Summary

Встраиваемая биопечать тканеподобных структур с использованием субмикрогелевого носителя κ-каррагинана

Published: May 03, 2024
doi:

Summary

В этом исследовании представлена новая субмикрогелевая суспензионная ванна с κ-каррагинаном, обладающая замечательными обратимыми переходными свойствами заклинивания-расклинивания. Эти атрибуты способствуют созданию биомиметических тканей и органов при встроенной 3D-биопечати. Успешная печать тканей сердца/пищевода с высоким разрешением и ростом клеток демонстрирует высокое качество биопечати и приложений тканевой инженерии.

Abstract

Встроенная трехмерная (3D) биопечать с использованием гранулированной гидрогелевой поддерживающей ванны стала критически важным методом для создания биомиметических каркасов. Тем не менее, разработка подходящей гелевой суспензионной среды, которая уравновешивает точное осаждение биочернил с жизнеспособностью и функциональностью клеток, сопряжена с множеством проблем, особенно при достижении желаемых вязкоупругих свойств. Здесь новая ванна с поддержкой геля κ-каррагинана изготавливается с помощью простого в эксплуатации процесса механического измельчения, в результате чего образуются однородные субмикроразмерные частицы. Эти субмикрогели демонстрируют типичное для Бингема текучесть с малым пределом текучести и свойствами быстрого истончения при сдвиге, что способствует плавному осаждению биочернил. Кроме того, обратимый переход гель-соль и способность к самовосстановлению микрогелевой сети κ-каррагинана обеспечивают структурную целостность напечатанных конструкций, позволяя создавать сложные, многослойные тканевые структуры с определенными архитектурными особенностями. После печати субмикрогели κ-каррагинана могут быть легко удалены с помощью простой промывки с буферизацией фосфатами и солевым раствором. Дальнейшая биопечать с использованием биочернил, насыщенных клетками, демонстрирует, что клетки в биомиметических конструкциях обладают высокой жизнеспособностью в 92% и быстро удлиняют псевдоподии, а также поддерживают надежную пролиферацию, что указывает на потенциал этой стратегии биопечати для производства тканей и органов. Таким образом, эта новая субмикрогелевая среда κ-каррагинана представляет собой многообещающее направление для встраиваемой биопечати исключительного качества, имеющей глубокие последствия для разработки in vitro инженерных тканей и органов.

Introduction

Тканевые инженерные каркасы, включая электропрядущие волокна, пористые губки и полимерные гидрогели, играют ключевую роль в восстановлении и реконструкции поврежденных тканей и органов, обеспечивая структурную основу, поддерживающую рост клеток, регенерацию тканей и восстановление функции органов 1,2,3. Тем не менее, традиционные каркасы сталкиваются с проблемами точного воспроизведения нативных тканевых структур, что приводит к несоответствию между искусственными и естественными тканями. Это ограничение препятствует эффективному заживлению дефектных тканей, подчеркивая настоятельную необходимость совершенствования конструкции каркаса для достижения более точной биомимикрии. Трехмерная (3D) биопечать — это инновационная технология производства, которая точно создает сложные биологические структуры тканей слой за слоем с использованием чернил и клеток биоматериала4. Среди различных биоматериалов полимерные гидрогели являются идеальными биочернилами благодаря своей характерной сети, которая облегчает инкапсуляцию клеток in situ и, что особенно важно, поддерживает их рост 5,6. Тем не менее, многие мягкие и высокогидратированные гидрогели имеют тенденцию вызывать размытие или быстрое разрушение печатных структур каркаса в процессе печати при использовании в качестве биочернил. Чтобы решить эту проблему, встроенная технология 3D-биопечати использует микрогелевую ванну в качестве поддерживающего материала, что позволяет точно наносить мягкие биочернила. После гелеобразования гидрогелевых биочернил путем удаления микрогелевой ванны получают очищенные бионические каркасы со сложной структурой. Такие материалы, как желатин 7,8, агароза9 и геллановая камедь10,11, были использованы для создания микрогелевых ванн для встроенной 3D-биопечати, что значительно продвинуло применение мягких гидрогелей в тканевой инженерии. Тем не менее, микронный уровень и неоднородный размер частиц этих гелей отрицательно влияют на разрешение и точность 3D-печати 12,13,14. Существует острая необходимость в изготовлении гелеобразной суспензионной суспензии с мелкими и равномерно диспергированными частицами, обеспечивающими преимущества в достижении высокой точности биопечати.

