Summary

Osservazione diretta e misurazione automatizzata delle risposte stomatiche a Pseudomonas syringae pv. pomodoro DC3000 in Arabidopsis thaliana

Published: February 09, 2024
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Summary

Qui, presentiamo un metodo semplice per l’osservazione diretta e la misurazione automatizzata delle risposte stomatiche all’invasione batterica in Arabidopsis thaliana. Questo metodo sfrutta un dispositivo di imaging stomatico portatile, insieme a una pipeline di analisi delle immagini progettata per le immagini delle foglie catturate dal dispositivo.

Abstract

Gli stomi sono pori microscopici che si trovano nell’epidermide fogliare della pianta. La regolazione dell’apertura stomatica è fondamentale non solo per bilanciare l’assorbimento di anidride carbonica per la fotosintesi e la perdita d’acqua traspirante, ma anche per limitare l’invasione batterica. Mentre le piante chiudono gli stomi al riconoscimento di microbi, i batteri patogeni, come Pseudomonas syringae pv. pomodoro DC3000 (Pto), riaprire gli stomi chiusi per accedere all’interno della foglia. Nei saggi convenzionali per la valutazione delle risposte stomatiche all’invasione batterica, i peeling epidermici delle foglie, i dischi fogliari o le foglie staccate vengono fatti galleggiare su una sospensione batterica, quindi gli stomi vengono osservati al microscopio seguiti dalla misurazione manuale dell’apertura stomatica. Tuttavia, questi saggi sono ingombranti e potrebbero non riflettere le risposte stomatiche all’invasione batterica naturale in una foglia attaccata alla pianta. Recentemente, è stato sviluppato un dispositivo di imaging portatile in grado di osservare gli stomi pizzicando una foglia senza staccarla dalla pianta, insieme a una pipeline di analisi delle immagini basata sul deep learning progettata per misurare automaticamente l’apertura stomatica dalle immagini delle foglie catturate dal dispositivo. Qui, sulla base di questi progressi tecnici, viene introdotto un nuovo metodo per valutare le risposte stomatiche all’invasione batterica in Arabidopsis thaliana . Questo metodo consiste in tre semplici fasi: inoculazione a spruzzo di Pto che imita i processi di infezione naturali, osservazione diretta degli stomi su una foglia della pianta inoculata con presa di forza utilizzando il dispositivo di imaging portatile e misurazione automatizzata dell’apertura stomatica tramite la pipeline di analisi delle immagini. Questo metodo è stato utilizzato con successo per dimostrare la chiusura e la riapertura stomatica durante l’invasione della presa di forza in condizioni che imitano da vicino l’interazione naturale pianta-batterio.

Introduction

Gli stomi sono pori microscopici circondati da un paio di cellule di guardia sulla superficie delle foglie e di altre parti aeree delle piante. In ambienti in continua evoluzione, la regolazione dell’apertura stomatica è fondamentale per le piante per controllare l’assorbimento di anidride carbonica necessario per la fotosintesi a scapito della perdita d’acqua attraverso la traspirazione. Pertanto, la quantificazione dell’apertura stomatica è stata fondamentale per comprendere l’adattamento ambientale delle piante. Tuttavia, la quantificazione dell’apertura stomatica è intrinsecamente dispendiosa in termini di tempo e ingombrante in quanto richiede il lavoro umano per individuare e misurare i pori stomatici in un’immagine fogliare catturata da un microscopio. Per aggirare queste limitazioni, sono stati sviluppati vari metodi per facilitare la quantificazione dell’apertura stomatica in Arabidopsis thaliana, una pianta modello ampiamente utilizzata per studiare la biologia stomatica 1,2,3,4,5,6. Ad esempio, un porometro può essere utilizzato per misurare il tasso di traspirazione come metrica della conduttanza stomatica. Tuttavia, questo metodo non fornisce informazioni dirette sul numero stomatico e sull’apertura che determinano la conduttanza stomatica. Alcuni studi hanno utilizzato tecniche di microscopia confocale che evidenziano i pori stomatici utilizzando un marcatore di actina fluorescente, un colorante fluorescente o l’autofluorescenza della parete cellulare 1,2,3,4,5. Sebbene questi approcci facilitino il rilevamento degli stomi, il costo sia del funzionamento di una struttura di microscopia confocale che della preparazione dei campioni di microscopia può essere un ostacolo all’applicazione di routine. In un lavoro pionieristico di Sai et al., è stato sviluppato un modello di rete neurale profonda per misurare automaticamente l’apertura stomatica da immagini microscopiche in campo chiaro di peeling epidermici di A. thaliana 6. Tuttavia, questa innovazione non esenta i ricercatori dal compito di preparare un peeling epidermico per l’osservazione microscopica. Recentemente, questo ostacolo è stato superato sviluppando un dispositivo di imaging portatile in grado di osservare gli stomi pizzicando una foglia di A. thaliana, insieme a una pipeline di analisi delle immagini basata sul deep learning che misura automaticamente l’apertura stomatica dalle immagini delle foglie catturate dal dispositivo7.

