Summary

הפרוטוקולים עבור הרכבת חיסון וגינלי אוסף דוגמאות במודל ניסיוני של עכבר קנדידה דלקת הנרתיק

Published: December 08, 2011
doi:

Summary

מפתח טכניקות כדי לשמש להערכת<em> קנדידה</em> דלקת הנרתיק במודל חיה ניסיוני מתוארים. שיטות תאפשר איסוף מהיר של דגימות מן הנרתיק לימפוציטים ניקוז בלוטות לימפה המותני. טכניקות אלה יכולים להצמיח מודלים העכבר של מחלות אחרות בדרכי המין הנשי התחתון.

Abstract

Vulvovaginal קנדידה (VVC), נגרמת על ידי מינים קנדידה, הוא זיהום פטרייתי בדרכי המין הנשי הנמוך שמשפיע על כ -75% מהנשים בריאים במהלך שנות הפוריות שלהן, 18,32-34. גורמים predisposing כוללים שימוש באנטיביוטיקה, סוכרת בלתי מבוקרת והן הפרעה ברמות הורמון הרבייה עקב הריון, גלולות למניעת הריון או טיפול הורמונלי 33,34. VVC חוזרים (RVVC), כמוגדר שלוש או יותר אפיזודות לשנה, משפיעה על 5 נפרד 8% מהנשים ללא גורמי predisposing 33.

דגם ניסיוני של העכבר VVC כבר נקבעה בעבר במחקר בפתוגנזה ותגובה מארח הרירית כדי קנדידה 3,4,11,16,17,19,21,25,37. מודל זה גם היה מועסק כדי לבחון טיפולים נגד פטריות פוטנציאל in vivo 13,24. המודל דורש כי בעלי חיים להישמר במצב של pseudoestrus עבור optimal קנדידה קולוניזציה / זיהום 6,14,23. בתנאים אלה, בעלי חיים מחוסן יהיה להבחין נטל פטרייתי וגינלי במשך שבועות עד חודשים. מחקרים שנעשו בעבר מראים במקביל גבוהה מאוד בין המודל בבעלי חיים הידבקות בני אדם יחסית המאפיינים החיסונית הפיזיולוגית 3,16,21. הבדלים, לעומת זאת, כוללים חוסר קנדידה כמו הפלורה בנרתיק רגיל ו-pH נייטרלי הנרתיק בעכברים.

הנה, אנחנו מדגימים סדרה של שיטות המפתח במודל דלקת הנרתיק עכבר הכוללים חיסון הנרתיק, איסוף מהיר של דגימות מהנרתיק, הערכת נטל פטרייתי וגינלי, וההכנות רקמות להפקת בידוד הסלולר /. זה ואחריו נציג תוצאות עבור המרכיבים של נוזל שטיפה וגינלית, נטל פטרייתי, וניקוז הלימפה התשואות לויקוציטים. עם שימוש בהרדמה, דגימות שטיפה ניתן לאסוף בנקודות זמן רבות על עכברים זהה להערכת האורך שלזיהום / קולוניזציה. יתר על כן, מודל זה לא דורש סוכנים ליזום מערכת החיסון לזיהום, ומאפשר מחקרים החיסונית בתנאים המארח מוגדר. לבסוף, מודל וכל טכניקה הציג כאן עלול להצמיח שימוש במתודולוגיות לבחון ומחלות זיהומיות אחרות של דרכי להוריד את המין הנשי (חיידקים, טפילים, ויראלי) ו בהתאמה הגנות המארח המקומי או מערכתי.

Protocol

1. חיסון הנרתיק עם קנדידה אלביקנס שלושה ימים לפני חיסון, ולמנוע את השימוש בבעלי חיים על מנת לחשוף את הבטן, להזריק 100 μl של שמן שומשום המכילה 0.1-0.5 מ"ג של β-estradiol תת עורי באזור הבטן התחתונה. מראש את המחט כ -5 עד 10 מ"מ ?…

