ここに提示されているのは、高開口数の対物レンズと浸漬媒体としてのパーフルオロデカリンを使用して、最長3日間の根および胚軸発達の高解像度共焦点経時撮影イメージングのための簡単な技術である。
側根の形態形成などの植物発達のいくつかの局面は、数日の時間間隔で起こる。基礎となる細胞および細胞下の過程を研究するためには、生理学的状態を保存する高分解能経時顕微鏡法が必要である。植物組織は、持続的な気体交換を伴う適切な栄養および水供給を有しなければならないが、カバーガラスの下に沈め固定されると、特に無酸素状態になりやすい。成功裡に採用された1つの戦略は、酸素および栄養分の一定した供給を維持するための灌流システムの使用である。しかしながら、このような構成は、複雑で煩雑であり、特殊な装置を必要とする。浸漬媒体としてペルフルオロデカリンを使用する簡単なイメージングシステムの代替戦略がここに提示されている。このシステムはセットアップが簡単で、最小限の設備を必要とし、顕微鏡ステージに簡単に取り付けることができ、いくつかのイメージングチャンバをセットアップして同等対立遺伝子。このシステムでは、最初の2日間の寒天平板上での標準条件下での側根伸長率と成長率との差異はなく、少なくとももう1日は側根伸長率が低下する。植物組織には、寒天スラブを介して栄養素が供給され、これを用いて一連の薬理学的化合物を投与することもできる。この系は、側根の発達をモニターするために確立されたが、胚軸および一次根のような他の植物器官を画像化するために容易に適応可能である。
植物発達の基礎となる細胞および細胞下の過程を研究するために、高分解能の長期間経過イメージング戦略に対する需要が高まっている。このようなイメージング実験における重要な課題は、十分な気体交換と水および栄養剤の供給を含む生理学的条件の維持である 1,2,3 。最適な光学分解能のために高い開口数を有する対物レンズを利用するためには、試料をカバースリップに近接して平行に配置する必要がある。 x、y、およびz方向の動きは、理想的には、イメージング中に最小でなければならない。
苗はしばしば短期間のイメージングのために水または水溶液中に設置されるが、水はCO 2およびO 2 (20℃、0.1MPaでそれぞれ1.54mg / mLおよび0.04mg / mL)それは長期間の実験には適していません。一定レベルの酸素および栄養素を維持する灌流システムは、この問題の1つの解決策であり、共焦点レーザー走査顕微鏡(CLSM) 1,2,3および光シート顕微鏡(LSM) 5の両方で開発されている。 RootChip 2やRootArray 3のようなシステムは、発達する根の時間経過イメージングのために特別に設計されており、カスタムビルドマルチ検体装置に種子を発芽させることが含まれています。これらの配置は、最小の機械的摂動を保証し、複数の苗の平行分析のために設計されているが、細胞内構造のイメージングには最適化されていない。 Calderらは、検体がメッシュによって所定の位置に保持される細胞下構造の画像化に最適化された、より複雑な灌流ベースの画像化チャンバを設計した高倍率の液浸レンズ1の使用を可能にする。
ここに提示されているのは、灌流システムに基づいていないが、 シロイヌナズナイメージングのためのマウント媒体として最近普及しているペルフルオロカーボンであるペルフルオロデカリン(PFD)を利用する、この問題に対する代替の簡単な解決法である。そのような用途では、CO 2およびO 2 (PFD中のO 2については、水中で0.04mg / mLと比較して1.9g / mL) 9を溶解するためのPFDの高い容量は、浸漬した組織によるガス交換を可能にする。さらに、PFDは非蛍光性であり、その屈折率(1.313)は水(1.333)のそれに匹敵し、空気(1.000)よりもサイトゾルの屈折率(〜1.4)に近い。ペルフルオロカーボンは、様々な植物および植物に最小の生理学的効果を有することが報告されているPFDに沈めたときに容易に発芽し、水を供給したときに少なくとも2日間通常の成長と発育を示す大根種子が6である。 Arabidopsis種子の発芽についても同様の観察がなされている6 。 Littlejohnらは、浸潤後のシロイヌナズナ葉組織におけるPFDの分布を直接的にイメージ化する誘導ラマン散乱に基づいて、PFDが生きた細胞によって取り込まれない可能性が高いと結論している[ 8] 。 PFDは以前は空中組織を画像化するために主に使用されていましたが、表面張力が低いために空中に容易に浸透するため、イメージング深度が大幅に増加します。ここで、PFDは、発生する側方の根の長期共焦点画像化に採用される。この構成では、寒天で固められ、PFDに浸された成長培地のスラブ上に1つ以上の実生を置く。 PFDは、gイメージングチャンバー内での無菌交換、無酸素状態の防止。 PFDは非常に揮発性であるため、高いガス透過性(CO 2に対して1.5×10 -12 pmol m -1 s -1 Pa -1 )も有するポリ(ジメチルシロキサン)ガムのガスケットによって保持される。栄養素と水は、寒天で固めた培地のスラブによって供給される。同時に、この寒天スラブは、カバーグラスに対して根元を静かに押しつけ、イメージングチャンバー内の相対位置を固定し、高解像度水浸レンズを使用することを可能にする。さらに、寒天スラブは、デキサメタゾン、オリザリン、およびイソキサベンを含む、ある範囲の薬理学的処置を施すために使用することができる。イメージングチャンバは、最小限の装置を使用して標準的な顕微鏡スライドから大量に組み立てることができる。イメージングチャンバーは、側方根の発達を研究するために開発され、特徴付けられたが、他の実生の器官、例えば根の先端および胚軸。
