В данной работе описываются методы подготовки тканей, окрашивания и анализа целых грибовидных, циркумваллятных и небных вкусовых рецепторов, которые последовательно дают целые и неповрежденные вкусовые рецепторы (включая нервные волокна, которые их иннервируют) и поддерживают отношения между структурами в вкусовых рецепторах и окружающим сосочком.
Вкусовые рецепторы представляют собой наборы вкусовых трансдуцирующих клеток, специализированных для обнаружения подмножеств химических стимулов в ротовой полости. Эти трансдуцирующие клетки общаются с нервными волокнами, которые несут эту информацию в мозг. Поскольку вкусовые клетки непрерывно умирают и заменяются на протяжении всей взрослой жизни, среда вкусовых рецепторов является сложной и динамичной, требуя детального анализа ее типов клеток, их местоположения и любых физических отношений между ними. Подробные анализы были ограничены гетерогенностью и плотностью тканей языка, которые значительно снизили проницаемость антител. Эти препятствия требуют протоколов секционирования, которые приводят к расщеплению вкусовых рецепторов по секциям, так что измерения только аппроксимируются, а клеточные отношения теряются. Чтобы преодолеть эти проблемы, способы, описанные в настоящем описании, включают сбор, визуализацию и анализ целых вкусовых рецепторов и отдельных терминальных беседок из трех вкусовых областей: грибовидных сосочков, циркумваллятных сосочков и неба. Сбор целых вкусовых рецепторов уменьшает смещение и техническую изменчивость и может быть использован для представления абсолютных чисел по таким признакам, как объем вкусовых рецепторов, общая иннервация вкусовых рецепторов, количество трансдукирующих клеток и морфология отдельных терминальных беседок. Чтобы продемонстрировать преимущества этого метода, в данной работе приведены сравнения объемов вкусовых рецепторов и иннервации между грибовидными и циркумваллятными вкусовыми рецепторами с использованием общего маркера вкусовых рецепторов и этикетки для всех вкусовых волокон. Также предусмотрен рабочий процесс для использования разреженно-клеточной генетической маркировки вкусовых нейронов (с мечеными подмножествами вкусопередающих клеток). Этот рабочий процесс анализирует структуры отдельных вкусовых нервных беседок, номера типов клеток и физические отношения между клетками с помощью программного обеспечения для анализа изображений. Вместе эти рабочие процессы обеспечивают новый подход к подготовке тканей и анализу как целых вкусовых рецепторов, так и полной морфологии их иннервирующих беседок.
Вкусовые рецепторы представляют собой совокупность 50-100 специализированных эпителиальных клеток, которые связывают подмножества химических вкусовых стимулов, присутствующих в ротовой полости. Обычно считается, что вкусопередающие клетки существуют как типы1,2,3,4,5,6,7,8,9,первоначально основанные на критериях электронной микроскопии, которые позже были коррелированы с молекулярными маркерами. Клетки типа II экспрессируют фосфолипазу C-бета 2 (PLCβ2)2 и транзиторный рецепторный потенциал катионного канала, подсемейства M член 51 и включают клетки, которые трансдуцируют сладкий, горький и умами1,10. Клетки iii типа экспрессируют карбоангидразу 4 (Car4)11 и синаптосомально-ассоциированный белок 258 и обозначают клетки, которые в первую очередь реагируют на кислый вкус11. Клетки, которые передают соленость, не были так четко очерчены12,13,14,но потенциально могут включать клетки типа I, типа II и типа III15,16,17,18,19. Среда вкусовых рецепторов сложна и динамична, учитывая, что вкусопередающие клетки непрерывно переворачиваются на протяжении всего взрослого возраста и заменяются базальными прародителями3,20,21. Эти вкусообразующие клетки соединяются с псевдоуниполярными нервными волокнами из геникулятных и петросальных ганглиев, которые передают вкусовую информацию стволу мозга. Эти нейроны в основном были классифицированы на основе типа информации о вкусе, которую онинесут 22,23, потому что информация об их морфологии была неуловимой донедавнего времени 24. Клетки типа II сообщаются с нервными волокнами через модулятор гомеостаза кальция 1 ионных каналов25,тогда как клетки типа III общаются через классические синапсы8,26. Дальнейшая характеристика клеток вкусовых почек, включая трансдуцирующие линии клеточного типа, факторы, влияющие на их дифференцировку, и структуры соединительных беседок являются областями активного исследования.
