitution
Triton X-100 Solarbio Life Science T8200
Trypsin-EDTA VivaCell C100C1 0.25%, without phenol red

References

  1. Xu, X., et al. Biodegradable engineered fiber scaffolds fabricated by electrospinning for periodontal tissue regeneration. J Biomater Appl. 36 (1), 55-75 (2021).
  2. Amann, E., et al. A graded, porous composite of natural biopolymers and octacalcium phosphate guides osteochondral differentiation of stem cells. Adv Healthcare Mater. 10 (6), e2001692 (2021).
  3. Afjoul, H., et al. Freeze-gelled alginate/gelatin scaffolds for wound healing applications: An in vitro, in vivo study. Mater Sci Eng C. 113, 110957 (2020).
  4. Hasanzadeh, R., et al. Biocompatible tissue-engineered scaffold polymers for 3D printing and its application for 4D printing. Chem Eng J. 476, 146616 (2023).
  5. Fu, L., et al. Cartilage-like protein hydrogels engineered via entanglement. Nature. 618 (7966), 740-747 (2023).
  6. Bertsch, P., et al. Self-healing injectable hydrogels for tissue regeneration. Chem Rev. 123 (2), 834-873 (2023).
  7. Hinton, T. J., et al. Three-dimensional printing of complex biological structures by freeform reversible embedding of suspended hydrogels. Sci Adv. 1 (9), e1500758 (2015).
  8. Wang, S., et al. 3d bioprinting of neurovascular tissue modeling with collagen-based low-viscosity composites. Adv Healthcare Mater. 12 (25), e2300004 (2023).
  9. Sreepadmanabh, M., et al. Jammed microgel growth medium prepared by flash-solidification of agarose for 3d cell culture and 3d bioprinting. Biomed Mater. 18 (4), 045011 (2023).
  10. Zeng, J., et al. Comparative analysis of the residues of granular support bath materials on printed structures in embedded extrusion printing. Biofabrication. 15 (3), 035013 (2023).
  11. Terpstra, M. L., et al. Bioink with cartilage-derived extracellular matrix microfibers enables spatial control of vascular capillary formation in bioprinted constructs. Biofabrication. 14 (3), 034104 (2022).
  12. Compaan, A. M., et al. Gellan fluid gel as a versatile support bath material for fluid extrusion bioprinting. ACS Appl Mater Inter. 11 (6), 5714-5726 (2019).
  13. Compaan, A. M., Song, K., Chai, W., Huang, Y. Cross-linkable microgel composite matrix bath for embedded bioprinting of perfusable tissue constructs and sculpting of solid objects. ACS Appl Mater Inter. 12 (7), 7855-7868 (2020).
  14. Zhang, H., et al. Direct 3D printed biomimetic scaffolds based on hydrogel microparticles for cell spheroid growth. Adv Funct Mater. 30 (13), 1910573 (2020).
  15. Zhang, H., et al. Cation-crosslinked κ-carrageenan sub-microgel medium for high-quality embedded bioprinting. Biofabrication. 16, 025009 (2024).
  16. Lee, A., et al. 3d bioprinting of collagen to rebuild components of the human heart. Science. 365 (6452), 482-487 (2019).
  17. Yao, J., et al. Slightly photo-crosslinked chitosan/silk fibroin hydrogel adhesives with hemostasis and anti-inflammation for pro-healing cyclophosphamide-induced hemorrhagic cystitis. Mater Today Bio. 25, 100947 (2024).
  18. Senior, J. J., et al. Agarose fluid gels formed by shear processing during gelation for suspended 3d bioprinting. J Vis Exp. (195), e64458 (2023).
  19. Roche, C. D., et al. durability, contractility and vascular network formation in 3d bioprinted cardiac endothelial cells using alginate-gelatin hydrogels. Front Bioeng Biotech. 9, 63657 (2021).
  20. Wang, D., et al. Microfluidic bioprinting of tough hydrogel-based vascular conduits for functional blood vessels. Sci Adv. 8 (43), (2022).
  21. Shao, L., Hou, R. X., Zhu, Y. B., Yao, Y. D. Pre-shear bioprinting of highly oriented porous hydrogel microfibers to construct anisotropic tissues. Biomater Sci. 9 (20), 6763-6771 (2021).

Play Video

Cite This Article
Zhang, H., Zhu, T., Luo, Y., Xu, R., Li, G., Hu, Z., Cao, X., Yao, J., Chen, Y., Zhu, Y., Wu, K. Embedded Bioprinting of Tissue-like Structures Using κ-Carrageenan Sub-Microgel Medium. J. Vis. Exp. (207), e66806, doi:10.3791/66806 (2024).

View Video