Gli stomi contribuiscono all’immunità innata delle piante contro i patogeni batterici. La chiave di questa risposta immunitaria è la chiusura stomatica che limita l’ingresso dei batteri attraverso il poro microscopico all’interno della foglia, dove i patogeni batterici proliferano e causano malattie8. La chiusura stomatica è indotta dal riconoscimento di pattern molecolari associati a microbi (MAMP), molecole immunogeniche spesso comuni a una classe di microbi, da parte dei recettori di riconoscimento dei pattern localizzati sulla membrana plasmatica (PRR)9. Un epitopo di 22 amminoacidi della flagellina batterica noto come flg22 è un tipico MAMP che induce la chiusura stomatica attraverso il suo riconoscimento da parte del PRR FLS210. Come contromisura, patogeni batterici come Pseudomonas syringae pv. pomodoro DC3000 (presa di forza) e Xanthomonas campestris pv. Le vesciche hanno sviluppato meccanismi di virulenza per riaprire gli stomi 9,11,12. Queste risposte stomatiche ai patogeni batterici sono state convenzionalmente analizzate in saggi in cui le bucce epidermiche delle foglie, i dischi fogliari o le foglie staccate vengono fatti galleggiare su una sospensione batterica, quindi gli stomi vengono osservati al microscopio seguiti dalla misurazione manuale dell’apertura stomatica. Tuttavia, questi saggi sono ingombranti e potrebbero non riflettere le risposte stomatiche all’invasione batterica naturale che si verificano in una foglia attaccata alla pianta.

Qui, viene presentato un metodo semplice per studiare la chiusura e la riapertura stomatica durante l’invasione della presa di forza in condizioni che imitano da vicino l’interazione naturale pianta-batterio. Questo metodo sfrutta il dispositivo di imaging portatile per l’osservazione diretta degli stomi di A. thaliana su una foglia attaccata alla pianta inoculata con Pto, insieme alla pipeline di analisi delle immagini per la misurazione automatizzata dell’apertura stomatica.

Protocol

1. Piante in crescita Per interrompere la dormienza, risospendere i semi di A. thaliana (Col-0) in acqua deionizzata e incubarli a 4 °C per 4 giorni al buio. Semina i semi sul terreno e coltiva in una camera dotata di luce fluorescente bianca. Mantenere le seguenti condizioni di crescita: temperatura di 22 °C, intensità luminosa di 6.000 lux (ca. 100 μmol/m2/s) per 10 ore e umidità relativa del 60%. Quando necessario, annaffia le piante con un fertil…

Representative Results

Dopo l’inoculazione spray di Pto, gli stomi sulle foglie attaccate alle piante inoculate sono stati osservati direttamente dal dispositivo di imaging stomatico portatile. Utilizzando misurazioni manuali e automatizzate, le stesse immagini delle foglie sono state utilizzate per calcolare l’apertura stomatica prendendo rapporti tra larghezza e lunghezza di circa 60 stomi. Le misurazioni manuali e automatizzate hanno indicato costantemente una diminuzione dell’apertura stomatica nelle piante inoculate con presa…

Discussion

Studi precedenti hanno utilizzato peeling epidermici, dischi fogliari o foglie staccate per studiare le risposte stomatiche alle invasioni batteriche 9,11,12. Al contrario, il metodo proposto in questo studio sfrutta il dispositivo portatile di imaging stomatico per osservare direttamente gli stomi su una foglia attaccata alla pianta dopo l’inoculazione spray di Pto, imitando le condizioni naturali di invasione batteric…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo tutti i membri del progetto di ricerca, “Co-creazione di tratti adattativi vegetali tramite assemblaggio di olobionte pianta-microbo”, per le fruttuose discussioni. Questo lavoro è stato sostenuto da Grant-in-Aid for Transformative Research Areas (21H05151 e 21H05149 ad A.M. e 21H05152 a Y.T.) e Grant-in-Aid for Challenging Exploratory Research (22K19178 ad A. M.).

Materials

Agar Nakarai tesque 01028-85
Airbrush kits ANEST IWATA MX2900 Accessory kits for SPRINT JET
Biotron Nippon Medical & Chemical Instruments LPH-411S Plant Growth Chamber with white fluorescent light
Glycerol Wako 072-00626
Half tray Sakata 72000113 A set of tray and lid
Hyponex Hyponex No catalogue number available Dilute the solution of Hyponex at a ratio of 1:2000 in deionized water for watering plants
Image J Natinal Institute of Health Download at https://imagej.nih.gov/ij/download.html Used for manual measurement of stomatal aperture
K2HPO4 Wako 164-04295
KCl Wako 163-03545
KOH Wako 168-21815 For MES-KOH
MES Wako 343-01621 For MES-KOH
Portable stomatal imaging device Phytometrics Order at https://www.phytometrics.jp/ Takagi et al.(2023) doi: 10.1093/pcp/pcad018.
Rifampicin Wako 185-01003 Dissolve in DMSO
Silwet-L77 Bio medical science BMS-SL7755 silicone surfactant used in spray inoculation
SPRINT JET ANEST IWATA IS-800 Airbrush used for spray inoculation
SuperMix A Sakata seed 72000083 Mix with Vermiculite G20 in equal proportions for preparing soil
Tryptone Nakarai tesque 35640-95
Vermiculite G20 Nittai No catalogue number available Mix with Super Mix A in equal proportions for preparing soil
White fluorescent light NEC FHF32EX-N-HX-S Used for Biotron

References

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Cite This Article
Hirata, R., Takagi, M., Toda, Y., Mine, A. Direct Observation and Automated Measurement of Stomatal Responses to Pseudomonas syringae pv. tomato DC3000 in Arabidopsis thaliana. J. Vis. Exp. (204), e66112, doi:10.3791/66112 (2024).

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