Summary

Спектроскопии ядерного магнитного резонанса для идентификации нескольких фосфорилирований искробезопасных неупорядоченных белков

Published: December 27, 2016
doi:

Summary

We describe here a method to identify multiple phosphorylations of an intrinsically disordered protein by Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy (NMR), using Tau protein as a case study. Recombinant Tau is isotopically enriched and modified in vitro by a kinase prior to data acquisition and analysis.

Abstract

Aggregates of the neuronal Tau protein are found inside neurons of Alzheimer’s disease patients. Development of the disease is accompanied by increased, abnormal phosphorylation of Tau. In the course of the molecular investigation of Tau functions and dysfunctions in the disease, nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy is used to identify the multiple phosphorylations of Tau. We present here detailed protocols of recombinant production of Tau in bacteria, with isotopic enrichment for NMR studies. Purification steps that take advantage of Tau’s heat stability and high isoelectric point are described. The protocol for in vitro phosphorylation of Tau by recombinant activated ERK2 allows for generating multiple phosphorylations. The protein sample is ready for data acquisition at the issue of these steps. The parameter setup to start recording on the spectrometer is considered next. Finally, the strategy to identify phosphorylation sites of modified Tau, based on NMR data, is explained. The benefit of this methodology compared to other techniques used to identify phosphorylation sites, such as immuno-detection or mass spectrometry (MS), is discussed.

Introduction

Одной из основных проблем здравоохранения в 21 – м веке являются нейродегенеративные заболевания , такие как болезнь Альцгеймера (AD). Tau представляет собой ассоциированный с микротрубочками белок, который стимулирует образование микротрубочек (МТ). Tau в равной степени участвуют в нескольких нейродегенеративных расстройств, так называемые тауопатий, из которых наиболее известным является AD. В этих расстройств, Tau автопортреты агрегатов в спаренных спиральных нитей () и пневмо – гидравлическая система подачи обнаруживается изменение многих остатков путем посттрансляционных модификаций (PTMs) , такие как фосфорилирования 1. Фосфорилирования белка тау участвует как в регуляции его физиологической функции стабилизации МП и патологической потерей функции, характеризующей нейроны AD.

Кроме того, тау – белок, когда интегрированный в пневмо – гидравлическая система подачи в пораженных нейронов, неизменно гиперфосфорилированного 2. В отличие от обычного Tau, который содержит 2-3 фосфатные группы, то гиперфосфорилированного Tau в пневмо-гидравлическая система подачи содержит от 5 до 9 Phosphatе группы 3. Гиперфосфорилированию Tau соответствует и к увеличению по сравнению со стехиометрическим на некоторых участках и к фосфорилированию дополнительных сайтов, которые называются патологические сайты фосфорилирования. Тем не менее, существует перекрытие между БА и здоровых взрослых моделей фосфорилирования, несмотря на количественные различия в уровне 4. Как специфические события фосфорилирования влияние функции и дисфункции Tau остается в значительной степени неизвестны. Мы стремимся, чтобы расшифровать регулирование Tau с помощью PTMs на молекулярном уровне.

Для того, чтобы углубить понимание молекулярных аспектов Tau, мы должны решать технические проблемы. Во-первых, Tau является внутренне неупорядоченным белком (IDP), когда выделен в растворе. Такие белки не имеют четко определенную трехмерную структуру, в физиологических условиях и требуют особого биофизических методов для изучения их функции (ы) и структурные свойства. Tau является парадигмой для растущего класса ВПЛ, часто ассоциированы спатологии, такие как нейродегенеративные заболевания, тем самым увеличивая интерес для понимания молекулярных параметров, лежащих в основе их функций. Во-вторых, характеристика тау фосфорилирования представляет собой аналитический вызов, с 80 потенциальных сайтов фосфорилирования вдоль последовательности длинного 441 аминокислотного Tau изоформы. Ряд антител были разработаны против фосфорилированных эпитопов Tau и используются для обнаружения патологического тау в нейронах или ткани головного мозга. Фосфорилирования события могут происходить по крайней мере 20 сайтов, направленных на пролина-направленного киназ, большинство из них в непосредственной близости в пределах Proline богатых региона. Качественные (какие сайты?) И количественный (что стехиометрии?) Характеристика трудно даже самых последних методов MS 5.

