概要

استخراج جزيئات الجليكوجين في الكبد لتحديد بنية الجليكوجين

Published: February 08, 2022
doi:

概要

تم تحديد تركيز السكروز الأمثل لاستخراج الجليكوجين في الكبد باستخدام الطرد المركزي المتدرج لكثافة السكروز. أثبتت إضافة خطوة الغليان لمدة 10 دقائق لتثبيط إنزيمات تحلل الجليكوجين أنها مفيدة.

Abstract

الجليكوجين في الكبد هو بوليمر جلوكوز مفرط التفرع يشارك في الحفاظ على مستويات السكر في الدم لدى. تتأثر خصائص الجليكوجين ببنيته. ومن ثم ، فإن طريقة الاستخراج المناسبة التي تعزل عينات تمثيلية من الجليكوجين أمر بالغ الأهمية لدراسة هذا الجزيء الكبير. بالمقارنة مع طرق الاستخراج الأخرى ، فإن الطريقة التي تستخدم خطوة الطرد المركزي لتدرج كثافة السكروز يمكن أن تقلل من الضرر الجزيئي. بناء على هذه الطريقة ، يصف منشور حديث كيف اختلفت كثافة محلول السكروز المستخدم أثناء الطرد المركزي (30٪ ، 50٪ ، 72.5٪) للعثور على التركيز الأنسب لاستخراج جزيئات الجليكوجين من مجموعة متنوعة من الأحجام ، مما يحد من فقدان الجسيمات الأصغر. تم تقديم خطوة الغليان لمدة 10 دقائق لاختبار قدرتها على تشويه الإنزيمات المهينة للجليكوجين ، وبالتالي الحفاظ على الجليكوجين. تبين أن أقل تركيز للسكروز (30٪) وإضافة خطوة الغليان لاستخراج العينات الأكثر تمثيلا من الجليكوجين.

Introduction

الجليكوجين هو بوليمر معقد مفرط التفرع من الجلوكوز الموجود في والفطريات والبكتيريا1. في الثدييات ، يعمل الجليكوجين في الكبد كمخزن مؤقت للجلوكوز في الدم ، ويحافظ على التوازن ، بينما يعمل الجليكوجين العضلي كخزان للجلوكوز على المدى القصير لتوفير الطاقة مباشرة2. غالبا ما يتم وصف بنية الجليكوجين بثلاثة مستويات (كما هو موضح في الشكل 1): 1. تتشكل السلاسل الخطية بواسطة مونومرات الجلوكوز عبر روابط جليكوسيدية (1→4) -α ، مع توصيل نقاط فرعية عبر (1→6) -α روابط جليكوسيدية. 2. جزيئات β متفرعة للغاية (~ 20 نانومتر في القطر) والتي ، خاصة في الأنسجة مثل العضلات الهيكلية ، تعمل كجزيئات جليكوجين مستقلة 3,4 ؛ 3. جزيئات الجليكوجين α الأكبر (يصل قطرها إلى 300 نانومتر) والتي تتكون من وحدات الجليكوجين β الأصغر ، والتي توجد في الكبد5 ، القلب6 ، وفي بعض الأنواع غير الثديية7. جزيئات α الكبدية من الفئران المصابة بالسكري هشة جزيئيا ، مع ميل إلى التحلل إلى جزيئات β عند إذابتها في ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) ، في حين أن الجسيمات α من الضوابط غير السكرية تظل دون تغيير بشكل عام. إحدى الفرضيات هي أن هذه الهشاشة قد تؤدي إلى تفاقم ضعف توازن الجلوكوز في الدم الذي يظهر في مرض السكري ، حيث من المحتمل أن تؤدي جزيئات α الهشة إلى نسب أعلى من الجسيمات β المتدهورة بسرعة8،9،10،11.

تستخدم طرق استخراج الجليكوجين التقليدية الظروف القاسية نسبيا لتعريض أنسجة الكبد لمحلول قلوي ساخن12 أو محاليل حمضية مثل حمض ثلاثي كلورو الخليك (TCA) 13 أو حمض البيركلوريك (PCA) 14. في حين أن هذه الطرق فعالة في فصل الجليكوجين عن المكونات الأخرى لأنسجة الكبد ، إلا أن هذه الطرق تؤدي حتما إلى تدهور بنية الجليكوجين إلى حد ما15,16. على الرغم من أن هذه الطرق مناسبة للقياس الكمي لمحتوى الجليكوجين ، إلا أنها ليست مثالية للدراسات التي تركز على الحصول على معلومات هيكلية عن الجليكوجين بسبب هذا الضرر الهيكلي. منذ تطوير هذه الطرق ، تم تطوير إجراء استخراج أكثر اعتدالا يستخدم المخزن المؤقت البارد Tris (يظهر أنه يمنع تدهور الجلوكوزيداز) مع الطرد المركزي الفائق لتدرج كثافة السكروز17،18،19. مع التحكم في درجة الحموضة عند ~ 8 ، لا تخضع هذه الطريقة الجليكوجين للتحلل المائي الحمضي أو القلوي الذي شوهد في الإجراءات السابقة.

