Nötrofil Hicret altında Fizyolojik Akış sırasında endotel hücre-hücre Eklemlerinin Gerçek zamanlı Görüntüleme

Nötrofiller bir bilgilendirilmiş onam imzaladı sağlıklı gönüllülerden izole edilmiştir. Araştırma, insan refahı için kurumsal ve ulusal rehberlere uygun olarak gerçekleştirilmiştir. 1. Kaplama ve İnsan Göbek Daman Endotel Hücrelerinde bakımı Üreticinin talimatlarına göre Kültürü İnsan Umbilikal Ven Endotelyal Hücrelerinde (HUVECler). Fıbronektin üzerinde büyümeye HUVECler (FN) ortam kullanılarak (demineralize su içinde çözülmüş 10 mg / ml) yemekler -kaplı (Endotel Büyüme Ortamı (EGM-2) ile takviye edilmiş endotel singlequots Bazal Ortam (EBM-2) ortamı). Deneyler için 4-8 geçişleri arasında hücre kültür kullanın. Gün 1: 37 ° C'de en az 2 saat boyunca 100 ul fibronektin (PBS içinde 10 ug / ml) ve% 5 CO2 ile kaplayın akış odaları. 2. Gün: hücreleri% 80-90 ulaştığında, OS fosfat tamponlu tuzlu su ile yıkandıktan sonra dikkatli Hücreleri tripsinize edin (pBS), pH 7.4, medyayı kullanarak 800.000 hücre / ml 800 xg santrifüj ve tekrar süspansiyon. Plaka 80000 FN-kaplanmış akış odalarından her kanal için hücreler yavaşça yukarı ve aşağı hücre süspansiyonu pipetle. Bir 37 ° C'de inkübatör ve% 5 CO2 içinde kültür göre O / N. 3. Gün: yavaşça 45 ° açıyla slayt eğerek akış slaytı medyayı yenileyin. (Şekil 1A bakınız). NOT: Sadece rezervuarlarda değil kanalında kendisi ortamı kaldırmak için tavsiye edilir. Kanallardaki ortam çıkarılması nedeniyle pipetleme neden ortamın sürükleme kuvveti endotel hücre kaybına ve ölüme yol açabilir. Endotel hücreler, bir tek tabaka (yani,% 100 ortak akışlı) meydana varsa faz kontrast mikroskobu ile kontrol edin. Hücreler% 100 birleşik değilse onlar% 100 izdiham ulaşana kadar, bir gün Ortamı iki kez değiştirin. Hücrelerin birleşik hale gelmesinden sonra, (yukandaki adım ortam ile hücrelerini uyarır1.1), iltihabi aracı madde (TNF-α (10 ng / ml) ihtiva etmektedir). , Endotel iltihabik bir fenotipe, TNF-α sonuçlarla HUVECler O / N (örneğin, 12 saat), yani teşvik., Üst-düzenlemenin, örneğin ICAM-1 ve VCAM-1 13 gibi hücre yapışma moleküllerinin. Perkol Degradeleri kullanma 2. Polimorfonükleer Lökosit izolasyonu Polimorfonükleer lökositler (PMN) izole önce N-2-hidroksietilpiperazin-N'-2-etansülfonik asit (akış tamponu bundan sonra da adlandırılır) (HEPES) Tampon hazırlayın. Akış tamponu izole PMN yıkamak için kullanılır ve bu akış deneyinde tampon olarak. Akış tamponu hazırlamak için: 7.72 g NaCl (132 mM), 4.76 g HEPES (20 mM), 0.45 g KCl (6 mM), 0.25 gr MgSO 4 • 7H H2O (1 mM), K 2 HPO 4 • 3H seyreltik 2 O minerali giderilmiş su, 1 L (1.2 mM) ve (bu stok birkaç hafta boyunca 4 ° C de muhafaza edilebilir), pH 7.4 ayarlanır. Taze 100 ul 1 M CaCl2 & # ekle160 (1 mM), 2.5 mi, 200 g / L'stok konsantrasyonu, 100 ml (0.5% h / h), ve 0.1 g glikoz, insan albümini (% 0.1 a / ​​h) akış tamponu. Daha sonra, bir 0.45 um filtre kullanılarak, akış tamponu filtre. NOT: Bu akış-tampon her bir deney için taze olarak hazırlanması gerekir. Önceki PMN izolasyonu, PBS, pH 7.4 içinde% 10 trisodyum sitrat (TNC) solüsyon hazırlanır. Sağlıklı bir gönüllüden sodyum heparin vacuettes tüm kanın 20 ml toplayın. 