ЯМР-спектроскопии может быть использован для исследования неупорядоченные белки, которые являются высоко динамические системы состоят из ансамблей конформеров. Высокое разрешение ЯМР-спектроскопии была примеред исследовать как структуру и функцию белка тау. Кроме того, сложность профиля фосфорилирования Тау привела к разработке молекулярных инструментов и новых методов анализа с помощью ЯМР для идентификации сайтов фосфорилирования 6 8. ЯМР в качестве аналитического метода позволяет для идентификации сайтов фосфорилирования тау в глобальной манере, визуализация всех модификаций одноузельных в одном эксперименте, и количественной оценки степени фосфатного включения. Эта точка имеет важное значение, так как хотя фосфорилирования исследования по Tau изобилуют в литературе, большинство из них были выполнены с антителами, в результате чего большая степень неопределенности в течение полного профиля фосфорилирования и, таким образом, истинное влияние отдельных событий фосфорилирования. Рекомбинантные киназ, включая ПВА, гликоген-синтазы-киназы (3 & beta Gsk3β), Циклинзависимые киназы 2 / циклин A (CDK2 / СусА), циклин-зависимая киназа 5 (CDK5) / p25 актivator белок, внеклеточный-сигнал-регулируемой киназы 2 (ERK2) и микротрубочки сродства для регулирования киназы (МАРК), которые показывают активность фосфорилирования по отношению к Tau, могут быть получены в активной форме. Кроме того, мутанты Tau, которые позволяют генерировать специфические тау-белка изоформы с хорошо охарактеризованных узорами фосфорилирования используются для расшифровки фосфорилирования код Tau. ЯМР – спектроскопия затем используется для характеристики ферментативно модифицированных образцов Tau 6 8. Хотя в пробирке фосфорилирование тау является более сложным , чем псевдо-фосфорилирования , например, путем мутации выбранного Ser / Thr в глутаминовой кислоты (Glu) остатков, такой подход имеет свои преимущества. Действительно, ни структурные параметры воздействия, ни взаимодействия фосфорилирования всегда может быть имитируется глутаминовой кислот. Примером может служить поворот мотив наблюдается вокруг фосфосерина 202 (pSer202) / фосфотреонина 205 (pThr205), который не воспроизводится с Glu 9 мутаций.

<p claсс = "jove_content"> Здесь подготовка изотопно меченых Tau для ЯМР исследований будут описаны в первую очередь. Тау-белок фосфорилируется ERK2 модифицируется на многочисленных сайтах, описанных как патологические сайты фосфорилирования, и, таким образом, представляет собой интересную модель гиперфосфорилированного Tau. Подробный протокол Tau в пробирке фосфорилирования рекомбинантной ERK2 киназы представлена. ERK2 активируется фосфорилированием митогеном активируемой протеинкиназы / ERK киназ (МЕК) 10 12. В дополнение к подготовке модифицированного, меченные изотопами тау-белок, стратегия ЯМР используется для идентификации PTMs описана.

Protocol

1. Производство 15 Н, 13 С-тау (Рисунок 1) Transform pET15b-тау рекомбинантного Т7 экспрессии плазмиды 13,14 в BL21 (DE3) компетентны кишечной палочки бактериальные клетки 15. Примечание: кДНК , кодирующую самого длинного (441 аминокислотных остатков) Tau изоформы клониру…

Representative Results

На фиг.3А показан основной пик поглощения при 280 нм , наблюдаемых в процессе градиента элюции. Этот пик соответствует очищенного белка Tau, как показано на геле акриламид выше хроматограмме. На фиг.3В показана хорошо отделенного пик поглощения при 280 нм и пиком проводимости, гаранти?…

Discussion

Мы использовали ЯМР-спектроскопии для характеристики ферментативно модифицированных образцов тау. Рекомбинантная экспрессия и очистка описана здесь для полноразмерного человеческого белка тау так же может быть использован для получения мутантных Tau или Tau домены. Обогащены изотопо?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The NMR facilities were funded by the Région Nord, CNRS, Pasteur Institute of Lille, European Community (FEDER), French Research Ministry and the University of Sciences and Technologies of Lille. We acknowledge support from the TGE RMN THC (FR-3050, France), FRABio (FR 3688, France) and Lille NMR and RPE Health and Biology core facility. Our research is supported by grants from the LabEx (Laboratory of Excellence) DISTALZ (Development of Innovative Strategies for a Transdisciplinary approach to Alzheimer’s disease), EU ITN TASPPI and ANR BinAlz.

