Intratracheale intubatie-gemedieerde (IMIT) instillatie van reagentia is een uitstekend invasieve methode voor het bestuderen ademhalingsziekte, alsmede een werkwijze voor het indruppelen therapeutische reagentia direct in de longen. Het is een snelle en zeer reproduceerbare werkwijze die geschikt is voor preklinische proeven.
Ademhalingsaandoeningen studies betrekken doorgaans het gebruik van muismodellen als surrogaat-systemen. Er zijn echter significante fysiologische verschillen tussen de muizen en humane luchtwegen, vooral in de bovenste luchtwegen (URT). In sommige modellen kunnen deze verschillen in de muizen neusholte een significante invloed op het ziekteverloop en de presentatie in de onderste luchtwegen (LRT) hebben bij het gebruik van intranasale instillatie technieken, mogelijk beperken van het nut van het muismodel voor deze ziekten te bestuderen. Om deze redenen zou het voordelig zijn om een techniek voor bacteriën direct druppelen in de muis longen om LRT ziekte te bestuderen in de afwezigheid van betrokkenheid van de URT ontwikkelen. We hebben deze long specifieke levering techniek intubatie-gemedieerde intratracheale (IMIT) instillatie genoemd. Deze invasieve techniek minimaliseert het potentieel voor instillatie in de bloedbaan, die kunnen optreden gedurende meer invasieve traditionale chirurgische intratracheale infectie benaderingen, en beperkt de mogelijkheid van incidentele spijsverteringskanaal levering. IMIT Twee stappen waarbij muizen eerst worden geïntubeerd met een tussenstap juiste katheter waarborgen in de luchtpijp, gevolgd door insertie van een stompe naald in de katheter te bemiddelen directe levering van bacteriën in de longen. Deze aanpak vergemakkelijkt een> 98% effectiviteit van de levering in de longen met een uitstekende verdeling van de reagens in de hele long. Aldus IMIT vertegenwoordigt een nieuwe benadering voor LRT ziekte en therapeutische afgifte onderzoek direct in de longen, het verbeteren van het vermogen om muizen als surrogaten menselijke respiratoire ziekte te bestuderen. Bovendien is de nauwkeurigheid en reproduceerbaarheid van dit afgiftesysteem maakt het ook vatbaar Good Laboratory Practice Standards (GLP), en levering van uiteenlopende reagentia die hoog rendement afgifte aan de longen vereisen.
Muizen werden gebruikt voor het modelleren talrijke menselijke ziekten manifestaties, waaronder een groot aantal ademhalingsziekten. Surrogaat ziekte modellen zijn vaak niet in staat om alle aspecten van een gemodelleerde ziekte recapituleren, meestal als gevolg van belangrijke fysiologische of immuun verschillen in de twee gastheer modellen. Aldus is een doel van verbetering modelsystemen is benaderingen waarmee surrogaten nader spiegel een ziekteproces of gastheer respons zoals waargenomen in het oorspronkelijke hostsysteem ontwikkelen. Er zijn verschillende belangrijke fysiologische verschillen tussen muizen en mensen in het mechanisme waarmee zij lucht inspiratie. Inbegrepen in deze verschillen zijn significant ratiometrisch verschillen in grootte tussen de URT en LRT. Er wordt geschat dat muizen bezitten> 100 maal de URT oppervlak ten opzichte mens, genormaliseerd tegen de totale longcapaciteit 1,2. Dus de neusschelpen van de muis mogelijk verdergaande filtering van ingeademde lucht een veel grotere snelheid van breathi vergemakkelijkenng, die een significante invloed op studies van longontsteking of infectie van de neusholte speelt een belangrijke rol in de progressie van de ziekte.
