Summary

Microcristallografia dei cristalli proteici e<em> In Cellulo</em> Diffrazione

Published: July 21, 2017
doi:

Summary

Viene presentato un protocollo per la cristallografia a raggi X utilizzando microcristalli di proteine. Sono stati confrontati due esempi che analizzano microcristalli in vivo dopo la purificazione o in cellulo .

Abstract

L'avvento di linee di microfocus di alta qualità in molti impianti di sincrotrone ha consentito l'analisi di routine di cristalli inferiori a 10 μm nella loro dimensione più grande, che rappresentavano una sfida. Presentiamo due flussi di lavoro alternativi per la determinazione della struttura di microcristalli proteici mediante cristallografia a raggi X con particolare attenzione ai cristalli in vivo . I microcristalli vengono estratti dalle cellule per ultrasuoni e purificati mediante centrifugazione differenziale o analizzati in cellulo dopo la selezione delle cellule mediante citometria a flusso di cellule contenenti cristalli. Opzionalmente, cristalli purificati o cellule contenenti cristalli vengono imbevuti in soluzioni di atomi pesanti per la fase di sperimentazione. Questi campioni vengono quindi preparati per esperimenti di diffrazione in modo analogo mediante applicazione su un supporto micromesh e raffreddamento a flash in azoto liquido. Breve descrizione e confronto di esperimenti di diffrazione seriale di microcristalli isolati e di cristallo-Contenenti le cellule utilizzando un beamline di sincrotrino microfocus per produrre set di dati adatti per la fase di fasi, la costruzione di modelli e la raffinatezza.

Questi flussi di lavoro sono esemplificati con i cristalli del polyhedrin Bombyx mori cypovirus 1 (BmCPV1) prodotto dall'infezione di cellule insettiche con un baculovirus ricombinante. In questo caso, l'analisi cellulare è più efficace dell'analisi dei cristalli purificati e produce una struttura in ~ 8 giorni dall'espressione al raffinamento.

Introduction

L'uso della cristallografia a raggi X per la determinazione di strutture ad alta risoluzione di macromolecole biologiche ha registrato una costante progressione negli ultimi due decenni. La crescente assunzione di cristallografia a raggi X da ricercatori non esperti esemplifica la democratizzazione di questo approccio in molti settori della scienza della vita 1 .

Storicamente, i cristalli con dimensioni inferiori a ~ 10 μm sono state considerate come impegnative, se non inutilizzabili, per la determinazione della struttura. La crescente disponibilità di microfocus dedicate a fonti di radiazione di sincrotrone in tutto il mondo e progressi tecnologici, come lo sviluppo di strumenti per la manipolazione dei microcristalli, hanno rimosso gran parte di queste barriere che hanno ostacolato l'ampio utilizzo della microcristallografia a raggi X. Avanzamenti nella microcristallografia a raggi X seriali 2 , 3 e diffrazione a micro elettronica 4 haVe ha mostrato che l'uso di micro- e nanocristalli per la determinazione della struttura non è solo possibile ma anche a volte preferibile all'uso di grandi cristalli 5 , 6 , 7 .

Questi progressi sono stati applicati per lo studio dei peptidi 8 e dei cristalli naturali prodotti dai virus degli insetti 9 , 10 . Sono ora utilizzati per una vasta gamma di macromolecole biologiche tra cui i sistemi più difficili come le proteine ​​a membrana e grandi complessi 11 . Per facilitare l'analisi di questi microcristalli, sono stati analizzati in meso, proteine di membrana 12 in particolare e in chips microfluidica 13.

La disponibilità di queste metodologie microcristallografia nuovi ha sollevato la possibilità di utilizzare inCristallizzazione vivo come un nuovo percorso per la biologia strutturale 14 , 15 , 16 che offre un'alternativa alla cristallogenesi classica in vitro . Purtroppo, anche quando si possono produrre cristalli in vivo , rimangono diversi ostacoli quali la degradazione o la perdita di ligandi durante la depurazione dalle cellule, la difficoltà nella manipolazione e la visualizzazione dei cristalli alla radiazione di sincrotrone e negli esperimenti di diffusione a raggi X. Come cristalli alternativi sono stati analizzati anche direttamente all'interno della cella senza alcuna fase di purificazione 17 , 18 , 19 . Un'analisi comparativa suggerisce che tali approcci cellulari possono essere più efficienti dell'analisi dei cristalli purificati e dei dati di resa di maggiore risoluzione 20 .

