Özet

Bağırsak mukozal bağışıklık tepkilerini analiz etmek için immünokompetan çip üzerinde bağırsak modeli

Published: May 24, 2024
doi:

Özet

Ayrıntılı protokolümüz, insan bağırsak mukozasını 3D yapılar ve çeşitli hücre tipleri ile simüle eden, mikrobiyal kolonizasyona yanıt olarak bağışıklık tepkilerinin ve hücresel fonksiyonların derinlemesine analizini sağlayan gelişmiş çip üzerinde bağırsak modelinin oluşturulmasını ve kullanımını özetlemektedir.

Abstract

Epitelyal 3D organotipik, villus benzeri ve kript benzeri yapıları yeniden oluşturan gelişmiş bir çip üzerinde bağırsak modeli geliştirilmiştir. İmmünkompetan model, İnsan Göbek Veni Endotel Hücreleri (HUVEC), Caco-2 bağırsak epitel hücreleri, dokuda yerleşik makrofajlar ve doku içinde kendi kendini organize eden, insan bağırsak mukozasının özelliklerini yansıtan dendritik hücreleri içerir. Bu platformun benzersiz bir yönü, dolaşımdaki insan birincil bağışıklık hücrelerini entegre etme ve fizyolojik alaka düzeyini artırma kapasitesidir. Model, bağırsak bağışıklık sisteminin bakteri ve mantar kolonizasyonu ve enfeksiyonuna tepkisini araştırmak için tasarlanmıştır. Genişletilmiş boşluk boyutu nedeniyle model, geçirgenlik deneyleri, sitokin salınımı ve bağışıklık hücresi infiltrasyonu gibi çeşitli fonksiyonel okumalar sunar ve epitel hücre tabakası tarafından oluşturulan 3D yapıların immünofloresan ölçümü ile uyumludur. Bu vesileyle, hücre farklılaşması ve işlevi hakkında kapsamlı bilgiler sağlar. Çip üzerinde bağırsak platformu, mikrofizyolojik perfüze edilmiş bir biyoçip platformu içinde canlı bir mikrobiyotanın vekilleri ile insan konak dokusu arasındaki karmaşık etkileşimleri aydınlatmadaki potansiyelini göstermiştir.

Introduction

Çip Üzerinde Organ (OoC) sistemleri, geleneksel 2B hücre kültürü ile hayvan modelleri arasındaki boşluğu doldurabilen, gelişmekte olan bir 3B hücre kültürü tekniğini temsil eder. OoC platformları tipik olarak, zarlar veya hidrojeller gibi çok çeşitli iskeleler üzerinde büyütülen dokuya özgü hücreleri içeren bir veya daha fazla bölmeden oluşur1. Modeller, bir veya daha fazla tanımlanmış organotipik fonksiyonu taklit etme yeteneğine sahiptir. Pompalar, hücresel atık ürünlerin uzaklaştırılması, gelişmiş hücresel farklılaşma için beslenme ve büyüme faktörleri sağlanması ve temel in vivo koşulların yeniden oluşturulması için hücre kültürü ortamının sürekli mikroakışkan perfüzyonunu sağlar. Bağışıklık hücrelerinin entegrasyonu ile OoC sistemleri, in vitro 2’de insan bağışıklık tepkisini taklit edebilir. Bugüne kadar çok çeşitli organlar ve fonksiyonel birimler sunulmuştur1. Bu sistemler, ilaç testi 5,7 ve enfeksiyon çalışmaları6,8 için kolaylaştırılabilen vaskülatür 3, akciğer4, karaciğer 2,5 ve bağırsak6 modellerini içerir.

Burada, endotel astarı ve dokuda yerleşik makrofajlarla birleştirilmiş villus benzeri ve kript benzeri yapıların organotipik bir 3D topografyasını oluşturan insan epitel hücrelerini entegre eden bir çip üzerinde insan bağırsağı modeli sunuyoruz. Model, mikroskobik bir slayt formatında mikroakışkan olarak perfüze edilmiş bir biyoçip içinde kültürlenir. Her biyoçip iki ayrı mikroakışkan boşluktan oluşur. Her boşluk, gözenekli bir polietilen tereftalat (PET) zarı ile bir üst ve alt odaya bölünür. Zarın kendisi aynı zamanda hücrelerin her iki tarafta büyümesi için iskele görevi görür. Zarın gözenekleri, hücre katmanları arasında hücresel karışmayı ve hücre göçünü mümkün kılar. Her odaya iki dişi luer kilit boyutunda bağlantı noktası ile erişilebilir. İsteğe bağlı olarak, ek bir mini-luer kilit boyutlu bağlantı noktası, üst veya alt bölmeye erişim sağlayabilir (Şekil 1).