Исследования вкусовых рецепторов были затруднены несколькими техническими проблемами. Гетерогенные и плотные ткани, составляющие язык, значительно снижают проницаемость антител для иммуногистохимии27,28,29. Эти препятствия потребовали протоколов секционирования, которые приводят к расщеплению вкусовых рецепторов по секциям, так что измерения либо аппроксимируются на основе репрезентативных секций, либо суммируются по секциям. Ранее репрезентативные тонкие сечения использовались для аппроксимации как объемных значений, так и количества преобразовательных клеток30. Более толстое последовательное сечение позволяет получать изображения всех участков вкусовых рецепторов и суммировать измерения из каждой секции31. Вырезание таких толстых участков и отбор только целых вкусовых рецепторов склоняет выборку в сторону более мелких вкусовых рецепторов32,33,34. Оценки иннервации нервов из секционированных вкусовых рецепторов были основаны на анализе чисел пикселей13,35,если количественно оценить их на всех36,37,38. Эти измерения полностью игнорируют структуру и количество отдельных нервных беседок, потому что беседки расщепляются (и обычно плохо маркируются). Наконец, хотя удаление эпителия позволяет окрашивать целые вкусовые рецепторы39,40,оно также удаляет нервные волокна вкусовых рецепторов и может нарушить нормальные отношения между клетками. Поэтому исследования структурных отношений во вкусовых рецепторах были ограничены из-за этого нарушения, вызванного подходами окрашивания.
Сбор всей структуры устраняет необходимость в репрезентативных секциях и позволяет определять абсолютные значения измерений объемов, количества клеток и морфологий структуры41. Этот подход также повышает точность, ограничивает смещение и уменьшает техническую изменчивость. Этот последний элемент важен, потому что вкусовые рецепторы показывают значительную биологическую изменчивость как в пределах34,42, так и в регионах43,44,а анализы вкусовых рецепторов позволяют сравнивать абсолютные числа клеток между контрольными и экспериментальными условиями. Кроме того, способность собирать неповрежденные вкусовые рецепторы позволяет анализировать физические отношения между различными трансдуцирующими клетками и связанными с ними нервными волокнами. Поскольку вкусопередающие клетки могут общаться друг с другом45 и взаимодействовать с нервными волокнами46,эти отношения важны для нормальной функции. Таким образом, условия потери функции могут быть вызваны не потерей клеток, а изменениями в клеточных отношениях. Здесь представлен метод сбора целых вкусовых рецепторов для достижения преимуществ абсолютных измерений для уточнения объемных анализов как для вкусовых рецепторов, так и для их иннервации, количества и формы вкусовых клеток, а также для облегчения анализа отношений между трансдуцирующими клетками и морфологии нервно-беседки. Два рабочих процесса также представлены после этого нового метода приготовления тканей: 1) для анализа объема вкусовых рецепторов и общей иннервации и 2) для разреженно-клеточной генетической маркировки вкусовых нейронов (с помеченными подмножествами клеток, преобразующих вкус) и последующего анализа морфологии вкусово-нервных деревьев, количества типов вкусовых клеток и их форм, а также использование программного обеспечения для анализа изображений для анализа физических отношений между трансдуцирующими клетками и между трансдукцией. клетки и их нервные беседки. Вместе эти рабочие процессы обеспечивают новый подход к подготовке тканей и анализу целых вкусовых рецепторов и полной морфологии их иннервирующих беседок.