Discussion

דגם ניסיוני של העכבר קנדידה דלקת הנרתיק הוקם ושימש היסטורית על בעשורים האחרונים כדי ללמוד בתגובה מארח הרירית כדי קנדידה, כמו גם בדיקות וטיפולים נגד פטריות 3,4,11,13,16,17,19,21,24, 25,37. הפרוטוקולים המוצגים כאן לשלב יעיל בשיטות פחות עתירי עבודה, ואשר נראה כי אחת מ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי R01 AI32556 (NIAID, המכון הלאומי לבריאות). עבודה זו נתמכה גם על ידי לואיזיאנה חיסון מרכז ודרום לואיזיאנה המכון לחקר מחלות מדבקות בחסות מועצת העוצרים לואיזיאנה בחלקו.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Female CBA/J mice Charles River Laboratories 01C38 5-6 weeks of age
Candida albicans (3153A) National Collection of Pathogenic Fungi, UK NCPF3153  
Sesame oil Sigma-Aldrich S3547 Does not need to be pre-sterilized before use
Β-estradiol 17-valerate Sigma-Aldrich E1631 0.1-0.5mg in sesame oil
Phytone peptone Becton Dickinson 211906 Supplement with 0.1% glucose
Trypan blue solution Sigma-Aldrich T8154  
Sabouraud dextrose agar Becton Dickinson 211584  
Collagenase type IV Sigma-Aldrich C5138 0.25%
Dispase Invitrogen 17105-041 1.7 U/ml
Wire mesh screens TWP 060X060S0065W36T No. 60 mesh, stainless
Hanks’ balanced salt solution Invitrogen 24020-117  
CytoPrep fixative Fisher Scientific 12-570-10 Preserves smear slides
Papanicolaou stain EA-65 EMD Chemicals 7054X-85  
Papanicolaou stain OG-6 EMD Chemicals 7052X-85  
Harris’ Alum hematoxylin EMD Chemicals 638A-85  
Isoflurane Baxter Healthcare NDC 10019-773-60 Used with isoflurane vaporizer or in a drop system closed anesthetic chamber