OoC platformu, tek bir deneyden elde edilebilecek bir dizi okuma sunar. Çip üzerinde bağırsak, hücre işaretleyici ekspresyonu, metabolizasyon oranları, bağışıklık tepkisi, mikrobiyal kolonizasyon ve enfeksiyonve bariyer fonksiyonunu değerlendirmek için perfüze edilmiş 3D hücre kültürü, atık su analizi ve floresan mikroskobunu birleştirmeye yönelik olarak uyarlanmıştır 3,6,8. Model, dokuda yerleşik bağışıklık hücrelerini ve canlı mikroorganizmaların konakçı doku ile doğrudan temasını içerir, bu da yayınlanan diğer modellere kıyasla bir avantajdır9. Ayrıca, epitel hücreleri, canlı bir mikrobiyota ile kolonizasyon için fizyolojik olarak ilgili bir arayüz sağlayan üç boyutlu yapılar halinde kendi kendini organize eder6.

Protocol

Bu protokol, birincil insan monositlerini izole etmek için sağlıklı donörlerden biyoçip başına ~ 20 mL taze kana erişim gerektirir. Tüm bağışçılar, Jena Üniversite Hastanesi etik kurulu tarafından onaylanan bu çalışmaya katılmak için yazılı, bilgilendirilmiş onam verdiler (izin numarası 2018-1052-BO). Malzemelerle ilgili ayrıntılar için Malzeme Tablosu’na bakın. Tüm çözeltilerin ve ortamların bileşimi hakkında ayrıntılar için Tablo 1’e bakın. <…

Representative Results

Bu temsili sonuçlar, çip üzerinde bağırsak modelinin farklı doku katmanlarını gösterir. Protokol bölüm 11’de tarif edildiği gibi immünofloresan lekelidirler. Görüntüler epifloresan veya konfokal floresan mikroskobu ile z-yığınları olarak çekildi ve ortogonal bir projeksiyona işlendi. Mikroskobik kurulum ve yazılım hakkında ayrıntılar için Malzeme Tablosuna bakın. Şekil 5, HUVEC’ler ve makrofajlardan oluşan bariyer oluşturan bir endotelyal tek …

Discussion

Sunulan protokol, çip üzerinde immünokompetan bir bağırsak modeli oluşturmak için gerekli adımları detaylandırır. İmmünofloresan mikroskobu, sitokin ve metabolit analizi, akış sitometrisi, protein ve genetik analiz ve geçirgenlik ölçümü gibi spesifik teknikleri ve olası okuma yöntemlerini tanımladık.

Açıklanan model,daha önce tarif edildiği gibi, mukus salgılayan, emici, enteroendokrin ve Paneth hücre benzeri popülasyonların y?…

Açıklamalar

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Çalışma, İşbirlikçi Araştırma Merkezi PolyTarget 1278 (proje numarası 316213987) tarafından V.D.W. ve A.S.M. A.F. ve A.S.M. ayrıca Almanya’nın Mükemmeliyet Stratejisi – EXC 2051 – Project-ID 690 390713860. kapsamında “Balance of the Microverse” Mükemmeliyet Kümesi tarafından sağlanan mali desteği de kabul eder. Astrid Tannert ve Jena Biyofotonik ve Görüntüleme Laboratuvarı’na (JBIL) konfokal lazer tarama mikroskobu ZEISS LSM980’e erişim sağladıkları için teşekkür ederiz. Şekil 1C ve Şekil 2 Biorender.com ile oluşturulmuştur.