Разработка подхода к последовательному сбору и окрашиванию целых вкусовых рецепторов из трех вкусовых областей полости рта (грибовидная, циркумвалляция и небо) обеспечивает значительные улучшения для анализа вкусовых клеток, отслеживания вновь включенных клеток, иннервации и отноше…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим Кависку Курупаранантху за ее вклад в окрашивание тканей и визуализацию циркумваллатных вкусовых рецепторов, Дженнифер Сюй за окрашивание и визуализацию иннервации в сосочек, Кайти Хорн за уход за животными и генотипирование и Ликун Ма за окрашивание тканей вкусовых рецепторов мягкого неба. Этот проект был поддержан R21 DC014857 и R01 DC007176 для R.F.K и F31 DC017660 для L.O.
2,2,2-Tribromoethanol | ACROS Organics | AC421430100 | |
2-Methylbutane | ACROS | 126470025 | |
AffiniPure Fab Fragment Donkey Anti-Rabbit IgG | Jackson ImmunoResearch | 711-007-003 | 15.5μL/mL |
Alexa Fluor® 647 AffiniPure Donkey Anti-Rat IgG | Jackson Immuno Research | 712-605-150 | (1:500) |
AutoQuant X3 software | Media Cybernetics | ||
Blunt End Forceps | Fine Science Tools | FST 91100-12 | |
Click-iT™ Plus EdU Cell Proliferation Kit | Molecular Probes | C10637 | Follow kit instructions |
Coverglass | Marienfeld | 107242 | |
Cytokeratin-8 | Developmental Studies Hybridoma Bank (DSHB), (RRID: AB_531826) | Troma1 supernatant | (1:50, store at 4°C) |
Dissection Scissors (coarse) | Roboz | RS-5619 | |
Dissection Scissors (fine) | Moria | MC19B | |
Donkey anti-Rabbit IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 | ThermoFisher Scientific | A21206 | (1:500) |
Donkey anti-Rabbit, Alexa Fluor® 555 | ThermoFisher Scientific | A31572 | (1:500) |
DyLight™ 405 AffiniPure Fab Fragment Bovine Anti-Goat IgG | Jackson Immuno Research | 805-477-008 | (1:500) |
Fluoromount G | Southern Biotech | 0100-01 | |
Glass slides | Fisher Scientific (Superfrost Plus Miscroscope Slides) | 12-550-15 | |
Goat anti-Car4 | R&D Systems | AF2414 | (1:500) |
Imaris | Bitplane | pixel-based image analysis software | |
Neurolucida 360 + Explorer | MBF Biosciences | 3D vector based image analysis software | |
Normal Donkey Serum | Jackson Immuno Research | 017-000-121 | |
Normal Rabbit Serum | Equitech-Bio, Inc | SR30 | |
Olympus FV1000 | (multi-Argon laser with wavelengths 458, 488, 515 and additional HeNe lasers emitting 543 and 633) | ||
Paraformaldehyde | EMD | PX0055-3 | 4% in 0.1M PB |
Rabbit anti-dsRed | Living Colors DsRed Polyclonal Antibody; Clontech Clontech Laboratories, Inc. (632496) | 632496 | (1:500) |
Rabbit anti-PLCβ2 | Santa Cruz Biotechnology | Cat# sc-206 | (1:500) |
Sodium Phosphate Dibasic Anhydrous | Fisher Scientific | BP332-500 | |
Sodium Phosphate Monobasic | Fisher Scientific | BP330-500 | |
tert-Amyl alcohol | Aldrich Chemical Company | 8.06193 | |
Tissue Molds | Electron Microscopy Sciences | 70180 | |
Tissue-Tek® O.C.T. Compound | Sakura | 4583 | |
Triton X-100 | BIO-RAD | #161-0407 | |
Zenon™ Alexa Fluor™ 555 Rabbit IgG Labeling Kit | ThermoFisher Scientific | Z25305 | Follow kit instructions |