Questo protocollo è inTendeva ad aiutare i ricercatori alla microcristallografia delle proteine. Fornisce metodologie che si concentrano sulla preparazione e manipolazione del campione per gli esperimenti di diffrazione a raggi X in un beamline di sincrotrone. Si propongono due opzioni utilizzando cristalli isolati per microcristallografia classica o cellule contenenti cristalli ordinate per citometria a flusso per l'analisi cellulare ( Figura 1 ).

Protocol

Nota: La cristallizzazione in vivo è stata segnalata in molti organismi, inclusi batteri, lieviti, piante, insetti e mammiferi (riveduti al punto 21 ). La cristallizzazione delle proteine ​​ricombinanti è stata inoltre ottenuta in laboratorio utilizzando transfection transitoria di cellule di mammiferi e infezione da baculovirus di cellule insettiche. Il seguente protocollo è stato sviluppato utilizzando il gene polyhedrin di Bombyx mori cypovirus 1 (BmCPV1) clonato in un…

Representative Results

Viene presentata una panoramica di entrambi i metodi alternativi per la determinazione della struttura utilizzando microcristalli in vivo ( Figura 1 ). La polihedra può essere facilmente purificata mediante sonicazione e centrifugazione. A causa della loro densità, formano uno strato nella parte inferiore del tubo sotto uno strato di detriti che possono essere rimossi pipettando ( Figura 3a e 3b ). Il…

Discussion

Questo protocollo fornisce due approcci per analizzare i microcristalli allo scopo di facilitare l'analisi di cristalli molto piccoli che sarebbero stati trascurati in passato.

Fasi critiche per la purificazione microcristallina
Il protocollo presentato è stato ottimizzato utilizzando il polyhedrin Bombyx mori CPV1 espresso in cellule Sf9 come sistema di modello. Tuttavia, i microcristalli in vivo presentano una grande variabilità nella resiste…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Gli autori vorrebbero riconoscere Chan-Sien Lay per fornire immagini di microcristalli purificati, Daniel Eriksson e Tom Caradoc-Davies per il supporto alla linea MX2 del Synchrotron australiano e Kathryn Flanagan e Andrew Fryga della struttura FlowCore presso la Monash University per la loro Un'assistenza inestimabile.

Materials

Sf9 cells Life Technologies
SF900-SFM insect medium Life Technologies
1L cell culture flask Thermofisher Scientific
Shaking incubator for insect cell culture Eppendorf
50mL conical tubes Falcon
Centrifuge with swing buckets for 50mL tubes Eppendorf
Sonicator equiped with a 19mm probe MSE Soniprep 150 
Glass slides Hampton Research
Hemacytometer Sigma-Aldrich
Propidium iodide Thermofisher Scientific
BD Influx cell sorter  BD Biosciences
Hampton Heavy atom screens Hampton Research
Microcentrifuge Eppendorf
Micromesh Mitigen 700/25 meshes offer a larger surface. Indexed meshes can be purchased for systematic studies.
Paper wick Mitigen The size of the paper wick can be varied for optimal flow. This will largely depend on the nature of the crystals and cryoprotectant used.
Ethylene glycol Sigma-Aldrich
Trypan blue Life Technologies
MX2 microfocus beamline Australian Synchrotron A list of available microfocus beamlines can be found in Boudes et al. (2014) Reflections on the Many Facets of Protein
Microcrystallography.
Australian Journal of Chemistry 67 (12), 1793–1806,
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Cite This Article
Boudes, M., Garriga, D., Coulibaly, F. Microcrystallography of Protein Crystals and In Cellulo Diffraction. J. Vis. Exp. (125), e55793, doi:10.3791/55793 (2017).

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