تم تحديد تركيز السكروز الأمثل لاستخراج الجليكوجين في الكبد باستخدام الطرد المركزي المتدرج لكثافة السكروز. أثبتت إضافة خطوة الغليان لمدة 10 دقائق لتثبيط إنزيمات تحلل الجليكوجين أنها مفيدة.
الجليكوجين في الكبد هو بوليمر جلوكوز مفرط التفرع يشارك في الحفاظ على مستويات السكر في الدم لدى. تتأثر خصائص الجليكوجين ببنيته. ومن ثم ، فإن طريقة الاستخراج المناسبة التي تعزل عينات تمثيلية من الجليكوجين أمر بالغ الأهمية لدراسة هذا الجزيء الكبير. بالمقارنة مع طرق الاستخراج الأخرى ، فإن الطريقة التي تستخدم خطوة الطرد المركزي لتدرج كثافة السكروز يمكن أن تقلل من الضرر الجزيئي. بناء على هذه الطريقة ، يصف منشور حديث كيف اختلفت كثافة محلول السكروز المستخدم أثناء الطرد المركزي (30٪ ، 50٪ ، 72.5٪) للعثور على التركيز الأنسب لاستخراج جزيئات الجليكوجين من مجموعة متنوعة من الأحجام ، مما يحد من فقدان الجسيمات الأصغر. تم تقديم خطوة الغليان لمدة 10 دقائق لاختبار قدرتها على تشويه الإنزيمات المهينة للجليكوجين ، وبالتالي الحفاظ على الجليكوجين. تبين أن أقل تركيز للسكروز (30٪) وإضافة خطوة الغليان لاستخراج العينات الأكثر تمثيلا من الجليكوجين.
الجليكوجين هو بوليمر معقد مفرط التفرع من الجلوكوز الموجود في والفطريات والبكتيريا1. في الثدييات ، يعمل الجليكوجين في الكبد كمخزن مؤقت للجلوكوز في الدم ، ويحافظ على التوازن ، بينما يعمل الجليكوجين العضلي كخزان للجلوكوز على المدى القصير لتوفير الطاقة مباشرة2. غالبا ما يتم وصف بنية الجليكوجين بثلاثة مستويات (كما هو موضح في الشكل 1): 1. تتشكل السلاسل الخطية بواسطة مونومرات الجلوكوز عبر روابط جليكوسيدية (1→4) -α ، مع توصيل نقاط فرعية عبر (1→6) -α روابط جليكوسيدية. 2. جزيئات β متفرعة للغاية (~ 20 نانومتر في القطر) والتي ، خاصة في الأنسجة مثل العضلات الهيكلية ، تعمل كجزيئات جليكوجين مستقلة 3,4 ؛ 3. جزيئات الجليكوجين α الأكبر (يصل قطرها إلى 300 نانومتر) والتي تتكون من وحدات الجليكوجين β الأصغر ، والتي توجد في الكبد5 ، القلب6 ، وفي بعض الأنواع غير الثديية7. جزيئات α الكبدية من الفئران المصابة بالسكري هشة جزيئيا ، مع ميل إلى التحلل إلى جزيئات β عند إذابتها في ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) ، في حين أن الجسيمات α من الضوابط غير السكرية تظل دون تغيير بشكل عام. إحدى الفرضيات هي أن هذه الهشاشة قد تؤدي إلى تفاقم ضعف توازن الجلوكوز في الدم الذي يظهر في مرض السكري ، حيث من المحتمل أن تؤدي جزيئات α الهشة إلى نسب أعلى من الجسيمات β المتدهورة بسرعة8،9،10،11.