Materials

96-well plate black, clear bottom Thermo Fisher 10000631 Consumables
Acetic acid Roth 3738.4 Chemicals
Alexa Fluor 488 AffiniPure, donkey, anti-mouse IgG (H+L) Jackson Immuno Research 715-545-150 Secondary Antibody Vascular Staining and Epithelial Staining
Alexa Fluor 647 AffiniPure, donkey, anti-rabbit IgG (H+L) Jackson Immuno Research 711-605-152 Secondary Antibody Epithelial Staining
Alexa Fluor 647, donkey, anti-rabbit IgG (H+L) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen A31573 Secondary Antibody Vascular Staining
Axiocam ERc5s camera Zeiss 426540-9901-000 Technical equipment
Basal Medium MV, phenol red-free Promocell C-22225 Cell culture consumables
Biochip Dynamic 42 BC002 Microfluidic consumables
BSA fraction V Gibco 15260-037 Cell culture consumables
C2BBe1 (clone of Caco-2) ATCC CRL-2102 Epithelial Cell Source
Chloroform Sigma C2432 Chemicals
CO2 Incubator Heracell 150i Technical equipment
Collagen IV from human placenta Sigma-Aldrich C5533 Cell culture consumables
Coverslips (24 x 40 mm; #1.5) Menzel-Gläser 15747592 Consumables
Cy3 AffiniPure, donkey, anti-goat IgG (H+L) Jackson Immuno Research 705-165-147 Secondary Antibody Vascular Staining
Cy3 AffiniPure, donkey, anti-rat IgG (H+L) Jackson Immuno Research 712-165-150 Secondary Antibody Epithelial Staining
DAPI (4',6-Diamidin-2-phenylindol, Dilactate) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen D3571 Vascular and Epithelial Staining
Descosept PUR Dr.Schuhmacher 00-323-100 Cell culture consumables
DMEM high glucose Gibco 41965-062 Cell culture consumables
DMEM high glucose w/o phenol red Gibco 31053028 Cell culture consumables
DPBS (-/-) Gibco 14190-169 Cell culture consumables
DPBS (+/+) Gibco 14040-133 Cell culture consumables
EDTA solution Invitrogen 15575-038 Cell culture consumables
Endothelial Cell Growth Medium Promocell C-22020 Cell culture consumables
Endothelial Cell Growth Medium supplement mix Promocell C-39225 Cell culture consumables
Ethanol 96%, undenatured Nordbrand-Nordhausen 410 Chemicals
Fetal bovine Serum invitrogen 10270106 Cell culture consumables
Fluorescein isothiocyanate (FITC)-dextran (3-5 kDa) Sigma Aldrich FD4-100MG Chemicals
Fluorescent Mounting Medium Dako S3023 Chemicals
Gentamycin (10mg/mL) Sigma Aldrich G1272 Cell culture consumables
GlutaMAX Supplement (100x) Gibco 35050061 Cell culture consumables
Histopaque Sigma-Aldrich 10771 Cell culture consumables
Hoechst (bisBenzimid) H33342 Sigma-Aldrich 14533 Epithelial Staining
Holotransferrin (5mg/mL) Transferrin, Holo, Human Plasma Millipore 616397 Cell culture consumables
Human recombinant GM-CSF Peprotech 300-30 Cell culture consumables
Human recombinant M-CSF Peprotech 300-25 Cell culture consumables
Illumination device Zeiss HXP 120 C Fluorescence Microscope Setup
Laser Scanning Microscope Zeiss CLSM980 Fluorescence Microscope Setup
Lidocain hydrochloride Sigma-Aldrich L5647 Cell culture consumables
Lipopolysaccharide (LPS) Sigma L2630 Cell culture consumables
Loftex Wipes Loftex 1250115 Consumables
Low attachment tubes (PS, 5 mL) Falcon 352052 Consumables
Luer adapter for the top cap (M) Mo Bi Tec M3003 Microfluidic consumables
Male mini luer plugs, row of four,PP, opaque Microfluidic chipshop 09-0556-0336-09 Microfluidic consumables
MEM Non-Essential Amino Acids Solution Gibco 11140 Cell culture consumables
Methanol Roth 8388.2 Chemicals
Microscope Zeiss Axio Observer 5 Fluorescence Microscope Setup
Microscope slides Menzel MZ-0002 Consumables
Monoclonal, mouse, anti-human CD68 Antibody (KP1) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen 14-0688-82 Primary Antibody Vascular Staining
Monoclonal, rat, anti-human E-Cadherin antibody (DECMA-1) Sigma-Aldrich, Millipore MABT26 Primary Antibody Epithelial Staining
Multiskan Go plate reader Thermo Fisher 51119300 Technical equipment
Normal donkey serum Biozol LIN-END9010-10 Chemicals
Optical Sectioning Zeiss ApoTome Fluorescence Microscope Setup
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) Gibco 15140-122 Cell culture consumables
Plugs Cole Parmer GZ-45555-56 Microfluidic consumables
Polyclonal, goat, anti-human VE-Cadherin Antibody R&D Systems AF938 Primary Antibody Vascular Staining
Polyclonal, rabbit, anti-human Von Willebrand Factor Antibody Dako A0082 Primary Antibody Vascular Staining
Polyclonal, rabbit, anti-human ZO-1 antibody Thermo Fisher Scientific, Invitrogen 61-7300 Primary Antibody Epithelial Staining
Power Supply Microscope Zeiss Eplax Vp232 Fluorescence Microscope Setup
Primovert microscope Zeiss 415510-1101-000 Technical equipment
Reglo ICC peristaltic pump Ismatec ISM4412 Technical equipment
SAHA (Vorinostat) Sigma Aldrich SML0061-25MG Chemicals
Saponin Fluka 47036 Chemicals
S-Monovette, 7.5 mL Z-Gel Sarstedt 01.1602 Consumables
S-Monovette, 9.0 mL K3E Sarstedt 02.1066.001 Consumables
Sodium Pyruvate Gibco 11360-088 Cell culture consumables
Tank 4.5 mL ChipShop 10000079 Microfluidic consumables
Trypane blue stain 0.4% Invitrogen T10282 Cell culture consumables
Trypsin Gibco 11538876 Cell culture consumables
Tubing Dynamic 42 ST001 Microfluidic consumables
Tweezers (Präzisionspinzette DUMONT abgewinkelt Inox08, 5/45, 0,06 mm) Roth K343.1 Consumables
Wheat Germ Agglutinin (WGA) Thermo Fisher Scientific, Invitrogen W32464 Epithelial Staining
X-VIVO 15 Lonza BE02-060F Cell culture consumables, Hematopoietic cell medium
Zellkultur Multiwell Platten, 24 Well, sterile Greiner Bio-One 662 160 Consumables
Zellkultur Multiwell Platten, 6 Well, sterile Greiner Bio-One 657 160 Consumables
Zen Blue Software Zeiss Version 3.7 Microscopy Software