Materials

pET15B recombinant T7 expression plasmid Novagen 69257 Keep at -20°C
BL21(DE3) transformation competent E.coli bacteria New England Biolabs C2527I Keep at -80°C
Autoclaved LB Broth, Lennox  DIFCO 240210 Bacterial Growth Medium
MEM vitamin complements 100X Sigma 58970C Bacterial Growth Medium Supplement
15N, 13C-ISOGRO complete medium powder Sigma 608297 Bacterial Growth Medium Supplement
15NH4Cl Sigma 299251 Isotope
13C6-Glucose Sigma 389374 Isotope
Protease inhibitor tablets  Roche 5056489001 Keep at 4°C
1 tablet in 1ml is 40X solution that can be kept at -20°C
DNaseI EUROMEDEX 1307 Keep at -20°C
Homogenizer (EmulsiFlex-C3) AVESTIN Lysis is realized at 4°C
Pierce™ Unstained Protein MW Marker Pierce 266109
Active human MEK1 kinase, GST Tagged Sigma M8822 Keep at -80°C
AKTÄ Pure chromatography system GE Healthcare FPLC
HiTrap SP Sepharose FF (5 mL column) GE Healthcare 17-5156-01 Cation exchange chromatography columns
HiPrep 26/10 Desalting GE Healthcare 17-5087-01 Protein Desalting column
PD MidiTrap G-25 GE Healthcare 28-9180-08 Protein Desalting column
Tris D11, 97% D Cortecnet CD4035P5 Deuterated NMR buffer
5 mm Symmetrical Microtube SHIGEMI D2O ( set of 5 inner & outerpipe)  Euriso-top BMS-005B NMR Shigemi Tubes
eVol kit-electronic syringe starter kit Cortecnet 2910000 Pipetting
Bruker 900MHz AvanceIII with a triple resonance cryogenic probehead Bruker NMR spectrometer for data acquisition
Bruker 600MHz DMX600 with a triple resonance cryogenic probehead Bruker NMR spectrometer for data acquisition
TopSpin 3.1 Bruker Acquisition and Processing software for NMR experiments
Sparky 3.114 UCSF (T. D. Goddard and D. G. Kneller) NMR data Analysis software