تستخدم طرق استخراج الجليكوجين التقليدية الظروف القاسية نسبيا لتعريض أنسجة الكبد لمحلول قلوي ساخن12 أو محاليل حمضية مثل حمض ثلاثي كلورو الخليك (TCA) 13 أو حمض البيركلوريك (PCA) 14. في حين أن هذه الطرق فعالة في فصل الجليكوجين عن المكونات الأخرى لأنسجة الكبد ، إلا أن هذه الطرق تؤدي حتما إلى تدهور بنية الجليكوجين إلى حد ما15,16. على الرغم من أن هذه الطرق مناسبة للقياس الكمي لمحتوى الجليكوجين ، إلا أنها ليست مثالية للدراسات التي تركز على الحصول على معلومات هيكلية عن الجليكوجين بسبب هذا الضرر الهيكلي. منذ تطوير هذه الطرق ، تم تطوير إجراء استخراج أكثر اعتدالا يستخدم المخزن المؤقت البارد Tris (يظهر أنه يمنع تدهور الجلوكوزيداز) مع الطرد المركزي الفائق لتدرج كثافة السكروز17،18،19. مع التحكم في درجة الحموضة عند ~ 8 ، لا تخضع هذه الطريقة الجليكوجين للتحلل المائي الحمضي أو القلوي الذي شوهد في الإجراءات السابقة.
يمكن للطرد المركزي الفائق المتدرج لكثافة السكروز لأنسجة الكبد المتجانسة فصل جزيئات الجليكوجين عن غالبية مواد الخلية. إذا لزم الأمر ، يمكن إجراء تنقية إضافية عن طريق كروماتوغرافيا استبعاد الحجم التحضيري ، مما يؤدي إلى جمع الجليكوجين المنقى مع البروتينات المرتبطة بالجليكوجينالمرفقة 20. على الرغم من أن هذه الطريقة ، مع ظروف أكثر اعتدالا ، من المرجح أن تحافظ على بنية الجليكوجين ، إلا أنه من الصعب منع فقدان جزء من الجليكوجين في المادة الطافية ، وخاصة جزيئات الجليكوجين الأصغر التي تكون أقل كثافة15. سبب آخر محتمل لفقدان الجليكوجين هو أن الظروف الأكثر اعتدالا تسمح ببعض التدهور الأنزيمي ، مما يؤدي إلى انخفاض غلة الجليكوجين مقارنة بطرق الاستخراج الأكثر قسوة. أفادت الأبحاث الحديثة عن تحسين طريقة استخراج الكبد والجليكوجين للحفاظ على بنية الجليكوجين21. هنا ، تم اختبار تركيزات السكروز المختلفة (30٪ ، 50٪ ، 72.5٪) لتحديد ما إذا كانت تركيزات السكروز المنخفضة تقلل من فقدان جزيئات الجليكوجين الأصغر. كان الأساس المنطقي هو أن الكثافة المنخفضة ستسمح للجسيمات الأصغر والأقل كثافة باختراق طبقة السكروز وتجميعها في الحبيبات مع بقية الجليكوجين.
في هذه الدراسة ، تمت مقارنة طرق الاستخراج مع وبدون خطوة غليان مدتها 10 دقائق لاختبار ما إذا كان يمكن تغيير طبيعة إنزيمات تحلل الجليكوجين ، مما أدى إلى استخراج المزيد من الجليكوجين الذي كان أيضا خاليا من التحلل الجزئي. تم استخدام توزيعات الحجم الجزيئي الكامل وتوزيعات طول سلسلة الجليكوجين لتحديد بنية الجليكوجين المستخرج ، على غرار تحسين استخراج النشا المنشور سابقا22. تم استخدام كروماتوغرافيا استبعاد الحجم (SEC) مع اكتشاف معامل الانكسار التفاضلي (DRI) للحصول على توزيعات حجم الجليكوجين ، والتي تصف الوزن الجزيئي الكلي كدالة للحجم الجزيئي. تم استخدام الرحلان الكهربائي للكربوهيدرات بمساعدة الفلوروفور (FACE) لتحليل توزيعات طول السلسلة ، والتي تصف العدد النسبي لسلاسل الجلوكوزيد لكل حجم معين (أو درجة البلمرة). تصف هذه الورقة منهجية استخراج الجليكوجين من أنسجة الكبد بناء على دراسة التحسين السابقة21. تشير البيانات إلى أن الطريقة الأكثر ملاءمة للحفاظ على بنية الجليكوجين هي تركيز السكروز بنسبة 30٪ مع خطوة غليان مدتها 10 دقائق.
