Summary

단백질 결정의 미세 결정학 및<em> 셀룰로에서</em> 회절

Published: July 21, 2017
doi:

Summary

단백질 미세 결정을 사용하는 X 선 결정학을위한 프로토콜이 제시됩니다. 정제 후 또는 cellulo에서 미세 -grown 생체 분석 두 예가 비교된다.

Abstract

많은 싱크로트론 설비에서 고품질의 미세 초점 빔라인이 출현함에 따라 도전을 대표하는 가장 큰 차원에서 10μm보다 작은 결정의 일상적인 분석이 가능 해졌다. 우리 는 생체 내에서 성장한 결정에 특별한 초점을 맞춘 X 선 결정학에 의한 단백질 미결정의 구조 결정을위한 두 가지 대안 적 작업 흐름을 제시합니다. 미세 결정은 초음파 처리에 의해 세포로부터 추출되고 차등 원심 분리에 의해 정제되거나 결정 함유 세포의 유동 세포 계측법에 의한 세포 분류 후에 셀룰로오스로 분석된다. 선택적으로, 정제 된 결정 또는 결정 – 함유 세포를 실험적 단계적 조정을 위해 중질 원자 용액에 침지시킨다. 이 샘플들은 액체 질소에서의 마이크로 메쉬지지 및 플래시 냉각에 대한 적용에 의해 유사한 방식으로 회절 실험을 위해 준비됩니다. 격리 된 미세 결정과 수정 결정의 연속 회절 실험을 간략하게 기술하고 비교한다.microfocus 싱크로트론 빔라인을 사용하여 셀을 포함하는 셀을 조정하여 위상 조정, 모델 구축 및 미세 조정에 적합한 데이터 세트를 생성합니다.

이러한 워크 플로우는 곤충 세포에 재조합 배큘로 바이러스 (baculovirus)가 감염되어 생성 된 Bombyx mori cypovirus 1 (BmCPV1) 폴리 헤드린의 결정체를 예로들 수 있습니다. 이 사례 연구 에서 셀룰로오스 분석은 정제 된 결정의 분석보다 효율적이며 표현에서부터 정제까지 ~ 8 일 내에 구조를 산출합니다.

Introduction

생물 고분자의 고해상도 구조 결정을위한 X 선 결정학의 사용은 지난 20 년간 꾸준히 발전해 왔습니다. 전문가가 아닌 연구자에 의한 X 선 결정학 (X-ray crystallography)의 증가 추세는 생명 과학 분야의 많은 분야에서이 접근법의 민주화를 보여줍니다 1 .

역사적으로 ~ 10 μm 이하의 크기를 가진 결정은 구조 결정을 위해 사용하기에 어렵지 않은 경우 도전적인 것으로 간주되었습니다. 싱크로트론 방사선 소스의 전용 미세 초점 빔라인의 가용성 증가와 미세 결정 조작 도구 개발과 같은 기술적 진보로 인해 X 선 미세 결정의 폭 넓은 사용을 방해하는 이러한 장벽이 제거되었습니다. 직렬 X 선 마이크로 결정학 2 , 3 및 마이크로 전자 회절 4 ha의 발전구조 결정을위한 마이크로 및 나노 결정의 사용이 가능할뿐만 아니라 때로는 큰 결정 5 , 6 , 7 의 사용보다 바람직하다는 것을 보여 주었다.

이러한 발전은 제 8 펩티드 곤충 바이러스 9, 10에 의해 생성 된 천연 결정의 연구에 적용 하였다. 이들은 이제 막 단백질 복합체 크고 11 가장 어려운 시스템을 포함하는 생물학적 고분자의 다양한 사용된다. 이 미세 결정의 분석을 용이하게하기 위해 meso , 특히 멤브레인 단백질 12 와 마이크로 유체 칩 13 에서 분석되었습니다.