Verscheidene verschillende benaderingen zijn gebruikt om bacteriën te druppelen in de longen van muizen mensachtige ademhalingsziekte bestuderen. De meest voorkomende van deze benaderingen is intranasale inoculatie, waarbij een vloeibare suspensie wordt aangebracht op één of beide neusgaten van een muis. Terwijl relatief eenvoudige, restricties zoals indruppelen aantal en het soort anesthesie kan de efficiëntie van instillatie invloed in de LRT via intranasale inoculatie 3-5. Specifiek, Miller et al. hebben aangetoond dat intranasale instillatie van Francisella tularensis in volumes van minder dan 50 pl niet tot instillatie van de bacteriën in de LRT 6. Zij merkte verder op betere LRT instillatie bij het gebruik van geïnhaleerde isofluraan in tegenstelling tot geïnjecteerde ketamine / xylazine voor anesthesie. Echter, onze ervarine met Yersinia pestis intranasale inoculatie geeft consistenter inoculatie kan worden bereikt met ketamine / xylazine vergeleken met isofluraan (MBL, ongepubliceerde gegevens). Deze verschillen kunnen worden toegeschreven aan pathogeen gebruikt of om de variatie in het laboratorium procedures, maar belangrijker nog wijzen op de potentiële variabiliteit in deze techniek. Bovendien longen kort na intranasale indruppeling blijkt dat een relatief lage percentage van de oorspronkelijke bacteriële inoculum de longen bereikt geoogst (bij Y. pestis, werden slechts 10% teruggevonden 1 uur na instillatie 7), wat suggereert dat een groot aantal bacteriën kon worden behouden in het URT (of ingeslikt in het maag-darmkanaal). In sommige ziektemodellen kan dit aanzienlijke afzetting van bacteriën op de URT mucosa ons begrip van de ziekteprogressie verwarren indien het organisme kan koloniseren de murine neusholte niet overeenkomstig de menselijke ziekte. Bijvoorbeeld met behulp van in vivo </ Em> beeldvorming, is waargenomen dat Burkholderia pseudomallei, die de menselijke URT niet koloniseren, veroorzaakt een overweldigend opportunistische infectie van de muizen neusholte bij aflevering via de intranasale instillatie methode 8.
Andere werkwijzen voor het indruppelen van bacteriën in de longen van muizen werden ook gebruikt in onderzoek naar infectieuze ziekten. In vergelijking met intranasale instillatie deze methoden vaak meer technische expertise en / of dure apparatuur vereisen zonder het elimineren van de mogelijkheid van infectie inleiding op verschillende plaatsen (bijvoorbeeld aerosol [URT en LRT]; transoral [spijsverteringskanaal en LRT] en chirurgische intratracheale [LRT en bloedstroom]). Gezien de mogelijke complicaties die kunnen worden geassocieerd met secundaire locaties van de infectie, zochten we naar een intratracheaal aanpak die de URT omzeilt en levert ziekteverwekker direct in de longen van verdoofde muizen ontwikkelen, maar beperkt ook onbedoelde inoculation in de bloedstroom of maagdarmkanaal. Om dit te bereiken, werd-intubatie gemedieerde intratracheale (IMIT) instillatie ontwikkeld als een niet-chirurgische procedure die LRT instillatie van inoculum garandeert door het opnemen van een tussenstap om de juiste plaatsing van de katheter te controleren voorafgaand aan de instillatie. Deze werkwijze wordt beschreven met kleurstof instillatie visueel tonen brede spreiding van het inoculum gehele long en P. aeruginosa instillatie de zeer effectieve levering (> 98% van het inoculum) van deze methode om de long te tonen. Belangrijk, terwijl oorspronkelijk ontwikkeld voor bacteriële levering IMIT biedt ook een doeltreffend middel om: i) instillatie van verschillende moleculen voor de studie van andere respiratoire ziektemodellen, ii) long-specifieke therapeutische aflevering, en iii) elementaire longfunctie studies, inclusief gerichte siRNA afgifte aan de long.
IMIT instillatie biedt belangrijke verbeteringen in bestaande respiratoire ziektemodellen in de mogelijkheid om reproduceerbaar druppelen reagentia direct in de longen. Het is een snelle aanpak heeft een ideale locatie voor een team van twee onderzoekers, waarvan één beheert de logistiek van de anesthesie en het kooien, en de andere die de IMIT techniek uitvoert. Grote studies kunnen worden uitgevoerd met IMIT met een gemiddelde tijd door 2-3 minuten per muis. Omdat de aanpak maakt gebruik van isofluraan als verdovingsmiddel, muizen herstellen zich snel uit de narcose, het reduceren van de houderij tijd bewaken dieren door herstel.