50 ml tüpler içinde% 10, PBS / TNC 1 ve pipet 20 mi ((gr / ml 1,130 bir yoğunluğu olan su içinde bir koloidal çözelti) bir a / a% 23) 12.5 ml Percoll üzerine dikkatli bir şekilde kan seyreltildi: Tam kan 1 seyreltin Yeni bir 50 ml tüp içinde. Dikkatlice santrifüj tüpleri ve 800, düşük bir ivme ile xg ve oda sıcaklığında belirlenen kırılma yok, 20 dakika boyunca dönerler. Not: Percoll seyreltilmiş kan eklerken, bir 45 ° açıda Percoll içeren tüp eğme ve yavaşça tüp wit seyreltilmiş kan pipetleh yavaş pipet çocuk ayarı. Tüm sıvı çıkarın ve daha sonra, 500 ml buz soğukluğunda eritrosit lizis tamponu (4.15 g NH4CI [0.155 M], 0.5 gr 3 KHCO [0.01 M] ve 18.5 mg EDTA (üç katlı III) [0.1 mm] tüpün doldurulması ) buz soğukluğunda H2O eritrositleri lizise uğratmak üzere. Süspansiyon etkin sonları ile, 4 ° C'de 5 dakika boyunca 500 x santrifüj, ardından koyu kırmızı, olana kadar, bazen Tersine tüp, tüp buz üzerinde bırakın. Not: topak parçası eritrositleri ile birlikte PMN (nötrofiller, eozinofiller, bazofiller) içerir. Süpernatantı ve 4 ° C'de 5 dakika boyunca 500 x g'de, buz sıcaklığında lizis tamponu içinde iki kez yıkayın pelet. RT'de akış tamponu ile pelet ve hemositometer ya da otomatik hücre sayıcı kullanarak PMN konsantrasyonunu belirlemek. 1 x 10 6 hücre / ml akış tamponu içinde askıya alma PMN ve oda sıcaklığında tutun. Endotel Junction 3. EtiketlemeEl VE-kaderin ve PECAM-1 1 de PECAM Alexa Fluor 647 antikoru (klon WM59) ekleyin: 1:50 seyreltme HUVEC kültür ortamı 100 seyreltme ile kalsiyuma bağlı VE-kaderin-FITC antikoru (klon 55-7H1), (adım 1.1) ve önceki fizyolojik akış koşulları altında nötrofil trans sırasında endotel hücre birleşim dinamiklerini görselleştirmek için akış deney başlamadan 30 dakika inkübe edilir. NOT: akış odalarına doğrudan etiketli antikorlar eklemeden önce, her bir kanal hacim 100 ul aşmamasını sağlamak. Bu, mümkün olduğunca düşük antikor giderleri tutmanıza yardımcı olur. 4. PMN Deney TEM altında Akış Önce akış sistem içine enjekte edilmesinden 37 ° C'de 15 dakika boyunca bir su banyosu içine PMN yerleştirin. Th kurarken boş bir akış odasına boru bağlayın ve oluşumunu engellemek için (örneğin, 37 ° C) akış tampon sıcak (bkz adım 4.3) ile doldurun hava-kabarcıklarE akış sistemi. 20 ml'lik bir şırınga ihtiva eden silikon tüp kullanılarak şırınga pompası akış sistemine boş bir akış odasının bir tarafında bağlayın ve mikroskop kademesine akış odasına koyun. 37 ° C akış tamponu (Şekil 1B) ile dolu hazne şişeye boş bir akış odasının diğer tarafını ve akış tamponu ile her borunun doldurmak için şırınga pompası başlar. Pompa şırıngaya akış bölmesi boyunca rezervuardan akış-tampon çeker. Not: Bu boru da akışının kesilmesi ve hava kabarcıkları oluşturmadan PMN çalışan bir deneye bir iğne ile enjekte edilmesi için izin veren bir hat-içi enjeksiyon ağzının luer içerir. TNF-α-muamele edilmiş HUVECler içeren akış bölmesi ile boş akış bölmesi yerine, akış tamponu ihtiva eden boru bağlantı ve bir mikroskop kademesine (Şekil 1C) içine yerleştirin. Çıkarmadan ve tekrar bağlamadan önce tüplerini çimdikkapalı kısma değil, HUVECler içeren odalarına m boru ve / veya akış odası içinde hava kabarcıklarının oluşmasına neden olabilir. Sonraki kılcal venüllerin fizyolojik akış hızına uygun olarak, 1 dyn / cm 2 akış hızını ayarlamak (1-5 din / cm 2). Tutanak Diferansiyel Girişim Kontrast (DIC), FITC (488 nm) ve Alexa Fluor 647 (647 nm) aynı anda odaklı lazer tarama mikroskobu kullanılarak. PMN 1 mi şırıngalar kullanılarak hat-içi luer enjeksiyon ağzından (Şekil 1D) ile yavaş yavaş akış sistemi (adım 4.1) enjekte edilir. Bir kaç dakika sonra, lökositler yapışan ve göçmek, görünür. Akış odasına akış odasının ve pipetleme fiksatif (PBS içerisinde% 3.7 formaldehit) boruların sökülmesini tarafından arzu edilen herhangi bir an deney durdurun. 10 dakika boyunca tespit Veren, PBS ile yıkanması işlemi uygulanır. Veri görüntüleme yazılımı (malzeme ve ekipman tabloya bakınız) kullanılarak analiz edilmektedir. NOT: 37 ° C,% 5 CO2 olan bir sabit sıcaklığa sahip bir klima kabini ile teçhiz edilmiş bir odaklı lazer tarama mikroskopu ve 63X ile de deneme amaçlı yağ gerçekleştirin.