이러한 신규 microcrystallography 방법론의 가용성에 사용할 수있는 가능성을 제기in vivo 결정학에 대한 대안을 제공하는 구조 생물학 14 , 15 , 16 의 새로운 경로로서의 생체 결정화. 불행하게도, 생체 내 결정체가 생성 될 수있을지라도, 세포로부터의 정제 동안 리간드의 분해 또는 손실, 싱크로트론 빔라인에서의 수정 및 시각화의 어려움 및 지루한 X- 선 회절 실험과 같은 몇 가지 장애물이 남아있다. 대안으로 결정은 정제 단계 17 , 18 , 19 없이 셀 내에서 직접 분석되었습니다. 비교 분석은 cellulo 접근 그러한 정제 된 결정과 높은 해상도 (20)의 수율 데이터의 분석을보다 더 효율적이 될 수 있음을 시사한다.

이 프로토콜은단백질 미세 결정학에 새로운 연구원을 돕는 경향이 있었다. 싱크로트론 빔라인에서 X 선 회절 실험을위한 시료 준비 및 조작에 초점을 맞춘 방법론을 제공합니다. 두 가지 옵션이 고전 microcrystallography 또는 cellulo 분석 ( 그림 1 )에 대한 유동 세포 계측법에 의해 정렬 크리스탈 포함 세포에 대한 격리 된 결정을 사용하여 제안하고 있습니다.

Protocol

참고 : 생체 내 결정화는 박테리아, 효모, 식물, 곤충 및 포유 동물 (참고 문헌 21 에서 검토 됨)을 비롯한 많은 유기체에서보고되었습니다. 포유류 세포의 일시적인 형질 감염 및 곤충 세포의 바큘로 바이러스 감염을 사용하여 재조합 단백질의 결정화가 실험실에서도 달성되었다. 다음 프로토콜은 참조 22의 지침에 따라 생성 된 baculovirus polyhedrin promoter하?…

Representative Results

생체 내 미세 결정을 이용한 구조 결정을위한 두 가지 대체 방법의 개요가 제시됩니다 ( 그림 1 ). Polyhedra는 초음파 처리 및 원심 분리로 쉽게 정제 할 수 있습니다. 밀도 때문에, 그들은 pipetting ( 그림 3a 와 3b )에 의해 제거 할 수있는 파편 층 밑에 튜브의 바닥에 레이어를 형성합니다. 그런 다음 샘플을 여러 ?…

Discussion

이 프로토콜은 과거에 간과되었을 작은 결정의 분석을 용이하게하기 위해 미정을 분석하는 두 가지 접근법을 제공합니다.

미세 결정 정제를위한 중요한 단계
제시된 프로토콜은 Sf9 세포에서 발현 된 Bombyx mori CPV1 폴리 헤드린을 모델 시스템으로 사용하여 최적화 하였다. 그러나, 생체 내 미결정은 기계적 저항성에 큰 변화를 보인다. 예를 들면…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

저자들은 오스트레일리아 싱크로트론의 MX2 빔라인에서의 지원을 위해 정화 된 미세 결정, Daniel Eriksson 및 Tom Caradoc-Davies의 사진을 제공 한 Chan-Sien Lay과 Monash University의 FlowCore 시설에서 나온 Kathryn Flanagan 및 Andrew Fryga 귀중한 도움.

Materials

Sf9 cells Life Technologies
SF900-SFM insect medium Life Technologies
1L cell culture flask Thermofisher Scientific
Shaking incubator for insect cell culture Eppendorf
50mL conical tubes Falcon
Centrifuge with swing buckets for 50mL tubes Eppendorf
Sonicator equiped with a 19mm probe MSE Soniprep 150 
Glass slides Hampton Research
Hemacytometer Sigma-Aldrich
Propidium iodide Thermofisher Scientific
BD Influx cell sorter  BD Biosciences
Hampton Heavy atom screens Hampton Research
Microcentrifuge Eppendorf
Micromesh Mitigen 700/25 meshes offer a larger surface. Indexed meshes can be purchased for systematic studies.
Paper wick Mitigen The size of the paper wick can be varied for optimal flow. This will largely depend on the nature of the crystals and cryoprotectant used.
Ethylene glycol Sigma-Aldrich
Trypan blue Life Technologies
MX2 microfocus beamline Australian Synchrotron A list of available microfocus beamlines can be found in Boudes et al. (2014) Reflections on the Many Facets of Protein
Microcrystallography.
Australian Journal of Chemistry 67 (12), 1793–1806,
doi:10.1071/CH14455.

