Summary

NMR-מבוסס על פעילות מבוססת על קביעת עיכוב מורכבים, IC50 ערכים, פעילות פרועובדתית, ואת הפעילות התא כולו של נוקלאוטילסייד הריבוליטיות

Published: June 30, 2019
doi:

Summary

NMR-מבוסס על פעילות שפותחה כדי לזהות ולאפיין מעכבי של שני אנזימים ריבוהיהידרוקלז. הפרוטוקולים מסופקים עבור בחני התרכובת הראשונית ב-500 μm ו 250 μm, מינון התגובה בחני לקביעת ערכי IC50 , ניקוי נוזל מונה המסך, לקפוץ-דילול מונה מסך בחני, ו בחני בתאי E. coli שלם.

Abstract

ספקטרוסקופיית NMR משמש לעתים קרובות לזיהוי ואפיון של מעכבי אנזימים בגילוי הסמים, במיוחד בהקשר של הקרנת קטע. NMR-מבוסס על פעילות מבוססת באופן אידיאלי מתאים לעבוד בריכוזים גבוהים יותר של תרכובות מבחן הנדרש כדי לזהות אלה מעכבי חלשים. הטווח הדינמי ופיזור המשמרת הכימית בניסוי NMR יכול בקלות לפתור מהדהד ממצע, מוצר, ותרכובות בדיקה. זה ניגודים עם spectrophotometric assays, שבו לקרוא בעיות התערבות לעתים קרובות נובעים תרכובות עם חופפים UV-vis פרופילים הקליטה. בנוסף, מאז הם חסרי אנזימים עיתונאי, האנזים היחיד nmr בחני אינם נוטים להיות מצמידים משולב חיוביות שווא. תכונה זו הופכת אותם לשימושיים כמו אורתוגונאליות, משלימים את ההקרנה המסורתית של הקרנת התפוקה ואת שחקן הראש. פרוטוקולים מפורטים מסופקים עבור בחני התרכובת הראשונית ב 500 μm ו 250 μm, מינון התגובה בחני לקביעת ערכי IC50 , ניקוי המונה המסך מונה, לקפוץ-דילול מונה מסך בחני, ו בחני בתאי E. coli שלם. השיטות מודגמות באמצעות שני אנזימים ריבוהידרוקלז. השימוש 1H nmr מוצג עבור אנזים ספציפי purine, בעוד 19F nmr מוצג עבור האנזים הספציפי pyrimidine. הפרוטוקולים חלים בדרך כלל על כל אנזים שבו התהודה המצע מוצר ניתן לצפות ומכובד על ידי הספקטרוסקופיית NMR. כדי להיות שימושי ביותר בהקשר של גילוי סמים, הריכוז הסופי של מצע צריך להיות לא יותר 2-3x הערך Km שלה. הבחירה של הניסוי NMR תלוי בתגובת אנזימים ומצעים זמינים, כמו גם מכשור NMR זמין.

Introduction

תהודה מגנטית גרעינית (nmr) ספקטרוסקופיית מבוססת היטב לאפיון וניטור של תגובות אנזימים1,2. הבדלים במשמרות כימיים ודפוסי צימוד משמשים להבחנה בין המצע לבין מוצרים, ועוצמות תהודה יחסיות משמשות לכמת את אחוז התגובה. הן צריכת המצע והן יצירת המוצר מתבוננים ישירות בספקטרום NMR. זה נוגד את הספקטרוסקופיית הספקטרופוטומטר או הפלואורסצנטית, שבו קורס זמן התגובה מצוין על ידי שינוי בספיגה המיוחס למינים כימיים שנצרכים או נוצרו. בדיוק כמו עם שיטות אחרות, NMR יכול לשמש כדי ללמוד תגובות אנזימים כפונקציה של טמפרטורה, pH, או תנאי פתרון אחרים, ואת ההשפעות של מעכבי ניתן לקבוע.