يمكن للطرد المركزي الفائق المتدرج لكثافة السكروز لأنسجة الكبد المتجانسة فصل جزيئات الجليكوجين عن غالبية مواد الخلية. إذا لزم الأمر ، يمكن إجراء تنقية إضافية عن طريق كروماتوغرافيا استبعاد الحجم التحضيري ، مما يؤدي إلى جمع الجليكوجين المنقى مع البروتينات المرتبطة بالجليكوجينالمرفقة 20. على الرغم من أن هذه الطريقة ، مع ظروف أكثر اعتدالا ، من المرجح أن تحافظ على بنية الجليكوجين ، إلا أنه من الصعب منع فقدان جزء من الجليكوجين في المادة الطافية ، وخاصة جزيئات الجليكوجين الأصغر التي تكون أقل كثافة15. سبب آخر محتمل لفقدان الجليكوجين هو أن الظروف الأكثر اعتدالا تسمح ببعض التدهور الأنزيمي ، مما يؤدي إلى انخفاض غلة الجليكوجين مقارنة بطرق الاستخراج الأكثر قسوة. أفادت الأبحاث الحديثة عن تحسين طريقة استخراج الكبد والجليكوجين للحفاظ على بنية الجليكوجين21. هنا ، تم اختبار تركيزات السكروز المختلفة (30٪ ، 50٪ ، 72.5٪) لتحديد ما إذا كانت تركيزات السكروز المنخفضة تقلل من فقدان جزيئات الجليكوجين الأصغر. كان الأساس المنطقي هو أن الكثافة المنخفضة ستسمح للجسيمات الأصغر والأقل كثافة باختراق طبقة السكروز وتجميعها في الحبيبات مع بقية الجليكوجين.

في هذه الدراسة ، تمت مقارنة طرق الاستخراج مع وبدون خطوة غليان مدتها 10 دقائق لاختبار ما إذا كان يمكن تغيير طبيعة إنزيمات تحلل الجليكوجين ، مما أدى إلى استخراج المزيد من الجليكوجين الذي كان أيضا خاليا من التحلل الجزئي. تم استخدام توزيعات الحجم الجزيئي الكامل وتوزيعات طول سلسلة الجليكوجين لتحديد بنية الجليكوجين المستخرج ، على غرار تحسين استخراج النشا المنشور سابقا22. تم استخدام كروماتوغرافيا استبعاد الحجم (SEC) مع اكتشاف معامل الانكسار التفاضلي (DRI) للحصول على توزيعات حجم الجليكوجين ، والتي تصف الوزن الجزيئي الكلي كدالة للحجم الجزيئي. تم استخدام الرحلان الكهربائي للكربوهيدرات بمساعدة الفلوروفور (FACE) لتحليل توزيعات طول السلسلة ، والتي تصف العدد النسبي لسلاسل الجلوكوزيد لكل حجم معين (أو درجة البلمرة). تصف هذه الورقة منهجية استخراج الجليكوجين من أنسجة الكبد بناء على دراسة التحسين السابقة21. تشير البيانات إلى أن الطريقة الأكثر ملاءمة للحفاظ على بنية الجليكوجين هي تركيز السكروز بنسبة 30٪ مع خطوة غليان مدتها 10 دقائق.

Protocol

كبد الفأر المستخدم لتحسين هذا الإجراء21 كانت من 12 ذكورا من الفئران الخلفية BKS-DB / Nju (7.2 أسابيع من العمر ، انظر جدول المواد). تمت الموافقة على استخدام من قبل مستشفى رنمين التابع للجنة رعاية والأخلاقيات بجامعة ووهان ، إصدار IACUC رقم. 20181113 WDRM. 1 الأنسجة الحيواني?…

Representative Results

في حين أن الإجراء الموصوف أعلاه هو الطريقة المثلى (30٪ سكروز مع إضافة خطوة غليان مدتها 10 دقائق) ، يتم توفير البيانات هنا للجليكوجين المستخرج عبر ثلاثة تركيزات من السكروز (30٪ ، 50٪ ، 72.5٪) ، مع وبدون خطوة غليان ، كما هو موضح سابقا21. وفقا للبروتوكول ، يتم إعطاء النقاء والعائد الخام وإ…