وقد أظهرت الدراسات السابقة أن بنية الجليكوجين مهمة لخصائصه. على سبيل المثال ، يؤثر الحجم الجزيئي على معدل تحلل الجليكوجين10 ، ويؤثر توزيع طول السلسلة على قابليته للذوبان26. لفهم هذه العلاقات بشكل صحيح ، من المهم استخراج الجليكوجين بإجراء يعزل ، قدر الإمكان ، عينة ?…
The authors have nothing to disclose.
ويعرب المؤلفان عن امتنانهما للسيد غاوشينغ وو والآنسة يونوين تشو على المساعدة التقنية التي قدمها مع FACE والسيد زينشيا هو والسيد دنغبين للمساعدة التقنية مع لجنة الأوراق المالية والبورصات. ويدعم ماس زمالة كوينزلاند المتقدمة لبحوث الصناعة، ومؤسسة ماتر، وأمناء الأسهم، ومؤسسة إل جي ماكالام إست وجورج ويبر تراستس. تم دعم هذا العمل من خلال البرنامج الأكاديمي ذي الأولوية لمؤسسات التعليم العالي في جيانغسو ، ومنحة مؤسسة العلوم الطبيعية الصينية C1304013151101138 ، وبرنامج مواهب جيانغسو للابتكار وريادة الأعمال لعام 2017. تم إنشاء الشكل 1-5 باستخدام BioRender.
8-aminopyrene-1,3,6-trisulfonate (APTS) | SIGMA Aldrich | 9341 | 0.1 M solution |
Acetic acid | SIGMA Aldrich | 695092 | 0.1 M, pH 3.5 solution |
Agilent 1260 Infinity SEC system | Agilent, Santa Clara, CA, USA | Size-exclusion chromatography (SEC) | |
BKS-DB/Nju background mice | Nanjing Biomedical Research Institution of Nanjing University | ||
D-Glucose Assay Kit (GOPOD Format) | Megazyme | K-GLUC | |
Ethylenedinitrilotetraacetic acid (EDTA) | SIGMA Aldrich | 431788 | |
Homogenizer | IKA | T 25 | |
Hydrochloric acid | SIGMA Aldrich | 2104 | 0.1 M solution |
Hydrochloric acid | SIGMA Aldrich | 2104 | 0.1 M solution |
P/ACE MDQ plus system | Ab Sciex, US | Fluorophore-assisted carbohydrate electrophoresis (FACE) | |
Refractive index detector | Optilab UT-rEX, Wyatt, Santa Barbara, CA, USA) | Size-exclusion chromatography (SEC) | |
Sodium acetate | SIGMA Aldrich | 241245 | 1 M, pH 4.5 solution |
Sodium azide | SIGMA Aldrich | S2002 | |
Sodium chloride | SIGMA Aldrich | S9888 | |
Sodium cyanoborohydride | SIGMA Aldrich | 156159 | 1 M solution |
Sodium fluoride | SIGMA Aldrich | 201154 | |
Sodium hydroxide | SIGMA Aldrich | 43617 | 0.1 M solution |
Sodium nitrate | SIGMA Aldrich | NISTRM8569 | |
Sodium pyrophosphate | SIGMA Aldrich | 221368 | |
Sucrose | SIGMA Aldrich | V90016 | |
SUPREMA pre-column, 1,000 and 10,000 columns | Polymer Standards Services, Mainz, Germany | Size-exclusion chromatography (SEC) | |
Trizma | SIGMA Aldrich | T 1503 | |
Ultracentrifuge tubes | Beckman | 4 mL, Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tube, 11 x 60 mm |