Nós introduzimos um método de gravação óptica reprodutível e estável para fatias do cérebro usando a tintura tensão-sensível. O artigo descreve a coloração de corante sensível à tensão e a gravação de sinais ópticos usando preparações convencionais de corte hipocampal.
A imagem latente da tintura tensão-sensível do fóton do largo-campo único (VSD) de preparações da fatia do cérebro é uma ferramenta útil para avaliar a conectividade funcional em circuitos neurais. Devido à mudança fracionária no sinal de luz, tem sido difícil usar este método como um ensaio quantitativo. Este artigo descreve sistemas de manipulação óptica e fatia especiais, que tornam esta técnica estável e confiável. O artigo atual demonstra a manipulação, a mancha, e a gravação da fatia das fatias hippocampal VSD-manchadas em detalhe. O sistema mantém condições fisiológicas por um longo tempo, com boa coloração, e previne movimentos mecânicos da fatia durante as gravações. Além disso, permite a coloração de fatias com uma pequena quantidade do corante. O sistema ótico alcança a abertura numérica elevada na baixa ampliação, que permite a gravação do sinal de VSD na taxa de frame máxima de 10 quilohertz, com resolução espacial do pixel x 100-pixel 100. Devido à alta taxa de quadros e à resolução espacial, essa técnica permite a aplicação dos filtros pós-gravação que fornecem uma relação sinal-ruído suficiente para avaliar as mudanças nos circuitos neurais.
A imagem latente da tintura tensão-sensível do fóton do largo-campo único (vsd) de preparações Bulk-manchadas da fatia do cérebro transformou-se uma ferramenta quantitativa útil para avaliar a dinâmica de circuitos neurais1,2,3,4 . Após a análise das alterações nas propriedades ópticas devido à excitação de membrana5,6,7, a imagem de VSD foi descrita pela primeira vez no início da década de 1970 por Cohen e outros6,7, 9.; é um método adequado para monitorar as funções cerebrais em tempo real, como o corante diretamente sonda as mudanças de potencial de membrana (ou seja, o sinal primário dos neurônios).
Os VSDs os mais adiantados possuíram as características desejáveis para compreender o sistema do cérebro, tal como um tempo-constante rápido para seguir a cinética rápida de eventos potenciais da membrana neuronal, e a linearidade com a mudança no potencial de membrana9, 10 de , 11 anos de , 12 anos de , 13 anos de , 14 anos de , 15. similar a outras experiências da imagem latente, esta técnica exige uma escala larga de afinações específicas, tais como as câmeras, o sistema ótico, o software, e a fisiologia da fatia, para realizar os resultados desejados. Devido a estas armadilhas técnicas, os benefícios esperados durante os esforços iniciais não se materializam necessariamente para a maioria dos laboratórios que não se especializou nesta técnica.
A causa primordial da dificuldade técnica era a baixa sensibilidade do VSD para a mudança potencial da membrana quando aplicada à mancha maioria de preparações da fatia. A magnitude do sinal óptico (ou seja, a alteração fracionária na fluorescência) é geralmente 10-4-10-3 do sinal de controle (F0) condições fisiológicas. A escala de tempo da mudança potencial da membrana em um neurônio é aproximadamente milissegundos a poucas centenas de milissegundos. Para medir as alterações no potencial de membrana do Neuron, a câmera que está sendo usada para a gravação deve ser capaz de adquirir imagens com alta velocidade (10 kHz a 100 Hz). A baixa sensibilidade do VSD e a velocidade necessária para seguir o sinal neural requer uma grande quantidade de luz a ser coletada na câmera em alta velocidade, com uma alta relação sinal-ruído (S/N)2,16.
A ótica do sistema de gravação também é um elemento crítico para garantir a coleta de luz suficiente e para melhorar S/N. A ampliação alcançada pela ótica é muitas vezes excessivamente baixa, como 1X a 10X, para visualizar um circuito neural funcional local. Por exemplo, para visualizar a dinâmica do circuito hipocampal, uma ampliação de aproximadamente 5 seria adequada. Essa baixa ampliação tem baixa eficiência de fluorescência; Conseqüentemente, o sistema ótico avançado seria benéfico para tal gravação.
Além disso, a fisiologia da fatia também é essencial. Uma vez que a análise de imagem requer que as fatias sejam intactas, é necessária uma manipulação cuidadosa da fatia17. Além disso, as medidas tomadas para manter a viabilidade da fatia por um tempo mais longo são importantes18.
O presente artigo descreve o protocolo para preparação de fatias, coloração de VSD e medições. O artigo também descreve as melhorias para o VSDs, dispositivo de imagem e óptica, e outros refinamentos adicionais para o sistema experimental que permitiram que este método para ser usado como um ensaio simples, poderoso e quantitativo para visualizar o modificação das funções cerebrais19,20,21,22,23,24,25. A técnica pode igualmente ser amplamente utilizada para a potenciação a longo prazo na área CA1 de fatias hippocampal1. Além disso, esta técnica também é útil na gravação óptica de potenciais de membrana em uma única célula nervosa26.
A fisiologia da fatia é vital para coletar o sinal direito. O uso do sistema de filtro da anel-membrana neste protocolo assegura-se de que a fatia permaneça saudável e un-distorcida durante todo o procedimento2,16,17. Outros sistemas podem ser usados para reter a fisiologia da fatia durante a gravação, mas a fatia não deve ficar deformada a qualquer momento, pois a imagem precisa de cada parte da fatia para ser saudável. …
The authors have nothing to disclose.
TT recebeu o JSPS KAKENHI Grant (JP16H06532, JP16K21743, JP16H06524, JP16K0038 e JP15K00413) da MEXT e subsídios do Ministério da saúde, trabalho e bem-estar (MHLW-Kagaku-Ippan-H27 [15570760] e h30 [18062156]). Gostaríamos de agradecer a Editage (www.editage.jp) para edição de idioma inglês.
High speed image acquisition system | Brainvision co. Ltd. | MiCAM – Ultima | Imaging system |
High speed image acquisition system | Brainvision co. Ltd. | MiCAM 02 | Imaging system |
Macroscepe for wide field imaging | Brainvision co. Ltd. | THT macroscope | macroscope |
High powere LED illumination system with photo-diodode stablilizer | Brainvision co. Ltd. | LEX-2G | LED illumination |
Image acquisition software | Brainvision co. Ltd. | BV-ana | image acquisition software |
Multifunctional electric stimulator | Brainvision co. Ltd. | ESTM-8 | Stimulus isolator+AD/DA converter |
Slicer | Leica | VT-1200S | slicer |
Slicer | Leica | VT-1000 | slicer |
Blade for slicer | Feather Safety Razor Co., Ltd. | #99027 | carbon steel razor blade |
Membrane filter for slice support | Merk Millipore Ltd., MA, USA | Omnipore, JHWP01300, 0.45 µm pores, | membrane filter/ 0.45 13 |
Numerical analysis software | Wavemetrics Inc., OR, USA | IgorPro | analysing software |
Stimulation isolator | WPI Inc. | A395 | Stimulus isolator |
AD/DA converter | Instrutech | ITC-18 | AD/DA converter |
Voltage sensitive dye Di-4-ANEPPS | Invitrogen, Thermo-Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | catalog number: D-1199 | VSD: Di-4-ANEPPS |
poloxamer | Invitrogen, Thermo-Fisher Scientific, Waltham, MA, USA | Pluronic F-127 P30000MP | poloxamer / Pluronic F-127 (20% solution in DMSO) |
polyethoxylated castor oil | Sigma-Aldrich | Cremophor EL C5135 | polyethoxylated castor oil |