Summary

Diferenciação de Células-Tronco Pluripotentes Humanas em Aglomerados de Ilhotas Produtoras de Insulina

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

A diferenciação de células-tronco em ilhotas fornece uma solução alternativa ao tratamento convencional do diabetes e à modelagem da doença. Descrevemos um protocolo detalhado de cultura de células-tronco que combina um kit de diferenciação comercial com um método previamente validado para auxiliar na produção de ilhotas derivadas de células-tronco secretoras de insulina em um prato.

Abstract

A diferenciação de células-tronco pluripotentes humanas (hPSCs) em células beta secretoras de insulina fornece material para investigar a função das células beta e o tratamento do diabetes. No entanto, permanecem desafios na obtenção de células beta derivadas de células-tronco que mimetizem adequadamente as células beta humanas nativas. Com base em estudos anteriores, células de ilhotas derivadas de hPSC foram geradas para criar um protocolo com melhores resultados de diferenciação e consistência. O protocolo aqui descrito utiliza um kit progenitor pancreático durante os estágios 1-4, seguido por um protocolo modificado de um artigo publicado anteriormente em 2014 (doravante denominado “protocolo R”) durante os estágios 5-7. Procedimentos detalhados para o uso do kit de progenitores pancreáticos e placas de micropoços de 400 μm de diâmetro para gerar clusters de progenitores pancreáticos, protocolo R para diferenciação endócrina em um formato de suspensão estática de 96 poços e caracterização in vitro e avaliação funcional de ilhotas derivadas de hPSC são incluídos. O protocolo completo leva 1 semana para a expansão inicial da hPSC seguida por ~5 semanas para obter ilhotas hPSC produtoras de insulina. Pessoal com técnicas básicas de cultura de células-tronco e treinamento em ensaios biológicos pode reproduzir esse protocolo.

Introduction

As células beta pancreáticas secretam insulina respondendo a aumentos nos níveis de glicose no sangue. Pacientes sem produção suficiente de insulina devido à destruição autoimune das células beta no diabetes tipo 1 (DM1)1, ou devido à disfunção das células beta no diabetes tipo 2 (DM2)2, são tipicamente tratados com a administração de insulina exógena. Apesar dessa terapia que salva vidas, ela não pode corresponder precisamente ao controle requintado da glicose no sangue, como alcançado pela secreção dinâmica de insulina das células beta de boa-fé. Como tal, os pacientes frequentemente sofrem as consequências de episódios hipoglicêmicos com risco de vida e outras complicações resultantes de excursões hiperglicêmicas crônicas. O transplante de ilhotas de cadáveres humanos restaura com sucesso o controle glicêmico rigoroso em pacientes com DM1, mas é limitado pela disponibilidade de ilhotas doadoras e dificuldades na purificação de ilhotas saudáveis para transplante 3,4. Este desafio pode, em princípio, ser resolvido com o uso de hPSCs como material de partida alternativo.

As estratégias atuais de geração de ilhotas secretoras de insulina a partir de hPSCs in vitro frequentemente visam mimetizar o processo de desenvolvimento do pâncreas embrionário in vivo 5,6. Isso requer conhecimento das vias de sinalização responsáveis e adição cronometrada de fatores solúveis correspondentes para mimetizar estágios críticos do pâncreas embrionário em desenvolvimento. O programa pancreático inicia-se com o comprometimento na endoderme definitiva, que é marcada pelos fatores de transcrição forkhead box A2 (FOXA2) e região determinante do sexo Y-box 17 (SOX17)7. A diferenciação sucessiva da endoderme definitiva envolve a formação de um tubo intestinal primitivo, padronizado em um intestino anterior posterior que expressa a homeocaixa 1 pancreática e duodenal (PDX1)7,8,9, e expansão epitelial em progenitores pancreáticos que co-expressam PDX1 e NK6 homeobox 1 (NKX6.1)10,11.

Um maior comprometimento com as células das ilhotas endócrinas é acompanhado pela expressão transitória do regulador mestre pró-endócrino neurogenina-3 (NGN3)12 e indução estável dos principais fatores de transcrição diferenciação neuronal 1 (NEUROD1) e NK2 homeobox 2 (NKX2.2)13. As principais células que expressam hormônios, como células beta produtoras de insulina, células alfa produtoras de glucagon, células delta produtoras de somatostatina e células PPY produtoras de polipeptídeos pancreáticos, são subsequentemente programadas. Com esse conhecimento, bem como descobertas de extensos estudos de triagem de drogas em alto rendimento, avanços recentes têm possibilitado a geração de ilhotas hPSC com células semelhantes às células beta capazes de secreção de insulina 14,15,16,17,18,19.

