Summary

Utilizando a eletroporação pós-natal in vivo para estudar a morfologia do neurônio do grânulo cerebelar e o desenvolvimento da sinapse

Published: June 09, 2021
doi:

Summary

Aqui descrevemos um método para visualizar a sinaptogênese de neurônios de grânulos no cerebelo do rato ao longo do curso de tempo do desenvolvimento cerebral pós-natal, quando essas células refinam suas estruturas sinápticas e formam sinapses para se integrarem ao circuito cerebral geral.

Abstract

Os neurônios sofrem mudanças dinâmicas em sua estrutura e função durante o desenvolvimento do cérebro para formar conexões apropriadas com outras células. O cerebelo de roedores é um sistema ideal para rastrear o desenvolvimento e a morfogênese de um único tipo de célula, o neurônio do grânulo cerebelar (CGN), ao longo do tempo. Aqui, a eletroporação in vivo de progenitores de neurônios de grânulos no cerebelo de camundongos em desenvolvimento foi empregada para marcar esparsamente as células para análises morfológicas subsequentes. A eficácia desta técnica é demonstrada em sua capacidade de mostrar os principais estágios de desenvolvimento da maturação do CGN, com um foco específico na formação de garras dendríticas, que são estruturas especializadas onde essas células recebem a maioria de suas entradas sinápticas. Além de fornecer instantâneos das estruturas sinápticas da CGN ao longo do desenvolvimento cerebelar, esta técnica pode ser adaptada para manipular geneticamente os neurônios dos grânulos de maneira autônoma celular para estudar o papel de qualquer gene de interesse e seu efeito na morfologia da CGN, no desenvolvimento de garras e na sinaptogênese.

Introduction

O desenvolvimento do cérebro é um processo prolongado que se estende desde a embriogênese até a vida pós-natal. Durante esse tempo, o cérebro integra uma combinação de estímulos intrínsecos e extrínsecos que esculpem a fiação das sinapses entre dendritos e axônios para, finalmente, orientar o comportamento. O cerebelo de roedores é um sistema modelo ideal para estudar como as sinapses se desenvolvem porque o desenvolvimento de um único tipo de neurônio, o neurônio do grânulo cerebelar (CGN), pode ser rastreado à medida que transita de uma célula progenitora para um neurônio maduro. Isso se deve, em parte, ao fato de que a maioria do córtex cerebelar se desenvolve no pós-natal, o que permite fácil manipulação genética e marcação celular após o nascimento1.

Em mamíferos, a diferenciação de CGN começa no final do desenvolvimento embrionário, quando um subconjunto de células proliferativas no rombencéfalo migra sobre o lábio rômbico para formar uma zona germinativa secundária na superfície do cerebelo 2,3,4. Embora estejam totalmente comprometidas com uma identidade de progenitor de neurônios de grânulos (PNB), essas células continuam a proliferar dentro da porção externa da camada externa de grânulos (EGL) até o dia 14 pós-natal (P14). A proliferação dessa camada resulta em uma expansão maciça do cerebelo, pois essas células dão origem exclusivamente a CGNs5. Uma vez que os CGNs recém-nascidos saem do ciclo celular no EGL, eles migram para dentro em direção à camada interna de grânulos (IGL), deixando para trás um axônio que se bifurcará e viajará na camada molecular do cerebelo, formando fibras paralelas que fazem sinapse nas células de Purkinje6. A posição dessas fibras dentro da camada molecular depende do tempo de saída do ciclo celular.

Os CGNs que se diferenciam primeiro deixam suas fibras paralelas em direção ao fundo da camada molecular, enquanto os axônios dos CGNs que se diferenciam posteriormente são agrupados no topo 7,8. Uma vez que os corpos celulares CGN atingem o IGL, eles começam a elaborar dendritos e formar sinapses com neurônios inibitórios e excitatórios próximos. A árvore dendrítica madura de um CGN exibe uma arquitetura estereotipada com quatro processos principais. Ao longo da maturação da CGN, as estruturas no final desses dendritos formam uma garra que se torna enriquecida com proteínas pós-sinápticas 9,10. Essas estruturas especializadas, chamadas garras dendríticas, contêm a maioria das sinapses nos neurônios dos grânulos e são importantes para receber tanto entradas excitatórias de inervações de fibras musgosas originárias da ponte, bem como entradas inibitórias de células locais de Golgi. Uma vez totalmente configuradas, as conexões sinápticas dos CGNs permitem que essas células retransmitam entradas de núcleos pré-cerebelares para células de Purkinje, que se projetam do córtex cerebelar para os núcleos cerebelares profundos.