References

  1. Abraham, M. C. Inducible immunity to Trichomonas vaginalis in a mouse model of vaginal infection. Infect. Immun. 64, 3571-3571 (1996).
  2. Black, C. A. Major histocompatibility haplotype does not impact the course of experimentally induced murine vaginal candidiasis. Lab. Anim. Sci. 49 (6), 668-668 (1999).
  3. Black, C. A. Acute neutropenia decreases inflammation associated with murine vaginal candidiasis but has no effect on the course of infection. Inf. Immun. 66, 1273-1273 (1998).
  4. Black, C. A. Increased severity of Candida vaginitis in BALB/c nu/nu mice versus the parent strain is not abrogated by adoptive transfer of T cell enriched lymphocytes. J. Reprod. Immunol. 45, 1-1 (1999).
  5. Buchannan, D. L. Role of stromal and epithelial estrogen receptors in vaginal epithelial proliferation, stratification, and cornification. Endocrinology. 139 (10), 4345-4345 (1998).
  6. Clemons, K. V. Genetic susceptibility of mice to Candida albicans vaginitis correlates with host estrogen sensitivity. Infect. Immun. 72, 4878-4878 (2004).
  7. Conrady, C. D., Halford, W. P., Carr, D. J. Loss of the type I interferon pathway increases vulnerability of mice to genital Herpes simplex virus 2 infection. J. Virol. 85 (4), 1625-1625 (2011).
  8. Cunha, G. R., Cooke, P. S., Kurita, T. Role of estromal-epithelial interaction in hormonal responses. Arch Histol Cytol. 67 (5), 417-417 (2004).
  9. Enjalbert, B. A multifunctional, synthetic Caussia princeps luciferase reporter for live imaging of Candida albicans infections. 77 (11), 4847-4847 (2009).
  10. Feinen, B. Critical role of Th17 responses in a murine model of Neisseria gonorrhoeae genital infection. Mucosal Immunol. 3 (3), 312-312 (2010).
  11. Fidel, P. L. Distinct protective host defenses against oral and vaginal candidiasis. Med. Mycol. 40, 359-359 (2002).
  12. Fidel, P. L. An intravaginal live Candida challenge in humans leads to new hypotheses for the immunopathogenesis of vulvovaginal candidiasis. Infect. Immun. 72, 2939-2939 (2004).
  13. Fidel, P. L., Cutright, J. L., Sobel, J. D. Efficacy of D0870 treatment of experimental Candida vaginitis. Antimicrob. Agents. Chemother. 41, 1455-1455 (1997).
  14. Fidel, P. L., Cutright, J. L., Steele, C. Effects of Reproductive hormones on experimental vaginal candidiasis. Infect. Immun. 68, 651-651 (2000).
  15. Fidel, P. L. A murine model of Candida glabrata vaginitis. J. Inf. Dis. 173, 425-425 (1996).
  16. Fidel, P. L. Analysis of vaginal cell populations during experimental vaginal candidiasis. Inf. Immun. 67, 3135-3135 (1999).
  17. Fidel, P. L., Lynch, M. E., Sobel, J. D. Candida-specific cell-mediated immunity is demonstrable in mice with experimental vaginal candidiasis. Infect. Immun. 61, 1990-1990 (1993).
  18. Fidel, P. L., Sobel, J. D. Immunopathogenesis of recurrent vulvovaginal candidiasis. Clin. Microbiol. Rev. 9. 9, 335-335 (1996).
  19. Fidel, P. L., Sobel, J. D., Zak, O., Sande, M. . Murine Models of Candida Vaginal Infections, In Experimental models in antimicrobial chemotherapy. , 741-748 (1999).
  20. Fidel, P. L., Vazquez, J. A., Sobel, J. D. Candida glabrata: Review of epidemiology, pathogenesis, and clinical disease with comparison to C. albicans. Clin. Microbiol. Rev. 12, 80-80 (1999).
  21. Fulurija, A., Ashman, R. B., Papadimitriou, J. M. Neutrophil depletion increases susceptibility to systemic and vaginal candidiasis in mice, and reveals differences between brain and kidney in mechanisms of host resistance. Microbiology. 142, 3487-3487 (1996).
  22. Gill, N. NK cells require type I IFN receptor for antiviral responses during genital HSV-2 infection. Cell Immunol. 269 (1), 29-29 (2011).
  23. Hamad, M., Abu-Elteen, K. H., Ghaleb, M. Estrogen-dependent induction of persistent vaginal candidosis in naive mice. Cell. Immunol. 47 (7), 304-304 (2004).
  24. Hamad, M. Utility of the oestrogen-dependent vaginal candidosis murine model in evaluating the efficacy of various therapies against vaginal Candida albicans infection. Mycoses. 49 (2), 104-104 (2006).
  25. LeBlanc, D. M., Barousse, M. M., Fidel, P. L. A role for dendritic cells in immunoregulation during experimental vaginal candidiasis. Infect. Immun. 74, 3213-3213 (2006).
  26. McGrory, T., Garber, G. E. Mouse intravaginal infection with Trichomonas vaginalis and role of Lactobacillus acidophilus in sustaining infection. Infect. Immun. 60, 2375-2379 (1992).
  27. Naglik, J. R., Fidel, P. L., Odds, F. C. Animal models of mucosal Candida infection. FEMS. Microbiol. Lett. 283 (2), 129-129 (2008).
  28. Nomanbhoy, F. Vaginal and oral epithelial cell anti-Candida activity. Inf. Immun. 70, 7081-7081 (2002).
  29. Pietrella, D. A beta-glucan-conjugate vaccine and anti-beta-glucan antibodies are effective against murine vaginal candidiasis as assessed by a novel in vivo imaging technique. Vaccine. 28 (7), 1717-1717 (2010).
  30. Redondo-Lopez, V., Cook, R. N., Sobel, J. D. Emerging role of Lactobacilli in the control and maintenance of the vaginal bacterial microflora. Rev Infect Dis. 12 (5), 856-856 (1990).
  31. Saavedra, M. Local production of chemokines during experimental vaginal candidiasis. Inf. Immun. 67, 5820-5820 (1999).
  32. Sobel, J. D. Pathogenesis and epidemiology of vulvovaginal candidiasis. Ann. N. Y. Acad. Sci. 544, 547-547 (1988).
  33. Sobel, J. D. Pathogenesis and treatment of recurrent vulvovaginal candidiasis. Clin. Infect. Dis. 14, S148-S153 (1992).
  34. Sobel, J. D. Vulvovaginal candidiasis: Epidemiologic, diagnostic, and therapeutic considerations. Am. J. Obstet. Gynecol. 178 (2), 203-203 (1998).
  35. Song, W. Local and humoral immune responses against primary and repeat Neisseria gonorrhoeae genital tract infections of 17β-estradiol-treated mice. Vaccine. 26, 5741-5741 (2008).
  36. Taylor, B. N. In vivo virulence of Candida albicans isolates causing mucosal infections in people infected with the human immunodeficiency virus. J. Infect. Dis. 182, 955-955 (2000).
  37. Taylor, B. N., Saavedra, M., Fidel, P. L. Local Th1/Th2 cytokine production during experimental vaginal candidiasis. Med. Mycol. 38, 419-419 (2000).
  38. Tirabassi, R. S. A mucosal vaccination approach for herpes simplex virus type 2. Vaccine. 29 (5), 1090-1090 (2011).
  39. Broeck, W. V. a. n. d. e. n., Derore, A., Simoens, P. Anatomy and nomenclature of murine lymph nodes: descriptive and nomenclatory standardization in BALB/cAnNCrl mice. J. Immunol. Methods. 312 (1-2), 12-12 (2006).
  40. Wormley, F. L., Chaiban, J., Fidel, P. L. Cell adhesion molecule and lymphocyte activation marker expression during experimental vaginal candidiasis. J. Immunol. Methods. 69, 5072-5072 (2001).
  41. Yano, J. Epithelial cell-derived S100 calcium-binding proteins as key mediators in the hallmark acute neutrophil response during Candida vaginitis. Infect. Immun. 78 (12), 5126-5126 (2010).

Play Video

Cite This Article
Yano, J., Fidel, Jr., P. L. Protocols for Vaginal Inoculation and Sample Collection in the Experimental Mouse Model of Candida vaginitis. J. Vis. Exp. (58), e3382, doi:10.3791/3382 (2011).

View Video