References

  1. Tari, L. W. The utility of structural biology in drug discovery. Methods Mol Bio (Clifton, N.J). 841, 1-27 (2012).
  2. Gati, C., et al. Serial crystallography on in vivo grown microcrystals using synchrotron radiation. IUCrJ. 1 (2), (2014).
  3. Redecke, L., et al. Natively inhibited Trypanosoma brucei cathepsin B structure determined by using an X-ray laser. Science. 339 (2013), 227-230 (2013).
  4. Shi, D., Nannenga, B. L., Iadanza, M. G., Gonen, T. Three-dimensional electron crystallography of protein microcrystals. eLife. 2, e01345 (2013).
  5. Evans, G., Axford, D., Waterman, D., Owen, R. L. Macromolecular microcrystallography. Crystallog. Rev. 17 (2), 105-142 (2011).
  6. Smith, J. L., Fischetti, R. F., Yamamoto, M. Micro-crystallography comes of age. Curr Opin Struct Biol. 22 (5), 602-612 (2012).
  7. Boudes, M., Garriga, D., Coulibaly, F. Reflections on the Many Facets of Protein Microcrystallography. Aust J Chem. 67 (12), 1793-1806 (2014).
  8. Nelson, R., et al. Structure of the cross-beta spine of amyloid-like fibrils. Nature. 435 (7043), 773-778 (2005).
  9. Coulibaly, F., et al. The molecular organization of cypovirus polyhedra. Nature. 446 (7131), 97-101 (2007).
  10. Coulibaly, F., et al. The atomic structure of baculovirus polyhedra reveals the independent emergence of infectious crystals in DNA and RNA viruses. Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (52), 22205-22210 (2009).
  11. Johansson, L. C., et al. Structure of a photosynthetic reaction centre determined by serial femtosecond crystallography. Nat Comm. 4, (2013).
  12. Li, D., Boland, C., Aragao, D., Walsh, K., Caffrey, M. Harvesting and Cryo-cooling Crystals of Membrane Proteins Grown in Lipidic Mesophases for Structure Determination by Macromolecular Crystallography. J Vis Exp. (67), (2012).
  13. Roedig, P., et al. A micro-patterned silicon chip as sample holder for macromolecular crystallography experiments with minimal background scattering. Sci Rep. 5, 10451 (2015).
  14. Koopmann, R., et al. In vivo protein crystallization opens new routes in structural biology. Nature Methods. 9 (3), 259-262 (2012).
  15. Gallat, F. -. X., et al. In vivo crystallography at X-ray free-electron lasers: the next generation of structural biology. Phil Trans R Soc B. 369 (1647), 20130497 (2014).
  16. Duszenko, M., et al. In vivo protein crystallization in combination with highly brilliant radiation sources offers novel opportunities for the structural analysis of post-translationally modified eukaryotic proteins. Acta Cryst. F. 71 (8), 929-937 (2015).
  17. Axford, D., Ji, X., Stuart, D. I., Sutton, G. In cellulo structure determination of a novel cypovirus polyhedrin. Acta Cryst D. 70 (5), 1435-1441 (2014).
  18. Sawaya, M. R., et al. Protein crystal structure obtained at 2.9 Å resolution from injecting bacterial cells into an X-ray free-electron laser beam. Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (35), 12769-12774 (2014).
  19. Tsutsui, H., et al. A Diffraction-Quality Protein Crystal Processed as an Autophagic Cargo. Mol Cell. 58 (1), 186-193 (2015).
  20. Boudes, M., Garriga, D., Fryga, A., Caradoc-Davies, T., Coulibaly, F. A pipeline for structure determination of in vivo-grown crystals using in cellulo diffraction. Acta Cryst D. 72, 576-585 (2016).
  21. Doye, J. P. K., Poon, W. C. K. Protein crystallization in vivo. Curr Opin Colloid Interface Sci. 11 (1), 40-46 (2006).