A eletroporação pós-natal in vivo de PNB é vantajosa em relação a outros métodos baseados em marcação, como infecção viral e geração de linhagens transgênicas de camundongos, porque a expressão das construções desejadas pode ser alcançada em uma linha do tempo rápida, e o método tem como alvo uma pequena população de células, útil no estudo dos efeitos autônomos celulares. Este método já foi utilizado em estudos prévios para estudar o desenvolvimento morfológico de CGNs; no entanto, esses estudos têm se concentrado em um único ponto de tempo ou em uma curta janela de tempo 9,10,11,12,13. Este método de marcação foi emparelhado com a análise de imagens para documentar as mudanças na morfologia do CGN que ocorrem ao longo de todo o curso de tempo da diferenciação do CGN nas primeiras três semanas de vida pós-natal. Esses dados revelam a dinâmica do desenvolvimento de dendritos CGN subjacentes à construção de circuitos cerebelares.

Protocol

NOTA: Todos os procedimentos foram realizados sob protocolos aprovados pelo Duke University Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC). 1. Preparação de DNA para eletroporação in vivo ou IVE (1 dia antes da cirurgia) Reunir os seguintes materiais: DNA purificado (0,5-25 μg por animal), acetato de sódio 3 M, etanol, corante Fast Green, água destilada ultrapura, solução tampão fosfato (PBS) (ver Tabela de Materiais).NOTA: Para o DNA, uma constru?…

Representative Results

Figura 4: Análise da morfologia do neurônio granulado durante o desenvolvimento cerebelar. (A) Imagens de projeção máxima de CGNs eletroporados, de 3-DPI a 14-DPI (idade pós-natal P10 a P21), núcleos (azul) e GFP (verde); as pontas das setas indicam dendrito individual, e a barra de escala é de 10 μm. (B) Número médio de dendritos. (C</st…

Discussion

Os neurônios dos grânulos cerebelares são os neurônios mais abundantes no cérebro dos mamíferos, representando quase 60-70% da população total de neurônios no cérebro de roedores 1,14. O cerebelo tem sido amplamente utilizado para elucidar mecanismos de proliferação celular, migração, formação de dendritos e desenvolvimento de sinapses 6,9,10,11,15,16,17,18,19,20 <sup class="xre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

O trabalho foi apoiado pelos subsídios do NIH R01NS098804 (A.E.W.), F31NS113394 (U.C.) e Programa de Neurociência de Verão da Duke University (D.G.).

Materials

Betadine Purdue Production 67618-150-17
Cemented 10 µL needle Hamilton 1701SN (80008) 33 gauge, 1.27 cm (0.5 in), 4 point style
Chicken anti-GFP Millipore Sigma AB16901 Our lab uses this antibody at a 1:1000 concentration
Cotton-tip applicator
Donkey anti-chicken Cy2 Jackson ImmunoResearch 703-225-155 Our lab uses this antibody at a 1:500 concentration
Ethanol (200 proof) Koptec V1016
Electroporator ECM 830 BTX Harvard Apparatus 45-0052
Fast Green FCF Sigma F7252-5G
FUGW plasmid Addgene 14883
Glass slides VWR 48311-703 Superfrost plus
Glycerol Sigma-Aldrich G5516
Heating pad Softheat
Hoescht 33342 fluorescent dye Invitrogen 62249
Imaris Bitplane
Isoflurane Patterson Veterinary 07-893-1389
Micro cover glass VWR 48382-138
Nail polish Sally Hansen Color 109
Normal goat serum Gibco 16210064
O.C.T. embedding compound Tissue-Tek 4583
Olympus MVX10 Dissecting Scope Olympus MVX10
P200 pipette reach tip Fisherbrand 02-707-138 Used for needle spacer
Parafilm Bemis PM-996
PBS pH 7.4 (10x) Gibco 70011-044
Simple Neurite Tracer FIJI https://imagej.net/Simple_Neurite_Tracer:_Basic_
Instructions
Sucrose Sigma S0389
Surgical tools RWD Life Science Small scissors and tweezers
Triton X-100 Roche 11332481001 non-ionic detergent
Tweezertrodes BTX Harvard Apparatus 45-0489 5 mm, platinum plated tweezer-type electrodes
Ultrapure distilled water Invitrogen 10977-015
Vectashield mounting media Vectashield H1000
Vetbond tissue adhesive 3M 1469SB
Zeiss 780 Upright Confocal Zeiss 780