References

  1. Grundke-Iqbal, I., Iqbal, K., Tung, Y. C., Quinlan, M., Wisniewski, H. M., Binder, L. I. Abnormal phosphorylation of the microtubule-associated protein tau (tau) in Alzheimer cytoskeletal pathology. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 83 (13), 4913-4917 (1986).
  2. Hasegawa, M., Morishima-Kawashima, M., Takio, K., Suzuki, M., Titani, K., Ihara, Y. Protein sequence and mass spectrometric analyses of tau in the Alzheimer’s disease brain. J. Biol. Chem. 267 (24), 17047-17054 (1992).
  3. Kopke, E., Tung, Y. C., Shaikh, S., Alonso, A. C., Iqbal, K., Grundke-Iqbal, I. Microtubule-associated protein tau. Abnormal phosphorylation of a non-paired helical filament pool in Alzheimer disease. J. Biol. Chem. 268 (32), 24374-24384 (1993).
  4. Wischik, C. M., Edwards, P. C., et al. Quantitative analysis of tau protein in paired helical filament preparations: implications for the role of tau protein phosphorylation in PHF assembly in Alzheimer’s disease. Neurobiol. Aging. 16 (3), 409-417 (1995).
  5. Prabakaran, S., Everley, R. A., et al. Comparative analysis of Erk phosphorylation suggests a mixed strategy for measuring phospho-form distributions. Mol. Syst. Biol. 7, 482 (2011).
  6. Landrieu, I., Lacosse, L., et al. NMR analysis of a Tau phosphorylation pattern. J. Am. Chem. Soc. 128 (11), 3575-3583 (2006).
  7. Amniai, L., Barbier, P., et al. Alzheimer disease specific phosphoepitopes of Tau interfere with assembly of tubulin but not binding to microtubules. FASEB J. 23 (4), 1146-1152 (2009).
  8. Qi, H., Prabakaran, S., et al. Characterization of Neuronal Tau Protein as a Target of Extracellular Signal-regulated Kinase. J. Biol. Chem. 291 (14), 7742-7753 (2016).
  9. Bibow, S., Ozenne, V., Biernat, J., Blackledge, M., Mandelkow, E., Zweckstetter, M. Structural impact of proline-directed pseudophosphorylation at AT8, AT100, and PHF1 epitopes on 441-residue tau. J. Am. Chem. 133 (40), 15842-15845 (2011).
  10. Boulton, T. G., Yancopoulos, G. D., et al. An insulin-stimulated protein kinase similar to yeast kinases involved in cell cycle control. Science. 249 (4964), 64-67 (1990).
  11. Anderson, N. G., Maller, J. L., Tonks, N. K., Sturgill, T. W. Requirement for integration of signals from two distinct phosphorylation pathways for activation of MAP kinase. Nature. 343 (6259), 651-653 (1990).
  12. Seger, R., Ahn, N. G., et al. Microtubule-associated protein 2 kinases, ERK1 and ERK2, undergo autophosphorylation on both tyrosine and threonine residues: implications for their mechanism of activation. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 88 (14), 6142-6146 (1991).
  13. Studier, F. W., Moffatt, B. A. Use of bacteriophage T7 RNA polymerase to direct selective high-level expression of cloned genes. J. Mol. Biol. 189 (1), 113-130 (1986).
  14. Rosenberg, A. H., Lade, B. N., Chui, D. S., Lin, S. W., Dunn, J. J., Studier, F. W. Vectors for selective expression of cloned DNAs by T7 RNA polymerase. Gene. 56 (1), 125-135 (1987).
  15. Hanahan, D. Studies on transformation of Escherichia coli with plasmids. J. Mol. Biol. 166 (4), 557-580 (1983).
  16. Laemmli, U. K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 227 (5259), 680-685 (1970).
  17. Bienkiewicz, E. A., Lumb, K. J. Random-coil chemical shifts of phosphorylated amino acids. J. Biomol. NMR. 15 (3), 203-206 (1999).
  18. Wishart, D. S., Bigam, C. G., Holm, A., Hodges, R. S., Sykes, B. D. 1H, 13C and 15N random coil NMR chemical shifts of the common amino acids. I. Investigations of nearest-neighbor effects. J Biomol NMR. 5 (1), 67-81 (1995).
  19. Tamiola, K., Acar, B., Mulder, F. A. A. Sequence-specific random coil chemical shifts of intrinsically disordered proteins. J. Am. Chem. Soc. 132 (51), 18000-18003 (2010).
  20. Lippens, G., Wieruszeski, J. M., et al. Proline-directed random-coil chemical shift values as a tool for the NMR assignment of the tau phosphorylation sites. Chembiochem. 5 (1), 73-78 (2004).
  21. Smet, C., Leroy, A., Sillen, A., Wieruszeski, J. M., Landrieu, I., Lippens, G. Accepting its random coil nature allows a partial NMR assignment of the neuronal Tau protein. Chembiochem. 5 (12), 1639-1646 (2004).
  22. Mukrasch, M. D., Bibow, S., et al. Structural polymorphism of 441-residue tau at single residue resolution. PLoS Biol. 7 (2), e34 (2009).
  23. Harbison, N. W., Bhattacharya, S., Eliezer, D. Assigning backbone NMR resonances for full length tau isoforms: efficient compromise between manual assignments and reduced dimensionality. PloS One. 7 (4), e34679 (2012).
  24. Morris, M., Knudsen, G. M., et al. Tau post-translational modifications in wild-type and human amyloid precursor protein transgenic mice. Nat. Neurosci. 18 (8), 1183-1189 (2015).