Referanslar

  1. Alonso-Roman, R., et al. Organ-on-chip models for infectious disease research. Nat Microbiol. 9 (4), 891-904 (2024).
  2. Fahrner, R., Groger, M., Settmacher, U., Mosig, A. S. Functional integration of natural killer cells in a microfluidically perfused liver on-a-chip model. BMC Res Notes. 16 (1), 285 (2023).
  3. Raasch, M., et al. Microfluidically supported biochip design for culture of endothelial cell layers with improved perfusion conditions. Biofabrication. 7 (1), 015013 (2015).
  4. Deinhardt-Emmer, S., et al. Co-infection with Staphylococcus aureus after primary influenza virus infection leads to damage of the endothelium in a human alveolus-on-a-chip model. Biofabrication. 12 (2), 025012 (2020).
  5. Kaden, T., et al. Generation & characterization of expandable human liver sinusoidal endothelial cells and their application to assess hepatotoxicity in an advanced in vitro liver model. Toxicology. 483, 153374 (2023).
  6. Maurer, M., et al. A three-dimensional immunocompetent intestine-on-chip model as in vitro platform for functional and microbial interaction studies. Biomaterials. 220, 119396 (2019).
  7. Hoang, T. N. M., et al. Invasive aspergillosis-on-chip: A quantitative treatment study of human aspergillus fumigatus infection. Biomaterials. 283, 121420 (2022).
  8. Kaden, T., et al. Modeling of intravenous caspofungin administration using an intestine-on-chip reveals altered Candida albicans microcolonies and pathogenicity. Biomaterials. 307, 122525 (2024).
  9. Shah, P., et al. A microfluidics-based in vitro model of the gastrointestinal human-microbe interface. Nat Commun. 7, 11535 (2016).
  10. Jaffe, E. A., Nachman, R. L., Becker, C. G., Minick, C. R. Culture of human endothelial cells derived from umbilical veins. Identification by morphologic and immunologic criteria. J Clin Invest. 52 (11), 2745-2756 (1973).
  11. Mosig, S., et al. Different functions of monocyte subsets in familial hypercholesterolemia: Potential function of cd14+ cd16+ monocytes in detoxification of oxidized ldl. FASEB J. 23 (3), 866-874 (2009).
  12. Peterson, M., Mooseker, M. Characterization of the enterocyte-like brush border cytoskeieton of the c2bbe clones of the human intestinal cell line, caco-2. J Cell Sci. 102, 581-600 (1992).
  13. Shin, W., Hinojosa, C. D., Ingber, D. E., Kim, H. J. Human intestinal morphogenesis controlled by transepithelial morphogen gradient and flow-dependent physical cues in a microengineered gut-on-a-chip. iScience. 15, 391-406 (2019).
  14. Kim, H. J., Ingber, D. E. Gut-on-a-chip microenvironment induces human intestinal cells to undergo villus differentiation. Integr Biol (Camb). 5 (9), 1130-1140 (2013).
  15. Kim, H. J., Huh, D., Hamilton, G., Ingber, D. E. Human gut-on-a-chip inhabited by microbial flora that experiences intestinal peristalsis-like motions and flow. Lab Chip. 12 (12), 2165-2174 (2012).
  16. Karra, N., Fernandes, J., James, J., Swindle, E. J., Morgan, H. The effect of membrane properties on cell growth in an ‘airway barrier on a chip’. Organs-on-a-Chip. 5, 10025 (2023).

Play Video

Bu Makaleden Alıntı Yapın
Feile, A., Wegner, V. D., Raasch, M., Mosig, A. S. Immunocompetent Intestine-on-Chip Model for Analyzing Gut Mucosal Immune Responses. J. Vis. Exp. (207), e66603, doi:10.3791/66603 (2024).

View Video