Protocolos step-wise têm sido relatados para gerar células beta responsivas à glicose 6,14,18,19. Com base nesses estudos, o presente protocolo envolve o uso de um kit de progenitores pancreáticos para gerar células progenitoras pancreáticas PDX1+/NKX6.1+ em uma cultura plana, seguido pela agregação da placa de micropoços em agrupamentos de tamanho uniforme e diferenciação adicional para ilhotas hPSC secretoras de insulina com o protocolo R em uma cultura de suspensão 3D estática. Análises de controle de qualidade, incluindo citometria de fluxo, imunomarcação e avaliação funcional, são realizadas para caracterização rigorosa das células diferenciadoras. Este trabalho fornece uma descrição detalhada de cada etapa da diferenciação dirigida e delineia as abordagens de caracterização in vitro.

Protocol

Este protocolo é baseado no trabalho com linhagens hPSC, incluindo H1, HUES4 PDXeG e Mel1 INSGFP/W, em condições livres de alimentadores. Um procedimento passo a passo é detalhado nesta seção, com dados de apoio da diferenciação de Mel1 INSGFP/W na seção de resultados representativos. Recomendamos que seja necessária uma otimização adicional ao trabalhar com outras linhas hPSC que não são indicadas aqui. Consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes relacionados …

Representative Results

Desenvolvemos uma estratégia híbrida para diferenciar células-tronco em ilhotas hPSC secretoras de insulina em sete etapas, que utiliza um kit de progenitores pancreáticos para os quatro primeiros estágios em cultura plana, seguido por um protocolo modificado baseado em um método previamente relatado6 em uma cultura de suspensão estática para os últimos três estágios (Figura 1). Com esse protocolo, garantir uma cultura de quase confluência (90%-100%) em 24…

Discussion

Este trabalho descreve um protocolo híbrido de sete estágios que permite a geração de ilhotas hPSC capazes de secretar insulina após desafio glicêmico dentro de 40 dias de cultura in vitro. Dentre essas múltiplas etapas, acredita-se que a indução eficiente da endoderme definitiva seja um importante ponto de partida para os resultados finais dediferenciação18,27,28. No protocolo do fabricante, uma densidade de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos o apoio da STEMCELL Technologies, Michael Smith Health Research BC, Stem Cell Network, JDRF e dos Institutos Canadenses de Pesquisa em Saúde. Jia Zhao e Shenghui Liang recebem o Michael Smith Health Research BC Trainee Award. Mitchell J.S. Braam recebeu a Mitacs Accelerate Fellowship. Diepiriye G. Iworima recebeu a Alexander Graham Bell Canada Graduate Scholarship e o CFUW 1989 Ecole Polytechnique Commemorative Award. Agradecemos sinceramente ao Dr. Edouard G. Stanley da MCRI e da Monash University por compartilhar a linha Mel1 INS GFP/W e o Alberta Diabetes Institute Islet Core por isolar e distribuir ilhotas humanas. Também agradecemos o apoio das instalações de Imagem e Citometria de Fluxo do Instituto de Ciências da Vida da Universidade da Colúmbia Britânica. A Figura 1 foi criada com BioRender.com.