De technisch meest uitdagende aspect van de IMIT methode is de eerste stap van intuberen muizen. Individuen leren IMIT voeren zijn in staat om zich te concentreren op deze eerste stap van de katheter en ervoor te zorgen dat intubatie is bereikt door de visuele bevestiging van kleurstof beweging. Het voordeel van de aanpak is dat long-specific instillatie wordt gewaarborgd door het gebruik van de bevestiging van de intubatie, waarbij het vertrouwen van zowel de nieuwe onderzoeker en de expert probeert een moeilijke dier intuberen verhoogt. De belangrijkste elementen van het optimaliseren van de kans op een succesvolle intubatie zijn: i) het bereiken van een diepe sedatie om voldoende werktijd mogelijk maken, ii) de correcte plaatsing van de specula in de mond om een goede visualisatie van de epiglottis toelaten, iii) goede diepte plaatsing van de specula zodat de tong blijft ingetrokken tijdens de gehele procedure, en iv) het gebruik van de kantelende platform om de handen van de onderzoeker te ondersteunen, zodat de procedure ontspannen en met een gestage aanpak wordt uitgevoerd.
Een van de beperkingen van de IMIT procedure is gerelateerd aan de frequentie van IMIT instillatie evenementen. Vanwege de mogelijke trauma geassocieerd met een afgebroken intubatie wordt afgeraden meer dan twee intubatie pogingen worden uitgevoerd in een enkele sessie (maximaal twee missers). IMITheeft uitstekende mogelijkheden in zijn vermogen om te worden gebruikt voor therapeutica geven in de longen van muizen kunnen echter therapeutische strategieën die gebruik maken van zeer frequent afgifte van reagens in de longen te niet geschikt voor IMIT. Het kan zijn dat IMIT dagelijks kan worden gebruikt om reagentia in een muizen long leveren zonder significante trauma, maar alleen wanneer deze door een goed geschoolde onderzoeker, aangezien de meeste trauma geassocieerd met intubatie wordt verondersteld geassocieerd te zijn met een gemiste intubatie gebeurtenis . Dergelijke hoogfrequente IMIT moet met de lokale dierenartsen en IACUC worden besproken.
Een extra potentiële beperking van IMIT is de grootte van de muis die wordt geïntubeerd. De hierboven beschreven IMIT procedure werd ontwikkeld bij muizen van ongeveer 17-22 g, waarin een 20 G catheter bleek een geschikte grootte voor de trachea van muizen in deze grootte zijn. Grotere katheters zijn met succes gebruikt bij oudere muizen; de initiële ontwikkeling van IMIT made gebruik van een 18 G katheter in BALB / c-muizen die> 20 g. Belangrijk, indien alternatieve kathetergrootten gebruikt, stompe naalden worden geproduceerd die het lumen van de katheter te passen en zijn getrimd tot een lengte die slechts 1 mm uitstrekt voorbij de kathetertip. Intubatie muizen kleiner dan 17 gram zijn mogelijk, maar wordt niet aanbevolen vanwege de vereiste kennis en zou het gebruik van kleinere katheters en specula zijn dan hierboven beschreven, vereisen.