לאחרונה, nmr-מבוססי האנזים פעילות אנזימים הוכחו עבור הקרנת קטע3,4. Nmr מבוסס בחני מתאים באופן אידיאלי לעבוד בריכוזים גבוהים יותר של תרכובות מבחן (לעתים קרובות גבוה כמו 1 מ”מ) נדרש כדי לזהות אלה מעכבי חלשים. הטווח הדינמי ופיזור המשמרת הכימית בניסוי NMR יכול בקלות לפתור מהדהד ממצע, מוצר, ותרכובות בדיקה. זה משווה בחיוב על spectrophotometric בחני היכן בעיות התערבות קריאה-out מתעוררות לעתים קרובות מתרכובות עם פרופילי UV-vis חופפים. בנוסף, מאז הם חסרי אנזימים עיתונאי, האנזים היחיד nmr בחני אינם נוטים להיות מצמידים משולב חיוביות שווא. יתרון זה הופך אותם לשימושיים כגון אורתוגונאליות, משלימים את ההקרנה המסורתית של הקרנת תפוקה גבוההומיון שחקן ראשי.

במעבדת המחקר שלנו, בחני-מבוסס על הפעילות המבוססת משמשים כדי לזהות ולהעריך מעכבי של trichomonas וגיפרוציץ נוקלאוסייד ריבוליסיס. הטפיל ה -T וגינגיט גורם למחלות המועברות במין הלא-נגיפית הנפוצות ביותר6. התנגדות הגוברת לטיפולים הקיימים7 הוא המניע את הצורך הרומן, מנגנון מבוססי טיפולים, עם מסלול הצלה נוקלאוטיבצד העיקרי המייצג יעדים ראשוניים8. NMR-מבוסס על פעילות שפותחה עבור pyrimidine ו-purine הסגולי, ולאחר הריבוהידקלז נוקלאוטיל9, ו אדנוזין/guanosine העדפת נוקלאוטיההידרוקלז (agnh)10. התגובות מזרז על ידי שני אנזימים אלה מוצגים באיור 1. Nmr בחני נמצאים בשימוש כדי להקרין ספריות קטע עבור נקודות ההתחלה כימיים, לקבוע את IC50 ערכים, ולעשב מתחת מעכבי מבוסס מצבור או מעכבים כריכה מבוססת11. אותו הדבר גם להיות מתורגם כדי להעריך את פעילות האנזים בתאים שלמים12.

פרוטוקולים מפורטים מסופקים עבור בחני התרכובת הראשונית ב 500 μm ו 250 μm, מינון התגובה בחני לקביעת ערכי IC50 , ניקוי המונה המסך מונה, לקפוץ-דילול מונה מסך בחני, ו בחני בתאי E. coli שלם. הפרוטוקולים חלים בדרך כלל על כל אנזים שבו ניתן להבחין במצע ומוצרי מוצר ולהבחין בספקטרוסקופיית NMR. . שלוש הנחות נעשו לפשטות ראשית, המצע לא צוין. עבור הפעילות nmr-מבוסס בחני אומר להיות שימושי, הריכוז הסופי של מצע צריך להיות לא יותר מ 2-3x הערך Km 4. בדוגמאות המוצגות, הריכוזים הסופיים של אדנוזין ו 5-פלואורוורידין הם 100 μM (km = 54 μm) ו 50 μm (km = 15 μm), בהתאמה. בפרוטוקולים, השגת ריכוזים אלה מתאים 12 μL של 5 מ”מ אדנוזין או 12 μL של 2.5 mM 5-פלואור.

שנית, כמות האנזים המסופק עבור בפרוטוקולים, 5 μL, נבחר להתאים את הסכום הנדרש כדי לגרום כ 75% המרה של מצע למוצר בתוך 30 דקות. כמות זו מייצגת בדרך כלל דילול גדול ממניות אנזימים מטוהרים, והדילול חייב להיקבע מראש לכל אנזים. מטוהרים AGNH ופתרונות מלאי אנזימים מאוחסנים ב-80 ° c ב ali, אשר מספקים מספיק אנזים עבור כמה אלפי תגובות. לפיכך, גורם הדילול באופן אידיאלי צריך להיקבע או להיות מאומת כל כמה חודשים. שלישית, ניסוי 1D NMR הספציפי לא צוין. בתוצאות הנציג, 1H nmr מוצג עבור agnh10 ו- 19F nmr מוצג עבור ללא9, עם ניסוי nmr המתואר ההפניות המתאימות. הבחירה של הניסוי NMR תלוי בתגובת אנזימים ומצעים זמינים, כמו גם מכשור NMR זמין. לבסוף, יש לציין כי הגישה הניסיונית תיאר אינו תואם את הדרישות הקפדניות של nmr כמותי (qnmr)13,14. בפרוטוקול, תגובת אחוז נקבעת באמצעות השינויים היחסיים באינטנסיביות של אותה תהודה בכל קשת, ולא על-ידי קביעת ריכוזים מוחלטים. גישה זו מבטלת את הצורך ברכישת נתונים ועיבוד שינויים, כמו גם סטנדרטים פנימיים או חיצוניים, אשר נדרשים qNMR.