  22. Mori, H., et al. Expression of Bombyx mori cytoplasmic polyhedrosis virus polyhedrin in insect cells by using a baculovirus expression vector, and its assembly into polyhedra. J Gen Virol. 74, 99-102 (1993).
  23. Arevalo, M. T., Wong, T. M., Ross, T. M. Expression and Purification of Virus-like Particles for Vaccination. J Vis Exp. (112), (2016).
  24. Yates, L. A., Gilbert, R. J. C. Efficient Production and Purification of Recombinant Murine Kindlin-3 from Insect Cells for Biophysical Studies. J Vis Exp. (85), (2014).
  25. Berger, I., et al. The MultiBac Protein Complex Production Platform at the EMBL. J Vis Exp. (77), (2013).
  26. Margine, I., Palese, P., Krammer, F. Expression of Functional Recombinant Hemagglutinin and Neuraminidase Proteins from the Novel H7N9 Influenza Virus Using the Baculovirus Expression System. J Vis Exp. (81), (2013).
  27. Khurana, A., Kronenberg, M. A Method For Production of Recombinant mCD1d Protein in Insect Cells. J Vis Exp. (10), (2007).
  28. Ricardo, R., Phelan, K. Counting and Determining the Viability of Cultured Cells. J Vis Exp. (16), (2008).
  29. Baskaran, Y., et al. An in cellulo-derived structure of PAK4 in complex with its inhibitor Inka1. Nat Comm. 6, 1-11 (2015).
  30. Armour, B. L., et al. Multi-target Parallel Processing Approach for Gene-to-structure Determination of the Influenza Polymerase PB2 Subunit. J Vis Exp. (76), (2013).
  31. Otwinowski, Z., Minor, W. Processing of X-ray diffraction data collected in oscillation mode. Methods Enzymol. 276, 307-326 (1997).
  32. Battye, T. G. G., Kontogiannis, L., Johnson, O., Powell, H. R., Leslie, A. G. W. iMOSFLM: a new graphical interface for diffraction-image processing with MOSFLM. Acta Cryst D. 67, 271-281 (2011).
  33. Kabsch, W. XDS. Acta Cryst D. 66, 125-132 (2010).
  34. French, S., Wilson, K. On the treatment of negative intensity observations. Acta Cryst.A. 34, 517-525 (1978).
  35. Winn, M. D., et al. Overview of the CCP4 suite and current developments. Acta Cryst D. 67, 235-242 (2011).
  36. Foadi, J., et al. Clustering procedures for the optimal selection of data sets from multiple crystals in macromolecular crystallography. Acta Cryst D. 69 (8), 1617-1632 (2013).
  37. Rey, F. A. Virology: holed up in a natural crystal. Nature. 446 (7131), 35-37 (2007).
  38. Schönherr, R., et al. Real-time investigation of dynamic protein crystallization in living cells. Struct Dyn. 2 (4), 041712 (2015).
  39. Hasegawa, H., et al. In vivo crystallization of human IgG in the endoplasmic reticulum of engineered Chinese hamster ovary (CHO) cells. J Biol Chem. 286 (22), 19917-19931 (2011).
  40. Ishchenko, A., Cherezov, V., Liu, W. Preparation and Delivery of Protein Microcrystals in Lipidic Cubic Phase for Serial Femtosecond Crystallography. J Vis Exp. (115), e54463 (2016).
  41. Zander, U., et al. MeshAndCollect: an automated multi-crystal data-collection workflow for synchrotron macromolecular crystallography beamlines. Acta Cryst. D. 71, 2328-2343 (2015).
  42. Fan, G. Y., et al. In vivo calcineurin crystals formed using the baculovirus expression system. Micros Res Tech. 34 (1), 77-86 (1996).
  43. Nass, K. . Investigation of protein structure determination using X-ray free-electron lasers. , (2013).

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Cite This Article
Boudes, M., Garriga, D., Coulibaly, F. Microcrystallography of Protein Crystals and In Cellulo Diffraction. J. Vis. Exp. (125), e55793, doi:10.3791/55793 (2017).

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