Summary

Observação Direta e Mensuração Automatizada das Respostas Estomáticas a Pseudomonas syringae pv. tomate DC3000 em Arabidopsis thaliana

Published: February 09, 2024
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Summary

Aqui, apresentamos um método simples para observação direta e medida automatizada das respostas estomáticas à invasão bacteriana em Arabidopsis thaliana. Esse método utiliza um dispositivo portátil de imagem estomática, juntamente com um pipeline de análise de imagem projetado para imagens foliares capturadas pelo dispositivo.

Abstract

Os estômatos são poros microscópicos encontrados na epiderme foliar da planta. A regulação da abertura estomática é fundamental não apenas para equilibrar a absorção de dióxido de carbono para fotossíntese e perda de água transpiracional, mas também para restringir a invasão bacteriana. Enquanto as plantas fecham estômatos após o reconhecimento de micróbios, bactérias patogênicas, como Pseudomonas syringae pv. tomate DC3000 (Pto), reabra os estômatos fechados para ter acesso ao interior da folha. Nos ensaios convencionais de avaliação das respostas estomáticas à invasão bacteriana, cascas epidérmicas foliares, discos foliares ou folhas destacadas são flutuadas sobre suspensão bacteriana e, em seguida, os estômatos são observados ao microscópio seguido da medição manual da abertura estomática. No entanto, esses ensaios são pesados e podem não refletir as respostas estomáticas à invasão bacteriana natural em uma folha aderida à planta. Recentemente, foi desenvolvido um dispositivo portátil de imagem que pode observar estômatos pinçando uma folha sem desprendê-la da planta, juntamente com um pipeline de análise de imagem baseado em aprendizado profundo projetado para medir automaticamente a abertura estomática a partir de imagens foliares capturadas pelo dispositivo. Aqui, com base nesses avanços técnicos, um novo método para avaliar as respostas estomáticas à invasão bacteriana em Arabidopsis thaliana é introduzido. Este método consiste em três etapas simples: inoculação por atomização de Pto mimetizando processos naturais de infecção, observação direta de estômatos em uma folha da planta inoculada com Pto usando o dispositivo portátil de imagem e medição automatizada da abertura estomática pelo pipeline de análise de imagens. Este método foi usado com sucesso para demonstrar o fechamento e a reabertura estomáticos durante a invasão de Pto em condições que mimetizam a interação natural planta-bactéria.

Introduction

Estômatos são poros microscópicos cercados por um par de células de guarda na superfície das folhas e outras partes aéreas das plantas. Em ambientes em constante mudança, a regulação da abertura estomática é fundamental para que as plantas controlem a absorção de dióxido de carbono necessária para a fotossíntese às custas da perda de água via transpiração. Assim, a quantificação da abertura estomática tem sido fundamental para o entendimento da adaptação ambiental das plantas. No entanto, quantificar a abertura estomática é inerentemente demorado e complicado, pois requer trabalho humano para detectar e medir poros estomáticos em uma imagem foliar capturada por um microscópio. Para contornar essas limitações, vários métodos têm sido desenvolvidos para facilitar a quantificação da abertura estomática em Arabidopsis thaliana, uma planta-modelo extensivamente utilizada para estudar a biologia estomática1,2,3,4,5,6. Por exemplo, um porômetro pode ser usado para medir a taxa de transpiração como uma métrica de condutância estomática. Entretanto, este método não fornece informações diretas sobre o número estomático e a abertura que determinam a condutância estomática. Alguns estudos utilizaram técnicas de microscopia confocal destacando poros estomáticos utilizando um marcador fluorescente de actina, um corante fluorescente ou autofluorescência da parede celular 1,2,3,4,5. Embora essas abordagens facilitem a detecção de estômatos, o custo de operar uma instalação de microscopia confocal e preparar amostras de microscopia pode ser um obstáculo para a aplicação de rotina. Em um trabalho pioneiro de Sai et al., um modelo de rede neural profunda foi desenvolvido para medir automaticamente a abertura estomática a partir de imagens microscópicas de campo claro de peelings epidérmicos de A. thaliana 6. No entanto, essa inovação não isenta os pesquisadores da tarefa de preparar um peeling epidérmico para observação microscópica. Recentemente, esse obstáculo foi superado com o desenvolvimento de um aparelho portátil de imagem capaz de observar estômatos pinçando uma folha de A. thaliana, juntamente com um pipeline de análise de imagens baseado em aprendizado profundo que mede automaticamente a abertura estomática a partir de imagens foliares capturadas pelo dispositivo7.