Materials

3,3’,5-Triiodo-L-thyronine (T3) Sigma T6397 Thyroid hormone
4% PFA solution Santa Cruz Biotechnology sc-281692 Should be handled in fume hood
96-Well, Ultralow Attachment, flat bottom Corning Costar (VWR) CLS3474 Flat bottom; for static suspension culture in the last three stages
Accutase STEMCELL Technologies 07920 Dissociation reagent for Stage 4 cells
Aggrewell400 plates STEMCELL Technologies 34415 400 µm diameter microwell plates
Aggrewell800 plates STEMCELL Technologies 34815 800 µm diameter microwell plates
Alexa Fluor 488 Goat anti-Human FOXA2 (goat IgG) R&D Systems IC2400G 1:100 in flow cytometry; used for assaying Stage 1 cells
Alexa Fluor 488 Goat IgG Isotype Control R&D Systems IC108G 1:100 in flow cytometry
Alexa Fluor 488 Mouse anti-Human SST (mouse IgG2B) BD Sciences 566032 1:250 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
Alexa Fluor 488 Mouse IgG2B Isotype Control R&D Systems IC0041G 1:500 in flow cytometry
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human C-peptide (mouse IgG1κ) BD Pharmingen 565831 1:2,000 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human INS (mouse IgG1κ) BD Sciences 565689 1:2,000 in flow cytometry
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human NKX6.1 (mouse IgG1κ) BD Sciences 563338 1:33 in flow cytometry; used for assaying Stage 4 cells
Alexa Fluor 647 Mouse anti-Human SOX17 (mouse IgG1κ) BD Sciences 562594 1:50 in flow cytometry; used for assaying Stage 1 cells
Alexa Fluor 647 Mouse IgG1κ Isotype Control BD Sciences 557714 1:50 in flow cytometry
ALK5i II Cayman Chemicals 14794 TGF-beta signaling inhibitor
Anti-Adherence Rinsing Solution  STEMCELL Technologies 7010 Microwell Rinsing Solution
Assay chamber Cellvis D35-10-1-N For static GSIS and confocal imaging purposes
Bovine serum albumin (BSA) Thermo Fisher Scientific BP1600-100 For immunostaining procedure
CK19 antibody DAKO M0888 1:50 in whole mount immunofluorescence
D-glucose Sigma G8769 Medium supplement
DAPI Sigma D9542 For nuclear counterstaining
DMEM/F12, HEPES Thermo Fisher Scientific 11330032 Matrix diluting solution
Donkey anti-goat Alexa Fluor 555 Life technologies A21432 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-goat Alexa Fluor 647 Life technologies A21447 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-mouse Alexa Fluor 555 Life technologies A31570 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-mouse Alexa Fluor 647 Life technologies A31571 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 555 Life technologies A31572 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-rabbit Alexa Fluor 647 Life technologies A31573 1:500 in whole mount immunofluorescence
Donkey anti-sheep Alexa Fluor 647 Life technologies A21448 1:500 in whole mount immunofluorescence
DPBS Sigma D8537 Without Ca2+ and Mg2+
ELISA, insulin, human Alpco 80-INSHU-E01.1 For human insulin measurement
Fatty acid-free BSA Proliant 68700 Medium supplement
Fixation and Permeabilization Solution Kit BD Sciences 554714 Fix/Perm and 10x Perm/Wash solutions included
Gentle Cell Dissociation Reagent STEMCELL Technologies 7174 For clump passaging hPSCs during maintenance culture
Glucagon antibody Sigma G2654 1:400 in whole mount immunofluorescence
GLUT1 antibody Thermo Fisher Scientific PA1-37782 1:200 in whole mount immunofluorescence
GlutaMAX-I (100x) Gibco 35050061 L-glutamine supplement
Glycerol Thermo Fisher Scientific G33-4 For tissue clearing and mounting
GSi XX Sigma Millipore 565789 Notch inhibitor
Heparin Sigma H3149 Medium supplement
ITS-X (100x) Thermo Fisher Scientific 51500056 Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine; medium supplement
LDN193189  STEMCELL Technologies 72147 BMP antagonist
MAFA antibody Abcam ab26405 1:200 in whole mount immunofluorescence
Matrigel, hESC-qualified Thermo Fisher Scientific 08-774-552 Extracellular matrix for vessel surface coating
MCDB131 medium Life technologies 10372019 Base medium
mTeSR1 Complete Kit STEMCELL Technologies 85850 stem cell medium and 5x supplement included
N-Cys (N-acetyl cysteine) Sigma A9165 Antioxidant
NaHCO3 Sigma S6297 Medium supplement
NEUROD1 antibody R&D Systems AF2746 1:20 in whole mount immunofluorescence
NKX6.1 antibody DSHB F55A12-c 1:50 in whole mount immunofluorescence
Pancreatic polypeptide antibody R&D Systems AF6297 1:200 in whole mount immunofluorescence
PBS Sigma D8662 With Ca2+ and Mg2+
PDX1 antibody Abcam ab47267 1:200 in whole mount immunofluorescence
PE Mouse anti-Human GCG (mouse IgG1κ) BD Sciences 565860 1:2,000 in flow cytometry; used for assaying Stage 7 cells
PE Mouse anti-Human NKX6.1 (mouse IgG1k) BD Sciences 563023 1:250 in flow cytometry
PE Mouse anti-Human PDX1 (mouse IgG1k) BD Sciences 562161 1:200 in flow cytometry; used for assaying Stage 4 cells
PE Mouse IgG1κ Isotype Control BD Sciences 554680 1:2,000 in flow cytometry
PE Mouse-Human Chromogranin A (CHGA, mouse IgG1k) BD Sciences 564563 1:200 in flow cytometry
R428  Cayman Chemicals 21523 AXL tyrosine kinase inhibitor
Retinoid acid, all-trans Sigma R2625 Light-sensitive
RIPA lysis buffer, 10x Sigma 20-188 For hormone extraction
SANT-1 Sigma S4572 SHH inhibitor
SLC18A1 antibody Sigma HPA063797 1:200 in whole mount immunofluorescence
Somatostatin antibody Sigma HPA019472 1:100 in whole mount immunofluorescence
STEMdiff Pancreatic Progenitor Kit STEMCELL Technologies 05120 Basal media and supplements included
Synaptophysin antibody Novus NB120-16659 1:25 in whole mount immunofluorescence
Triton X-100 Sigma X100 For permeabilization
Trolox  Sigma Millipore 648471 Vitamin E analog
TrypLE Enzyme Express Life technologies 12604-021 cell dissociation enzyme reagent for single cell passaging hPSCs
Trypsin1/2/3 antibody R&D Systems AF3586 1:25 in whole mount immunofluorescence
Y-27632 STEMCELL Technologies 72304 ROCK inhibitor
Zinc sulfate Sigma Z0251 Medium supplement

References

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Zhao, J., Liang, S., Braam, M. J. S., Baker, R. K., Iworima, D. G., Quiskamp, N., Kieffer, T. J. Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells into Insulin-Producing Islet Clusters. J. Vis. Exp. (196), e64840, doi:10.3791/64840 (2023).

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