В этом протоколе представлена новая ванна с суспензией κ-каррагинана из жертвенного гранулята с равномерным субмикронным уровнем для встраиваемой 3D-печати. Это инновационное поведение субмикрогелевой ванны с быстрым переходом от заклинивания к расклиниванию облегчает точное изготовление биомиметических гидрогелевых каркасов с высокой структурной точностью15. С использованием этой новой суспензионной среды успешно печатается серия биомиметических тканей и конструкций органов с многослойными тканевыми структурами с использованием композитных биочернил, состоящих из метакрилата желатина и фиброкакрилата шелка. В этом исследовании мы выбрали пищевод в качестве биомиметического объекта 3D-биопечати в основном потому, что пищевод не только имеет многослойную тканевую структуру, но и его мышечный слой демонстрирует внутреннюю круглую и внешнюю продольную сложную слоистую структуру. Обеспечение правильного выравнивания и организации этих слоев имеет важное значение для функциональной регенерации тканей. Поэтому мы очень хотим воспроизвести многослойную архитектуру пищевода. Что еще более важно, мы использовали субмикрогели κ-каррагинана в качестве суспензионной ванны и GelMA/SFMA в качестве биочернил для проектирования и создания биомиметического каркаса для тканевой инженерии. Напечатанный пищевод может быть легко освобожден путем многократного промывания фосфатно-солевым буфером. Кроме того, субмикрогелевая ванна с κ-каррагинаном не содержит цитотоксических веществ, что обеспечивает высокую цитосовместимость15. Гладкомышечные клетки, загруженные в анизотропные каркасы, проявляют заметную расширяющую активность. Эта однородная субмикрогелевая суспензионная среда открывает новые возможности для изготовления сложных тканей и органов с помощью встроенной 3D-биопечати.

Protocol

1. Приготовление субмикрогелевой суспензионной ванны с κ-каррагинаном Приготовьте 500 мл ванны с суспензией κ-каррагинана (0,35% масс./об.) путем добавления 1,75 г порошка κ-каррагинана в 500 мл раствора фосфатно-солевого буфера (PBS, pH 7,4) в стеклянном флаконе объемом 1000 мл…

Representative Results

Гранулированная ванна с κ-каррагинановым гелем была получена путем механического дробления объемных гидрогелей в твердую гелевую суспензию. Самое последнее исследование показало, что частицы κ-каррагинана имеют средний диаметр около 642 ± 65 нм с однородной морфологией при 1000 об/м?…

Discussion

Приготовление субмикрогелевых суспензионных ванн κ-каррагинана для использования в биопечати представляет собой тщательно организованный процесс, который включает в себя несколько критически важных этапов, чтобы убедиться, что полученная среда проявляет желаемые сво?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было поддержано Фондом естественных наук Нинбо (2022J121, 2023J159), ключевым проектом Фонда естественных наук города Нинбо (2021J256), Открытым фондом Государственной ключевой лаборатории молекулярной инженерии полимеров (Университет Фудань) (K2024-35) и Ключевой лабораторией точной медицины атеросклеротических заболеваний провинции Чжэцзян, Китай (2022E10026). Благодарим за техническую поддержку со стороны Центра медицинских наук Университета Нинбо Core Facilities.

Materials

3D bioprinter Custom-designed
4’,6-Diamidino-2-Phenylindole Solarbio Life Science C0065 Ready-to-use
405 nm UV light EFL XY-WJ01
Cell Counter Corning Cyto smart 6749
Confocal laser scanning microscope Leica STELLARIS 5
DMEM high glucose VivaCell C3113-0500 High Glucose, with Sodium Pyruvate and L-Glutamine
Dynamic rotational rheometer TA Instrument Discovery HR-20
Esophageal smooth muscle cells Supplied by the Department of Cell Biology and Regenerative Medicine, Health Science Center, Ningbo University Primary cells from the rabbit esophagus
Fetal bovine serum UE F9070L
Fluorescein isothiocyanate labeled phalloidin Solarbio Life Science CA1610 300T
Gelatin methacrylate EFL EFL-GM-60 60% substitution
k-carrageenan Aladdin C121013-100g Reagent grade
Lithium Phenyl (2,4,6-trimethylbenzoyl) phosphinate Aladdin L157759-1g 365~405 nm
Live-Dead kit beyotime C2015M
Microplate reader Potenov PT-3502B
Paraformaldehyde Solarbio Life Science P1110  4%
Penicillin/streptomycin Solarbio Life Science MA0110 100 ´
Phosphate buffered saline VivaCell C3580-0500 pH 7.2-7.4
Silk fibroin methacrylate EFL EFL-SilMA-001 39% substitution
Triton X-100 Solarbio Life Science T8200
Trypsin-EDTA VivaCell C100C1 0.25%, without phenol red