ここに提示されている方法は、2〜3日間の側方根の発達の高解像度共焦点画像化のための簡単な戦略である。 48時間までの期間、側根発達に対するイメージングシステムの悪影響は観察されなかった。 48時間後、根の実質的なサブセット(37%)はプレート上の平均根の成長に匹敵する速度で成長し続けたが、平均側方根の成長は遅くなった。したがって、十分に多数の根を画像化することにより、48時間後に増殖が遅くなる根を排除することができる。撮像チャンバの体系的検査は、72時間よりも長い時間実施されなかったが、延長された撮像期間が望ましい場合には、代替戦略が推奨される。画像化チャンバは、適切な環境条件が提供された場合、顕微鏡ステージ上に連続的に残されてもよく、または成長施設に移され、定期的に顕微鏡に戻されてもよい。これにより、多数のチャンバが平行に結像されることが可能になる。/ p>
ここに記載されたチャンバの1つの利点は、側方の根がそれらの位置に固定され、高解像度水浸レンズを使用して画像化できることである。空間的安定性は、支持寒天スラブにおいて使用される寒天濃度に決定的に依存する。当初、0.8%寒天から2%寒天の種々の濃度の範囲で試験したところ、この範囲の高濃度は安定して根に固定されていたが、根の成長はより速く減速し、いくつかの根は細胞伸長の減少を含む機械的ストレスの徴候を示した。対照的に、低寒天濃度は、画像化中にx、y、およびzに漂流する必要な支持および根を提供しなかった。最適な1.5%寒天スラブは、有害な機械的影響なしに試験片の位置を固定する。これらの条件下では、最初の30分程度で安定した後、根は数時間にわたって安定し、一晩のデータ取得が可能になる。 4Dデータの取得中、zスタック範囲は典型的にはb追加の5〜10μmの厚さであったが、これは主に、zドリフトまたは揺動ではなく、横方向の根の面外成長に対応するためであった。標準的な寒天濃度は浸透に対する耐性を提供するが、重力によって成長する根は最終的に寒天に浸透する。しかしながら、画像化チャンバーのわずかな変更によって、根の成長はカバースリップと平行に維持され、より古い側方の根および主な根を画像化することが可能になる。さらに、基本イメージングチャンバは、胚軸用に容易にカスタマイズすることができる。このシステムでは胚軸はより自由に浮遊しているので、画像取得のためのz軸ブラケットは通常約20μmに増加した。この研究では、基板の特性を制御することを可能にした直立型顕微鏡を使用した。イメージングチャンバは、倒立型顕微鏡構成に適応可能であってもよいが、断熱臓器に対する硬質カバースリップの時間依存性の影響を評価する必要がある。 </p>
Littlejohnらは、PFD自体が生物学的分子を容易に溶解しないことを指摘しており、これは薬理学的化合物の送達のために直接使用することができないことを意味する7 。この問題は、そのような化合物を寒天スラブが載っている固化した増殖培地のスラブを通して供給することによって克服された。灌流システムは、ウォッシュアウト実験のための選択の方法のままであるが、イメージングチャンバは、デキサメタゾン12および他の化合物の投与に首尾よく使用されている。一方、この記事はWagenheimの準備中であり、同僚らは、薄いシート顕微鏡法を用いて側根発達を画像化するためのチャンバーを記載している。
The authors have nothing to disclose.
ブリティッシュ・コロンビア大学のGeoffrey Wasteneys教授に、シードを表現するRFP-TUB6と匿名の校閲者の助けに感謝します。ヒュー・ディキンソン教授には、機械的なサポートとしてのセルロースフィルムの使用と、写真撮影のためのジョン・ベイカーの使用について警告してくれたことに感謝します。この研究は、BBSRCの研究助成金BB / G013993 / 1とBB / D004055 / 1のIM、およびBBSRC博士号訓練賞とClarendon Scholarship of CK
Perfluorodecalin | F2 Chemicals, F2 Chemicals Ltd., Lea Town, Lancashire, UK | FLUTEC PP6 | |
Poly(dimethylsiloxane) gum | Carolina Biological Supply; Burlington, NC, USA | Item # 132700 | Carolina Observation Gel |
Cavity Microscope Slides | VWR International Ltd, Lutterworth, UK | 10118-600 | Cavity is 13mm diameter and 0.2-0.4mm in depth. Any cavity slide will probably suffice |
Cyanoacrylate glue | Loctite | 604753 | Any 'super-glue' suitable for glass will probably suffice |
Cellulosic cellophane membrane | AA Packaging Limited, Preston, UK | 325P cellulose film; 80mm disc |