Discussion

وقد أظهرت الدراسات السابقة أن بنية الجليكوجين مهمة لخصائصه. على سبيل المثال ، يؤثر الحجم الجزيئي على معدل تحلل الجليكوجين10 ، ويؤثر توزيع طول السلسلة على قابليته للذوبان26. لفهم هذه العلاقات بشكل صحيح ، من المهم استخراج الجليكوجين بإجراء يعزل ، قدر الإمكان ، عينة ?…

開示

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

ويعرب المؤلفان عن امتنانهما للسيد غاوشينغ وو والآنسة يونوين تشو على المساعدة التقنية التي قدمها مع FACE والسيد زينشيا هو والسيد دنغبين للمساعدة التقنية مع لجنة الأوراق المالية والبورصات. ويدعم ماس زمالة كوينزلاند المتقدمة لبحوث الصناعة، ومؤسسة ماتر، وأمناء الأسهم، ومؤسسة إل جي ماكالام إست وجورج ويبر تراستس. تم دعم هذا العمل من خلال البرنامج الأكاديمي ذي الأولوية لمؤسسات التعليم العالي في جيانغسو ، ومنحة مؤسسة العلوم الطبيعية الصينية C1304013151101138 ، وبرنامج مواهب جيانغسو للابتكار وريادة الأعمال لعام 2017. تم إنشاء الشكل 1-5 باستخدام BioRender.

Materials

8-aminopyrene-1,3,6-trisulfonate (APTS) SIGMA Aldrich 9341 0.1 M solution
Acetic acid SIGMA Aldrich 695092 0.1 M, pH 3.5 solution
Agilent 1260 Infinity SEC system Agilent, Santa Clara, CA, USA Size-exclusion chromatography (SEC)
BKS-DB/Nju background mice Nanjing Biomedical Research Institution of Nanjing University
D-Glucose Assay Kit (GOPOD Format) Megazyme K-GLUC
Ethylenedinitrilotetraacetic acid (EDTA) SIGMA Aldrich 431788
Homogenizer IKA T 25
Hydrochloric acid SIGMA Aldrich 2104 0.1 M solution
Hydrochloric acid SIGMA Aldrich 2104 0.1 M solution
P/ACE MDQ plus system Ab Sciex, US Fluorophore-assisted carbohydrate electrophoresis (FACE)
Refractive index detector Optilab UT-rEX, Wyatt, Santa Barbara, CA, USA) Size-exclusion chromatography (SEC)
Sodium acetate SIGMA Aldrich 241245 1 M, pH 4.5 solution
Sodium azide SIGMA Aldrich S2002
Sodium chloride SIGMA Aldrich S9888
Sodium cyanoborohydride SIGMA Aldrich 156159 1 M solution
Sodium fluoride SIGMA Aldrich 201154
Sodium hydroxide SIGMA Aldrich 43617 0.1 M solution
Sodium nitrate SIGMA Aldrich NISTRM8569
Sodium pyrophosphate SIGMA Aldrich 221368
Sucrose SIGMA Aldrich V90016
SUPREMA pre-column, 1,000 and 10,000 columns Polymer Standards Services, Mainz, Germany Size-exclusion chromatography (SEC)
Trizma SIGMA Aldrich T 1503
Ultracentrifuge tubes Beckman 4 mL, Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tube, 11 x 60 mm