Protocol

1. מתחם הבדיקה הראשונית בחני ב 500 μm ו 250 μm הכינו מצע ומתחם בדיקה לתגובות. הכנת פתרונות המניה של מצע (אדנוזין או 5-פלואורוורידיין) במים ובמתחם 50 mM במבחן diמתיל סולפוקסיד (DMSO). עיין בסעיף המבוא לריכוזים של פתרון מצע לשימוש. הוסף 12 μL של מצע (אדנוזין או 5-פלואורולדין) לכל אחד מ-4 1.5 mL micro…

Representative Results

איור 2 מציג את התוצאות עבור בדיקת שתי תרכובות נגד agnh באמצעות 1H nmr לאחר סעיף 1. תגובת האנזים הוא נצפתה ביותר בקלות וכימות על ידי העלמות של אדנוזין סינגקל ובלתי מאפשרים מהדהד ב 8.48 ppm ו 6.09 ppm, בהתאמה, ואת המראה של אדנוטין סינגקל תהודה ב 8.33 לדפים לדקה כפי שנצפתה 30 דקות בקרת ספק…

Discussion

הפרוטוקולים המתוארים הם חלים בדרך כלל על אנזימים רבים, בתנאי כי מצעים ו/או מוצרים יש אותות הניתנים לפתירה בספקטרום NMR. עם זאת, חשוב כי ריכוז המצע קרוב לערך Km שלה מספיק גבוה כדי להתגלות בניסוי nmr בתוך פרק זמן סביר. המצע ריכוז לא גבוה יותר 2-3x ערך Km הוא אופטימלי לגילוי תחרות…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לד ר הדיקן בראון על מתן תרכובות מספריית החלקים של אסטרזמקה וד ר דוד פרקין למתן אנזימים בעלי הדין והאנזים. המחקר שדווח בפרסום זה נתמך על ידי המכון הלאומי לאלרגיה ומחלות זיהומיות של המוסדות הלאומיים לבריאות תחת הפרס מספר R15AI128585 ל B. J. S. התוכן הוא אך ורק באחריות המחברים ואינו מייצג בהכרח את ההשקפות הרשמיות של המכונים הלאומיים לבריאות. המחקר נתמך גם על ידי מלגת מחקר הקיץ של הוראס ג’י מק הוענק ל-S. N. M, משפחת לנדסברג המענק הוענק לג א., ולמענקים לפיתוח הפקולטה ולפרס פרדריק בטלהיים מאוניברסיטת אדלפי, לשנת B. J.

Materials

AGNH Purified in-house N/A TVAG_213720
UNH Purified in-house N/A TVAG_092730
Adenosine Sigma A9251
5-Fluorouridine Sigma F5130
Dimethyl sulfoxide-D6 Cambridge Isotope Labs DLM-10-100 D, 99.9%
Potassium phosphate monobasic Sigma P0662
Potassium phosphate dibasic Sigma P3786
Potassium chloride Sigma P9541
Deuterium oxide Cambridge Isotope Labs DLM-4-100 D, 99.9%
Hydrochloric acid Fisher Chemical A144212
Triton X-100 Sigma X100
3-(Trimethylsilyl)propionic-2,2,3,3,-d4 acid sodium salt (TSP) Sigma 269913 D, 98%
2,2,2-Trifluoroethanol-1,1-d2 Sigma 612197 D, 99.5%
Pipette Gilson F123602 PIPETMAN Classic P1000
Pipette Gilson F123601 PIPETMAN Classic P200
Pipette Gilson F123600 PIPETMAN Classic P20
Microfuge tubes Fisher Scientific 05-408-129
Conical tubes Corning 352099
Microcentrifuge Eppendorf 5418
Vortex mixer Fisher Scientific 02215365
NMR tubes Norell 502-7 Or as appropriate for the NMR
NMR spectrometer Bruker N/A AvanceIII500
Prism software GraphPad N/A Version 5.04