  25. Mair, W., Muntel, J., et al. FLEXITau: Quantifying Post-translational Modifications of Tau Protein in Vitro and in Human Disease. Analytical Chemistry. 88 (7), 3704-3714 (2016).
  26. Leroy, A., Landrieu, I., et al. Spectroscopic studies of GSK3{beta} phosphorylation of the neuronal tau protein and its interaction with the N-terminal domain of apolipoprotein E. J. Biol. Chem. 285 (43), 33435-33444 (2010).
  27. Theillet, F. -. X., Smet-Nocca, C., et al. Cell signaling, post-translational protein modifications and NMR spectroscopy. J. Biomol. NMR. 54 (3), 217-236 (2012).
  28. Qi, H., Cantrelle, F. -. X., et al. Nuclear magnetic resonance spectroscopy characterization of interaction of Tau with DNA and its regulation by phosphorylation. Biochemistry. 54 (7), 1525-1533 (2015).
  29. Cordier, F., Chaffotte, A., Wolff, N. Quantitative and dynamic analysis of PTEN phosphorylation by NMR. Methods. 77-78, 82-91 (2015).
  30. Thongwichian, R., Kosten, J., et al. A Multiplexed NMR-Reporter Approach to Measure Cellular Kinase and Phosphatase Activities in Real-Time. J. Am. Chem. Soc. 137 (20), 6468-6471 (2015).
  31. Smith, M. J., Marshall, C. B., Theillet, F. -. X., Binolfi, A., Selenko, P., Ikura, M. Real-time NMR monitoring of biological activities in complex physiological environments. Curr. Opin. Struct. Biol. 32, 39-47 (2015).
  32. Theillet, F. X., Rose, H. M., et al. Site-specific NMR mapping and time-resolved monitoring of serine and threonine phosphorylation in reconstituted kinase reactions and mammalian cell extracts. Nat. Protoc. 8 (7), 1416-1432 (2013).
  33. Bodart, J. -. F., Wieruszeski, J. -. M., et al. NMR observation of Tau in Xenopus oocytes. J. Magn. Reson. 192 (2), 252-257 (2008).
  34. Lippens, G., Landrieu, I., Hanoulle, X. Studying posttranslational modifications by in-cell NMR. Chem. Biol. 15, 311-312 (2008).
  35. Landrieu, I., Smet-Nocca, C., et al. Molecular implication of PP2A and Pin1 in the Alzheimer’s disease specific hyperphosphorylation of Tau. PLoS One. 6, e21521 (2011).
  36. Sibille, N., Huvent, I., et al. Structural characterization by nuclear magnetic resonance of the impact of phosphorylation in the proline-rich region of the disordered Tau protein. Proteins. 80 (2), 454-462 (2012).
  37. Schwalbe, M., Kadavath, H., et al. Structural Impact of Tau Phosphorylation at Threonine 231. Structure. 23 (8), 1448-1458 (2015).
  38. Amniai, L., Lippens, G., Landrieu, I. Characterization of the AT180 epitope of phosphorylated Tau protein by a combined nuclear magnetic resonance and fluorescence spectroscopy approach. Biochem. Biophys. Res. Commun. 412 (4), 743-746 (2011).
  39. Sottejeau, Y., Bretteville, A., et al. Tau phosphorylation regulates the interaction between BIN1’s SH3 domain and Tau’s proline-rich domain. Acta Neuropathol. Commun. 3 (1), (2015).
  40. Joo, Y., Schumacher, B., et al. Involvement of 14-3-3 in tubulin instability and impaired axon development is mediated by Tau. FASEB J. 29 (10), 4133-4144 (2015).
  41. Smet, C., Duckert, J. F., et al. Control of protein-protein interactions: structure-based discovery of low molecular weight inhibitors of the interactions between Pin1 WW domain and phosphopeptides. J. Med. Chem. 48 (15), 4815-4823 (2005).
  42. Milroy, L. -. G., Bartel, M., et al. Stabilizer-Guided Inhibition of Protein-Protein Interactions. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 54 (52), 15720-15724 (2015).
  43. Smet, C., Sambo, A. V., et al. The peptidyl prolyl cis/trans-isomerase Pin1 recognizes the phospho-Thr212-Pro213 site on Tau. Biochemistry. 43 (7), 2032-2040 (2004).
  44. Landrieu, I., Smet, C., et al. Exploring the molecular function of PIN1 by nuclear magnetic resonance. Curr Protein Pept Sci. 7 (3), 179-194 (2006).
  45. Lippens, G., Landrieu, I., Smet, C. Molecular mechanisms of the phospho-dependent prolyl cis/trans isomerase Pin1. FEBS J. 274 (20), 5211-5222 (2007).
  46. Smet-Nocca, C., Launay, H., Wieruszeski, J. M., Lippens, G., Landrieu, I. Unraveling a phosphorylation event in a folded protein by NMR spectroscopy: phosphorylation of the Pin1 WW domain by PKA. J. Biomol. NMR. 55, 323-337 (2013).
  47. Smet-Nocca, C., Wieruszeski, J. M., Melnyk, O., Benecke, A. NMR-based detection of acetylation sites in peptides. J. Pept. Sci. 16 (8), 414-423 (2010).
  48. Kamah, A., Huvent, I., et al. Nuclear magnetic resonance analysis of the acetylation pattern of the neuronal Tau protein. Biochemistry. 53 (18), 3020-3032 (2014).

Play Video

Cite This Article
Danis, C., Despres, C., Bessa, L. M., Malki, I., Merzougui, H., Huvent, I., Qi, H., Lippens, G., Cantrelle, F., Schneider, R., Hanoulle, X., Smet-Nocca, C., Landrieu, I. Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy for the Identification of Multiple Phosphorylations of Intrinsically Disordered Proteins. J. Vis. Exp. (118), e55001, doi:10.3791/55001 (2016).

View Video