References

  1. Altman, J., Bayer, S. A. . Development of the cerebellar system : in relation to its evolution, structure, and functions. , (1997).
  2. Rahimi-Balaei, M., Bergen, H., Kong, J., Marzban, H. Neuronal migration during development of the cerebellum. Frontiers in Cellular Neuroscience. 12, 484 (2018).
  3. Alder, J., Cho, N. K., Hatten, M. E. Embryonic precursor cells from the rhombic lip are specified to a cerebellar granule neuron identity. Neuron. 17 (3), 389-399 (1996).
  4. Hatten, M. E., Heintz, N. Mechanisms of neural patterning and specification in the developing cerebellum. Annual Review of Neuroscience. 18, 385-408 (1995).
  5. Ben-Arie, N., et al. Math1 is essential for genesis of cerebellar granule neurons. Nature. 390 (6656), 169-172 (1997).
  6. Borghesani, P. R., et al. BDNF stimulates migration of cerebellar granule cells. Development. 129 (6), 1435-1442 (2002).
  7. Espinosa, J. S., Luo, L. Timing neurogenesis and differentiation: insights from quantitative clonal analyses of cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience. 28 (10), 2301-2312 (2008).
  8. Markwalter, K. H., Yang, Y., Holy, T. E., Bonni, A. Sensorimotor coding of vermal granule neurons in the developing mammalian cerebellum. Journal of Neuroscience. 39 (34), 6626-6643 (2019).
  9. Shalizi, A., et al. PIASx is a MEF2 SUMO E3 ligase that promotes postsynaptic dendritic morphogenesis. Journal of Neuroscience. 27 (37), 10037-10046 (2007).
  10. Shalizi, A., et al. A Calcium-regulated MEF2 sumoylation switch controls poststynaptic differentiation. Science. 311 (5763), 1012-1017 (2006).
  11. Konishi, Y., Stegmuller, J., Matsuda, T., Bonni, S., Bonni, A. Cdh1-APC controls axonal growth and patterning in the mammalian brain. Science. 303 (5660), 1026-1030 (2004).
  12. Holubowska, A., Mukherjee, C., Vadhvani, M., Stegmuller, J. Genetic manipulation of cerebellar granule neurons in vitro and in vivo to study neuronal morphology and migration. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (85), e51070 (2014).
  13. Yang, Y., et al. Chromatin remodeling inactivates activity genes and regulates neural coding. Science. 353 (6296), 300-305 (2016).
  14. Herculano-Houzel, S. Coordinated scaling of cortical and cerebellar numbers of neurons. Frontiers in Neuroanatomy. 4, 12 (2010).
  15. Wilson, P. M., Fryer, R. H., Fang, Y., Hatten, M. E. Astn2, a novel member of the astrotactin gene family, regulates the trafficking of ASTN1 during glial-guided neuronal migration. Journal of Neuroscience. 30 (25), 8529-8540 (2010).
  16. Kokubo, M., et al. BDNF-mediated cerebellar granule cell development is impaired in mice null for CaMKK2 or CaMKIV. Journal of Neuroscience. 29 (28), 8901-8913 (2009).
  17. Schwartz, P. M., Borghesani, P. R., Levy, R. L., Pomeroy, S. L., Segal, R. A. Abnormal cerebellar development and foliation in BDNF-/- mice reveals a role for neurotrophins in CNS patterning. Neuron. 19 (2), 269-281 (1997).
  18. Segal, R. A., Pomeroy, S. L., Stiles, C. D. Axonal growth and fasciculation linked to differential expression of BDNF and NT3 receptors in developing cerebellar granule cells. Journal of Neuroscience. 15 (7), 4970-4981 (1995).
  19. Zhou, P., et al. Polarized signaling endosomes coordinate BDNF-induced chemotaxis of cerebellar precursors. Neuron. 55 (1), 53-68 (2007).
  20. Dhar, M., Hantman, A. W., Nishiyama, H. Developmental pattern and structural factors of dendritic survival in cerebellar granule cells in vivo. Scientific Reports. 8 (1), 17561 (2018).
  21. Ito, M. Synaptic plasticity in the cerebellar cortex and its role in motor learning. Canadian Journal of Neurological Sciences. 20, 70-74 (1993).
  22. Jorntell, H., Hansel, C. Synaptic memories upside down: bidirectional plasticity at cerebellar parallel fiber-Purkinje cell synapses. Neuron. 52 (2), 227-238 (2006).
  23. Nakanishi, S. Genetic manipulation study of information processing in the cerebellum. Neuroscience. 162 (3), 723-731 (2009).
  24. Chang, C. H., et al. Atoh1 controls primary cilia formation to allow for SHH-triggered granule neuron progenitor proliferation. Developmental Cell. 48 (2), 184-199 (2019).

Play Video

Cite This Article
Chan, U., Gautam, D., West, A. E. Utilizing In Vivo Postnatal Electroporation to Study Cerebellar Granule Neuron Morphology and Synapse Development. J. Vis. Exp. (172), e62568, doi:10.3791/62568 (2021).

View Video