References

  1. Jardetzky, O., Roberts, G. C. K. . NMR in Molecular Biology. , (1981).
  2. Evans, J. N. S. . Biomolecular NMR spectroscopy. , (1995).
  3. Dalvit, C., et al. A general NMR method for rapid, efficient, and reliable biochemical screening. Journal of the American Chemical Society. 125, 14620-14625 (2003).
  4. Dalvit, C. Ligand- and substrate-based 19F NMR screening: Principles and applications to drug discovery. Progress in NMR Spectroscopy. 51, 243-271 (2007).
  5. Stockman, B. J., et al. Identification of allosteric PIF-pocket ligands for PDK1 using NMR-based fragment screening and 1H-15N TROSY experiments. Chemical Biology & Drug Design. 73, 179-188 (2009).
  6. Hirt, R. P., Sherrard, J. Trichomonas vaginalis origins, molecular pathobiology and clinical considerations. Current Opinion in Infectious Diseases. 28, 72-79 (2015).
  7. Conrad, M. D., Bradic, M., Warring, S. D., Gorman, A. W., Carlton, J. M. Getting trichy: Tools and approaches to interrogating Trichomonas vaginalis in a post-genome world. Trends in Parasitology. 29 (2013), 17-25 (2013).
  8. Versées, W., Steyaert, J. Catalysis by nucleoside hydrolases. Current Opinion in Structural Biology. 13, 731-738 (2003).
  9. Shea, T. A., et al. Identification of proton-pump inhibitor drugs that inhibit Trichomonas vaginalis uridine nucleoside ribohydrolase. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 24, 1080-1084 (2014).
  10. Beck, S., Muellers, S. N., Benzie, A. L., Parkin, D. W., Stockman, B. J. Adenosine/guanosine preferring nucleoside ribohydrolase is a distinct, druggable antitrichomonal target. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 25, 5036-5039 (2015).
  11. Muellers, S. N., et al. Ligand-efficient inhibitors of Trichomonas vaginalis adenosine/guanosine preferring nucleoside ribohydrolase. ACS Infectious Diseases. 5, 345-352 (2019).
  12. Veronesi, M., et al. Fluorine nuclear magnetic resonance-based assay in living mammalian cells. Analytical Biochemistry. 495, 52-59 (2016).
  13. Holzgrabe, U. Quantitative NMR spectroscopy in pharmaceutical applications. Progress in NMR Spectroscopy. 57, 229-240 (2010).
  14. Bharti, S. K., Roy, R. Quantitative 1H NMR spectroscopy. Trends in Analytical Chemistry. 35, 5-26 (2012).
  15. Dalvit, C., et al. Sensitivity improvement in 19F NMR-based screening experiments: Theoretical considerations and experimental applications. Journal of the American Chemical Society. 127, 13380-13385 (2005).
  16. Lambruschini, C., et al. Development of fragment-based n-FABS NMR screening applied to the membrane enzyme FAAH. ChemBioChem. 14, 1611-1619 (2013).
  17. Stockman, B. J. 2-Fluoro-ATP as a versatile tool for 19F NMR-based activity screening. Journal of the American Chemical Society. 130, 5870-5871 (2008).
  18. Aldrich, C., et al. The ecstasy and agony of assay interference compounds. ACS Central Science. 3, 143-147 (2017).
  19. Feng, B. Y., Shoichet, B. K. A detergent-based assay for the detection of promiscuous inhibitors. Nature Protocols. 1, 550-553 (2006).
  20. Copeland, R. A., Basavapathruni, A., Moyer, M., Scott, M. P. Impact of enzyme concentration and residence time on apparent activity recovery in jump dilution analysis. Analytical Biochemistry. , 206-210 (2011).
  21. Griveta, J. -. P., Delort, A. -. M. NMR for microbiology: In vivo and in situ applications. Progress in NMR Spectroscopy. 54, 1-53 (2009).
  22. Nijman, S. M. B. Functional genomics to uncover drug mechanism of action. Nature Chemical Biology. 11, 942-948 (2015).

Play Video

Cite This Article
Stockman, B. J., Kaur, A., Persaud, J. K., Mahmood, M., Thuilot, S. F., Emilcar, M. B., Canestrari, M., Gonzalez, J. A., Auletta, S., Sapojnikov, V., Caravan, W., Muellers, S. N. NMR-Based Activity Assays for Determining Compound Inhibition, IC50 Values, Artifactual Activity, and Whole-Cell Activity of Nucleoside Ribohydrolases. J. Vis. Exp. (148), e59928, doi:10.3791/59928 (2019).

View Video