Os estômatos contribuem para a imunidade inata das plantas contra patógenos bacterianos. A chave para essa resposta imune é o fechamento estomático que restringe a entrada bacteriana através dos poros microscópicos no interior da folha, onde patógenos bacterianos proliferam e causam doenças8. O fechamento estomático é induzido pelo reconhecimento de padrões moleculares associados a micróbios (MAMPs), moléculas imunogênicas que são frequentemente comuns a uma classe de micróbios, por receptores de reconhecimento de padrões localizados na membrana plasmática (PRRs)9. Um epítopo de 22 aminoácidos da flagelina bacteriana conhecido como flg22 é um MAMP típico que induz o fechamento estomático através do seu reconhecimento pelo PRR FLS210. Como contramedida, patógenos bacterianos como Pseudomonas syringae pv. tomate DC3000 (Pto) e Xanthomonas campestris pv. vesicatórios desenvolveram mecanismos de virulência para reabrir estômatos9,11,12. Essas respostas estomáticas a patógenos bacterianos têm sido convencionalmente analisadas em ensaios nos quais cascas epidérmicas foliares, discos foliares ou folhas destacadas são flutuadas em suspensão bacteriana e, em seguida, estômatos são observados ao microscópio seguido de medição manual da abertura estomática. No entanto, esses ensaios são pesados e podem não refletir as respostas estomáticas à invasão bacteriana natural que ocorre em uma folha aderida à planta.

Aqui, um método simples é apresentado para investigar o fechamento e a reabertura estomáticos durante a invasão de Pto sob a condição que mimetiza de perto a interação natural planta-bactéria. Este método utiliza o dispositivo portátil de imagem para observação direta de estômatos de A. thaliana em uma folha acoplada à planta inoculada com Pto, juntamente com a tubulação de análise de imagem para medição automatizada da abertura estomática.

Protocol

1. Plantas em crescimento Para quebrar a dormência, ressuspenda sementes de A. thaliana (Col-0) em água deionizada e incube-as a 4 °C por 4 dias no escuro. Semeie as sementes no solo e cresça em uma câmara equipada com luz fluorescente branca. Manter as seguintes condições de crescimento: temperatura de 22 °C, intensidade luminosa de 6.000 lux (ca. 100 μmol/m2/s) por 10 h e umidade relativa de 60%. Quando necessário, regue as plantas com um fert…

Representative Results

Após a inoculação por atomização do Pto, estômatos nas folhas aderidas às plantas inoculadas foram observados diretamente pelo aparelho portátil de imagem estomática. Usando medidas manuais e automatizadas, as mesmas imagens foliares foram usadas para calcular a abertura estomática, considerando razões entre largura e comprimento de aproximadamente 60 estômatos. Medidas manuais e automatizadas indicaram consistentemente uma diminuição na abertura estomática em plantas inoculadas com Pto e…

Discussion

Estudos prévios utilizaram cascas epidérmicas, discos foliares ou folhas destacadas para investigar respostas estomáticas a invasões bacterianas 9,11,12. Em contrapartida, o método proposto neste estudo utiliza o aparelho portátil de imagem estomática para observar diretamente estômatos em uma folha aderida à planta após inoculação por atomização por atomização, mimetizando condições naturais de invas?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos a todos os membros do projeto de pesquisa, ‘Co-criação de características adaptativas de plantas via montagem de holobionte de micróbio vegetal’, por discussões frutíferas. Este trabalho foi apoiado por Grant-in-Aid for Transformative Research Areas (21H05151 e 21H05149 para A.M. e 21H05152 para Y.T.) e Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research (22K19178 para A. M.).

Materials

Agar Nakarai tesque 01028-85
Airbrush kits ANEST IWATA MX2900 Accessory kits for SPRINT JET
Biotron Nippon Medical & Chemical Instruments LPH-411S Plant Growth Chamber with white fluorescent light
Glycerol Wako 072-00626
Half tray Sakata 72000113 A set of tray and lid
Hyponex Hyponex No catalogue number available Dilute the solution of Hyponex at a ratio of 1:2000 in deionized water for watering plants
Image J Natinal Institute of Health Download at https://imagej.nih.gov/ij/download.html Used for manual measurement of stomatal aperture
K2HPO4 Wako 164-04295
KCl Wako 163-03545
KOH Wako 168-21815 For MES-KOH
MES Wako 343-01621 For MES-KOH
Portable stomatal imaging device Phytometrics Order at https://www.phytometrics.jp/ Takagi et al.(2023) doi: 10.1093/pcp/pcad018.
Rifampicin Wako 185-01003 Dissolve in DMSO
Silwet-L77 Bio medical science BMS-SL7755 silicone surfactant used in spray inoculation
SPRINT JET ANEST IWATA IS-800 Airbrush used for spray inoculation
SuperMix A Sakata seed 72000083 Mix with Vermiculite G20 in equal proportions for preparing soil
Tryptone Nakarai tesque 35640-95
Vermiculite G20 Nittai No catalogue number available Mix with Super Mix A in equal proportions for preparing soil
White fluorescent light NEC FHF32EX-N-HX-S Used for Biotron

References

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Cite This Article
Hirata, R., Takagi, M., Toda, Y., Mine, A. Direct Observation and Automated Measurement of Stomatal Responses to Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in Arabidopsis thaliana. J. Vis. Exp. (204), e66112, doi:10.3791/66112 (2024).

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