Descrevemos aqui métodos para induzir e analisar a remodelação olfativa dependente da experiência dos glomérulos sinápticos do lobo antenal no cérebro juvenil de Drosophila .
A experiência sensorial olfativa no início da vida induz uma remodelação dramática dos glomérulos sinápticos no cérebro juvenil de Drosophila , que é experimentalmente dependente da dose, temporalmente restrita e transitoriamente reversível apenas em um período crítico curto e bem definido. A direcionalidade da remodelação da conectividade sináptica do circuito cerebral é determinada pelo odorante específico que atua na classe de receptores respondentes dos neurônios sensoriais olfativos. Em geral, cada classe de neurônios expressa apenas um único receptor odorífero e inerva um único glomérulo sináptico olfatório. No modelo genético de Drosophila , toda a gama de glomérulos olfativos foi mapeada com precisão pela capacidade de resposta ao odor e produção comportamental. O odorante de butirato de etila (EB) ativa os neurônios receptores de Or42a que inervam o glomérulo VM7. Durante o período crítico do início da vida, a experiência da EB impulsiona a eliminação da sinapse dependente da dose nos neurônios sensoriais olfativos Or42a. Períodos cronometrados de exposição ao odor EB dosado permitem a investigação da poda de conectividade do circuito dependente da experiência no cérebro juvenil. A imagem de microscopia confocal dos glomérulos sinápticos do lobo antenal é feita com marcadores transgênicos acionados pelo receptor Or42a que fornecem quantificação do número de sinapses e do volume de inervação. O sofisticado kit de ferramentas genéticas de Drosophila permite a dissecação sistemática dos mecanismos celulares e moleculares que medeiam a remodelação do circuito cerebral.
A remodelação dos circuitos cerebrais juvenis durante o início da vida representa a última chance de mudanças de conectividade sináptica em larga escala para corresponder ao ambiente altamente variável e imprevisível em que um animal nasce. Como o grupo mais abundante de animais, os insetos compartilham esse mecanismo de remodelação do período crítico fundamental e evolutivamente conservado1. Os períodos críticos abrem com o início da entrada sensorial, exibem mudanças reversíveis no circuito para otimizar a conectividade e, em seguida, fecham quando as forças de estabilização resistem a uma remodelação adicional2. Os insetos são particularmente dependentes de informações sensoriais olfativas e mostram um período crítico olfativo bem definido. Drosophila fornece um excelente modelo genético para investigar esse período crítico dependente da experiência no cérebro juvenil. A experiência com odor durante os primeiros dias após a eclosão impulsiona mudanças marcantes na conectividade do circuito em glomérulos sinápticos identificados individualmente 3,4. A direção da remodelação depende da experiência específica do odorante de entrada. Alguns odores causam um aumento no volume do glomérulo sináptico por alguns dias após a eclosão (dpe) 3 , 5 , 6 , 7 , enquanto outros odores causam uma rápida eliminação das sinapses durante o período crítico de 0-2 dpe, resultando em diminuição do volume de inervação8 , 9 , 10. Especificamente, a experiência com odor de butirato de etila (EB) impulsiona a poda sináptica dependente da dose dos neurônios do receptor olfativo Or42a apenas durante esse período crítico de início de vida8. A eliminação da sinapse é completamente reversível pela modulação da entrada de odor EB dentro do período crítico, mas torna-se permanente após o encerramento do período crítico. Essa poda sináptica dependente da experiência olfativa fornece um sistema experimental valioso para elucidar os mecanismos temporalmente restritos subjacentes à remodelação do circuito cerebral juvenil.