参考文献

  1. Hills, D. M., Heller, H. C., Hacker, S. D., Hall, D. W., Sadava, D., Laskowski, M., Freeeman, W. H. . Life: the science of biology. 12th edn. , (2020).
  2. Calder, P. C., Geddes, R. Glycogen of high molecular weight from mammalian muscle. Carbohydrate Research. 135 (2), 249-256 (1985).
  3. Rybicka, K. K. Glycosomes – The organelles of glycogen metabolism. Tissue and Cell. 28 (3), 253-265 (1996).
  4. Takeuchi, T., Iwamasa, T., Miyayama, H. Ultrafine structure of glycogen macromolecules in mammalian-tissues. Journal of Electron Microscopy. 27 (1), 31-38 (1978).
  5. Drochmans, P. Morphologie du glycogene – etude au microscope electronique de colorations negatives du glycogene particulaire. Journal of Ultrastructure Research. 6, 141-163 (1962).
  6. Besford, Q. A., et al. The structure of cardiac glycogen in healthy mice. International Journal of Biological Macromolecules. 51 (5), 887-891 (2012).
  7. Lumsden, R. D. Macromolecular structure of glycogen in some cyclophyllidean and trypanorhynch cestodes. Journal of Parasitology. 51 (4), 501-515 (1965).
  8. Deng, B., et al. Molecular structure of glycogen in diabetic liver. Glycoconjugate Journal. 32 (3-4), 113-118 (2015).
  9. Deng, B., et al. The mechanism for stopping chain and total-molecule growth in complex branched polymers, exemplified by glycogen. Biomacromolecules. 16 (6), 1870-1872 (2015).
  10. Jiang, X., et al. The molecular-size dependence of glycogen enzymatic degradation rate and its importance for diabetes. European Polymer Journal. 82 (1), 175-180 (2016).
  11. Hu, Z., et al. Glycogen structure in type 1 diabetic mice: towards understanding the origin of diabetic glycogen molecular fragility. International Journal of Biological Macromolecules. 128, 665-672 (2019).
  12. Suzuki, Y., et al. Insulin control of glycogen metabolism in knockout mice lacking the muscle-specific protein phosphatase PP1G/R-GL. Molecular and Cellular Biology. 21 (8), 2683-2694 (2001).
  13. Stetten, M. R., Katzen, H. M., Stetten, D. Metabolic inhomogeneity of glycogen as a function of molecular weight. Journal of Biological Chemistry. 122 (2), 587-599 (1956).
  14. Nahorski, S. R., Rogers, K. J. An enzymic fluorometric micro method for determination of glycogen. Analytical Biochemistry. 49 (2), 492-497 (1972).
  15. Wang, Z., et al. Molecular structural features of glycogen in the kidneys of diabetic rats. Carbohydrate Polymers. 229, 115526 (2020).
  16. Wang, L., et al. Molecular structure of glycogen in Escherichia coli. Biomacromolecules. 20 (7), 2821-2829 (2019).
  17. Parker, G. J., Koay, A., Gilbert-Wilson, R., Waddington, L. J., Stapleton, D. AMP-activated protein kinase does not associate with glycogen alpha-particles from rat liver. Biochemical and Biophysical Research Communications. 362, 811-815 (2007).
  18. Ryu, J. -. H., et al. Comparative structural analyses of purified glycogen particles from rat liver, human skeletal muscle and commercial preparations. International Journal of Biological Macromolecules. 45 (5), 478-482 (2009).
  19. Sullivan, M. A., et al. Nature of alpha and beta particles in glycogen using molecular size distributions. Biomacromolecules. 11 (4), 1094-1100 (2010).
  20. Tan, X., et al. A new non-degradative method to purify glycogen. Carbohydrate Polymers. 147 (1), 165-170 (2016).
  21. Wang, Z., Liu, Q., Wang, L., Gilbert, R. G., Sullivan, M. A. Optimization of liver glycogen extraction when considering molecular fine structure. Carbohydrate Polymers. 261, 117887 (2020).
  22. Zhao, Y., Tan, X., Wu, G., Gilbert, R. G. Using molecular fine structure to identify optimal methods of extracting starch. Starch – Starke. 72, 1900214 (2020).
  23. Shokri-Afra, H., Ostovar-Ravari, A., Rasouli, M. Improvement of the classical assay method for liver glycogen fractions: ASG is the main and metabolic active fraction. European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 20, 4328-4336 (2016).
  24. Kerly, M. The solubility of glycogen. The Biochemical Journal. 24, 67-76 (1930).
  25. Sullivan, M. A., et al. Improving size-exclusion chromatography for glycogen. Journal of Chromatography A. 1332 (1), 21-29 (2014).
  26. Sullivan, M. A., et al. Skeletal muscle glycogen chain length correlates with insolubility in mouse models of polyglucosan-associated neurodegenerative diseases. Cell Reports. 27 (5), 1334-1344 (2019).
  27. Orrell, S. A., Bueding, E. A comparison of products obtained by various procedures used for the extraction of glycogen. Journal of Biological Chemistry. 239 (12), 4021-4026 (1964).
  28. Sullivan, M. A., et al. Molecular insights into glycogen alpha-particle formation. Biomacromolecules. 13 (11), 3805-3813 (2012).

Play Video

記事を引用
Wang, Z., Liu, Q., Wang, L., Gilbert, R. G., Sullivan, M. A. The Extraction of Liver Glycogen Molecules for Glycogen Structure Determination. J. Vis. Exp. (180), e63088, doi:10.3791/63088 (2022).

View Video