References

  1. Xu, X., et al. Biodegradable engineered fiber scaffolds fabricated by electrospinning for periodontal tissue regeneration. J Biomater Appl. 36 (1), 55-75 (2021).
  2. Amann, E., et al. A graded, porous composite of natural biopolymers and octacalcium phosphate guides osteochondral differentiation of stem cells. Adv Healthcare Mater. 10 (6), e2001692 (2021).
  3. Afjoul, H., et al. Freeze-gelled alginate/gelatin scaffolds for wound healing applications: An in vitro, in vivo study. Mater Sci Eng C. 113, 110957 (2020).
  4. Hasanzadeh, R., et al. Biocompatible tissue-engineered scaffold polymers for 3D printing and its application for 4D printing. Chem Eng J. 476, 146616 (2023).
  5. Fu, L., et al. Cartilage-like protein hydrogels engineered via entanglement. Nature. 618 (7966), 740-747 (2023).
  6. Bertsch, P., et al. Self-healing injectable hydrogels for tissue regeneration. Chem Rev. 123 (2), 834-873 (2023).
  7. Hinton, T. J., et al. Three-dimensional printing of complex biological structures by freeform reversible embedding of suspended hydrogels. Sci Adv. 1 (9), e1500758 (2015).
  8. Wang, S., et al. 3d bioprinting of neurovascular tissue modeling with collagen-based low-viscosity composites. Adv Healthcare Mater. 12 (25), e2300004 (2023).
  9. Sreepadmanabh, M., et al. Jammed microgel growth medium prepared by flash-solidification of agarose for 3d cell culture and 3d bioprinting. Biomed Mater. 18 (4), 045011 (2023).
  10. Zeng, J., et al. Comparative analysis of the residues of granular support bath materials on printed structures in embedded extrusion printing. Biofabrication. 15 (3), 035013 (2023).
  11. Terpstra, M. L., et al. Bioink with cartilage-derived extracellular matrix microfibers enables spatial control of vascular capillary formation in bioprinted constructs. Biofabrication. 14 (3), 034104 (2022).
  12. Compaan, A. M., et al. Gellan fluid gel as a versatile support bath material for fluid extrusion bioprinting. ACS Appl Mater Inter. 11 (6), 5714-5726 (2019).
  13. Compaan, A. M., Song, K., Chai, W., Huang, Y. Cross-linkable microgel composite matrix bath for embedded bioprinting of perfusable tissue constructs and sculpting of solid objects. ACS Appl Mater Inter. 12 (7), 7855-7868 (2020).
  14. Zhang, H., et al. Direct 3D printed biomimetic scaffolds based on hydrogel microparticles for cell spheroid growth. Adv Funct Mater. 30 (13), 1910573 (2020).
  15. Zhang, H., et al. Cation-crosslinked κ-carrageenan sub-microgel medium for high-quality embedded bioprinting. Biofabrication. 16, 025009 (2024).
  16. Lee, A., et al. 3d bioprinting of collagen to rebuild components of the human heart. Science. 365 (6452), 482-487 (2019).
  17. Yao, J., et al. Slightly photo-crosslinked chitosan/silk fibroin hydrogel adhesives with hemostasis and anti-inflammation for pro-healing cyclophosphamide-induced hemorrhagic cystitis. Mater Today Bio. 25, 100947 (2024).
  18. Senior, J. J., et al. Agarose fluid gels formed by shear processing during gelation for suspended 3d bioprinting. J Vis Exp. (195), e64458 (2023).
  19. Roche, C. D., et al. durability, contractility and vascular network formation in 3d bioprinted cardiac endothelial cells using alginate-gelatin hydrogels. Front Bioeng Biotech. 9, 63657 (2021).
  20. Wang, D., et al. Microfluidic bioprinting of tough hydrogel-based vascular conduits for functional blood vessels. Sci Adv. 8 (43), (2022).
  21. Shao, L., Hou, R. X., Zhu, Y. B., Yao, Y. D. Pre-shear bioprinting of highly oriented porous hydrogel microfibers to construct anisotropic tissues. Biomater Sci. 9 (20), 6763-6771 (2021).

Play Video

Cite This Article
Zhang, H., Zhu, T., Luo, Y., Xu, R., Li, G., Hu, Z., Cao, X., Yao, J., Chen, Y., Zhu, Y., Wu, K. Embedded Bioprinting of Tissue-like Structures Using κ-Carrageenan Sub-Microgel Medium. J. Vis. Exp. (207), e66806, doi:10.3791/66806 (2024).

View Video