Aqui, apresentamos um protocolo detalhado usado para induzir e analisar a poda sináptica dependente da experiência EB de neurônios sensoriais olfativos do receptor Or42a durante o período crítico do início da vida. Mostramos que os terminais sinápticos Or42a no glomérulo VM7 do lobo antenal podem ser especificamente marcados por transgenicamente conduzindo um marcador mCD8::GFP amarrado à membrana, diretamente fundido ao promotor Or42a (Or42a-mCD8::GFP)11 ou usando o sistema de expressão binária Gal4/UAS (Or42a-Gal4 conduzindo UAS-mCD8::GFP)12. As sinapses individuais do neurônio Or42a podem ser marcadas de forma semelhante usando a expressão transgênica direcionada de marcadores de zona ativa pré-sináptica fundidos a uma série de tags fluorescentes (por exemplo, Bruchpilot :: RFP) 8 ou um sinal denso em elétrons para análises de sinapses ultraestruturais (por exemplo, miniSOG-mCherry) 8. Os terminais sinápticos Or42a podem ser visualizados com uma combinação de microscopia confocal de varredura a laser e microscopia eletrônica de transmissão. Mostramos que a poda dos glomérulos sinápticos de Or42a é dependente da dose de EB, escalando para a concentração da experiência de odor cronometrada. A porcentagem de odor EB dissolvido no óleo mineral usado como veículo pode ser variada, assim como a duração cronometrada da exposição ao odor em animais em estágio de desenvolvimento. Finalmente, mostramos os métodos usados para analisar a extensão da poda dos glomérulos sinápticos medindo a intensidade e o volume da fluorescência da inervação VM7. O número de sinapses também pode ser quantificado contando os pontos sinápticos marcados e medindo os parâmetros da ultraestrutura sináptica usando microscopia eletrônica de transmissão8. No geral, o protocolo mostrado aqui é uma abordagem poderosa que permite a dissecação sistemática dos mecanismos celulares e moleculares que medeiam a poda da conectividade sináptica do circuito olfativo da Drosophila durante um período crítico juvenil. A configuração geral de exposição ao odor descrita neste estudo foi utilizada em estudos anteriores usando outros odores e testando outros glomérulos 3,7.
O protocolo de exposição a odores e imagens cerebrais apresentado aqui pode ser usado para induzir e quantificar de forma confiável a poda de glomérulos sinápticos de neurônios sensoriais olfativos dependentes da experiência durante um período crítico no início da vida. Estudos anteriores utilizando esse paradigma de tratamento para explorar a remodelação do circuito olfatório iniciaram a exposição ao odorante no2º dia após a eclosão<s…
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos aos outros membros do Broadie Lab por sua valiosa contribuição. As figuras foram criadas usando BioRender.com. Este trabalho foi apoiado por subsídios do Instituto Nacional de Saúde MH084989 e NS131557 para K.B.
For Odor Exposure | |||
Drosophila vials | Genesee Scientific | 32-110 | |
Ethyl butyrate | Sigma Aldrich | E15701 | |
Microcentrifuge tubes | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
Mineral oil | Sigma Aldrich | M3516 | |
Odor chambers | Glasslock | ||
Paint brushes | Winsor & Newton | Series 233 | |
Parafilm | Thermofisher | S37440 | |
Wire mesh | Scienceware | 378460000 | |
Brain Dissection | |||
Ethanol, 190 proof | Decon Labs | 2801 | Diluted to 70% |
Forceps | Fine Science Tools | 11251-30 | Dumont #5 |
Paraformaldehyde | Electron Microscope Sciences | 157-8 | Diluted to 4% |
Petri dishes | Fisher Scientific | 08-757-100B | |
Phosphate-buffered saline | Thermo Fisher Scientific | 70011-044 | Diluted to 1x |
Sucrose | Fisher Scientific | BP220-1 | |
Sylgard | Electron Microscope Sciences | 24236-10 | |
Triton-X 100 | Fisher Scientific | BP151-100 | |
Brain Immunocytochemistry | |||
488 goat anti-chicken | Invitrogen | A11039 | |
546 goat anti-rat | Invitrogen | A11081 | |
Bovine serum albumin | Sigma Aldrich | A9647 | |
Chicken anti-GFP | Abcam | 13970 | |
Coverslips | Avantor | 48366-067 | 25 x 25 mm |
Double-sided tape | Scotch | 34-8724-5228-8 | |
Fluoromount-G | Electron Microscope Sciences | 17984-25 | |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-2 | 75 x 25 mm |
Nail polish | Sally Hansen | 109 | Xtreme Wear, Invisible |
Normal goat serum | Sigma Aldrich | G9023 | |
Rat anti-CadN | Developmental Studies Hybridoma Bank | AB_528121 | |
Confocal/Analysis | |||
Any computer/laptop | |||
Confocal microscope | Carl Zeiss | Zeiss 510 META | |
Fiji software | Fiji | Version 2.14.0/1.54f |