Wij hebben IMIT voor de levering van verschillende respiratoire pathogenen naast P. aeruginosa, waaronder B. pseudomallei 9 en Klebsiella pneumoniae 10. De IMIT model heeft belangrijke vorderingen gemaakt om onze studies van B. pseudomallei respiratoire aandoeningen, hebben geïdentificeerd dat intranasale inenting zorgt voor een vroeg, URT-gerelateerde morbiditeit van muizen in plaats van de systemische ziekte eindpunt waargenomen in menselijke ziekte 9. B. pseudomallei is een Tier 1 Select middel van biodefense invloed, en als zodanig, ademhalingsaandoeningen modellen worden ontwikkeld voor aërosol welke modellen een potentiële biodefense gerelateerd route van binnenkomst voor weaponized ziekteverwekkers. Omdat de huidige aerosol modellen leiden tot infectie van zowel de URT en LRT, hetzelfde potentieel vroege morbiditeit fenotypes we hebben geïdentificeerd voor de intranasale model van B. pseudomallei respiratoire ziekte kan van toepassing zijn op de spuitbus model. Een toekomstige aanpassing van de IMIT model zou een intubatie-gemedieerde aerosolafgifte (IMAD), waarin muizen geïntubeerd voor target aerosol levering alleen in de long. Mechanische ventilatoren zijn beschikking isofluraan anesthesie, die kan worden aangepast om een aërosol, in plaats van op vloeistof gebaseerde, pathogeen uitdaging leveren handhaven.
IMIT werd oorspronkelijk ontwikkeld als een benadering van de afgifte van bacteriën aan de longen te optimaliseren, maar ook toepassing voor de afgifte van andere reagentia in de muizenlong. Zoals dishierboven besproken, intranasale afgifte van verbindingen in muizen resulteert in een laag rendement, zeer variabele afgifte van reagentia in het doelorgaan van de long. Intranasale afgifte van Positron Emissie Tomografie (PET) beeldvorming reagentia met het muize longen leverde een 40% rendement aflevering 11, terwijl wij hebben aangetoond dat IMIT een uitstekend alternatief voor andere long levering zal met> 98% levering werkzaamheid en multilobar distributie. Deze verbetering van gerichte afgifte aan de long heeft de potentie om de reproduceerbaarheid van therapeutische afgifte verhogen voor de behandeling van longziekte. IMIT kon op dezelfde voordelen bieden aan de studies van: i) de impact van het milieu pulmonale irriterende stoffen, ii) longkanker fenotypische studies, iii) long-specifieke siRNA knock-down.
The authors have nothing to disclose.
The authors are grateful for the support from the Center for Predicative Medicine Animal Models (Carol Vanover, Ashley Biller and Jennifer Kraenzle) and Microbiology (Daniel Cramer and Julie Sotsky) Core Facilities. This work was supported by funding from the NIH (HHSN272201000033I to M.B.L and J.M.W.).
Name of Material/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Rodent, Tilting WorkStand | Hallowell EMC | 000A3467 | Base should be detached when working in a BSC |
Operating Otoscope Head | Welch Allyn | 21700 | |
Otoscope 3.5 V Li Battery | Welch Allyn | 71900 | |
Mouse Intubation Specula short, Autoclaveable | Hallowell EMC | 200A3589S | |
Incisor Loops | Hallowell EMC | 210A3490A | |
Cotton fine tip applicator | Puritan | 871-PC DBL | Used for tongue retraction |
I.V. Catheter, 20G | Exel Int | 26741 | Optional: fit a silicon sleeve with 10mm exposed catheter surface |
Gas tight syringe, 250ul | Hamilton | 81120 | Used for delivery of liquid inoculum by IMIT |
Blunt Needle, 22G | Hamilton | 91022 | Trim to length to protrude 1mm from 20G catheter |
Guide wire (Fiber optic wire, 0.5mm) | TheFiberOpticStore.com | FOF .50 | Cut to 6" length: used as guide wire for intubation |
Tuberculin syringe, 1ml | Becton Dickinson | 309659 | Assemble with fiber optic wire as guide wire |
Brilliant Blue R (Coomassie) | Sigma | B0149 | |
Tygon tubing, 1/16" | Saint Gobain | ALC00002 | |
Male luer 1/16" barb | Cole Parmer | 45503-22 | |
Female luer 1/16" barb | Cole Parmer | 45500-00 | |
Lidocaine, USP | Spectrum | LI102 | pH lidocaine into solution at 2%(w/v) pH7.0 |
Sample bag, 1oz | Whirl-Pak | B01067 | |
U-bottom 96 well plate, sterile | Greiner | 650161 |