Summary

BS3 Chemical Crosslinking Assay: Évaluation de l’effet du stress chronique sur la surface cellulaire Présentation du récepteur GABAA dans le cerveau des rongeurs

Published: May 26, 2023
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Summary

Le test de réticulation chimique BS3 révèle une réduction de l’expression du récepteur GABAA de surface cellulaire dans le cerveau de souris dans des conditions de stress psychosocial chronique.

Abstract

L’anxiété est un état d’émotion qui affecte de manière variable les comportements des animaux, y compris les fonctions cognitives. Des signes comportementaux d’anxiété sont observés dans tout le règne animal et peuvent être reconnus comme des réponses adaptatives ou inadaptées à un large éventail de modalités de stress. Les rongeurs fournissent un modèle expérimental éprouvé pour les études translationnelles portant sur les mécanismes intégratifs de l’anxiété aux niveaux moléculaire, cellulaire et des circuits. En particulier, le paradigme du stress psychosocial chronique suscite des réponses inadaptées imitant des phénotypes comportementaux de type anxiété / dépression qui sont analogues entre les humains et les rongeurs. Alors que des études antérieures montrent des effets significatifs du stress chronique sur le contenu des neurotransmetteurs dans le cerveau, l’effet du stress sur les niveaux de récepteurs des neurotransmetteurs est sous-étudié. Dans cet article, nous présentons une méthode expérimentale pour quantifier les niveaux de surface neuronale des récepteurs des neurotransmetteurs chez les souris soumises à un stress chronique, en nous concentrant particulièrement sur les récepteurs de l’acide gamma-aminobutyrique (GABA), qui sont impliqués dans la régulation des émotions et de la cognition. En utilisant le réticulant chimique irréversible imperméable à la membrane, le sous-érate de bissulfosuccinimidyle (BS3), nous montrons que le stress chronique régule significativement à la baisse la disponibilité de surface des récepteurs GABAA dans le cortex préfrontal. Les niveaux de surface neuronale des récepteurs GABAA sont le processus limitant le taux de neurotransmission GABA et pourraient donc être utilisés comme marqueur moléculaire ou proxy du degré de phénotypes anxieux / dépressifs dans des modèles animaux expérimentaux. Cette approche de réticulation est applicable à une variété de systèmes récepteurs pour les neurotransmetteurs ou les neuromodulateurs exprimés dans n’importe quelle région du cerveau et devrait contribuer à une meilleure compréhension des mécanismes sous-jacents à l’émotion et à la cognition.

Introduction

Les récepteurs des neurotransmetteurs sont localisés soit à la surface de la membrane plasmique neuronale, soit intracellulaire sur les endomembranes (p. ex. l’endosome, le réticulum endoplasmique [ER] ou l’appareil trans-Golgi) et font la navette dynamique entre ces deux compartiments en fonction des états physiologiques intrinsèques des neurones ou en réponse aux activités extrinsèques du réseau neuronal 1,2. Étant donné que les neurotransmetteurs nouvellement sécrétés suscitent leurs fonctions physiologiques principalement par le biais du pool localisé de récepteurs localisés en surface, les niveaux de récepteurs de surface pour un neurotransmetteur donné sont l’un des déterminants critiques de sa capacité de signalisation dans le circuit neuronal3.

Plusieurs méthodes sont disponibles pour surveiller les niveaux de récepteurs de surface dans les neurones en culture, y compris le test de biotinylationde surface 4, le test d’immunofluorescence avec un anticorps spécifique dans des conditions non perméabilisées5, ou l’utilisation d’un transgène récepteur génétiquement fusionné avec un indicateur optique fluorescent sensible au pH (par exemple, pHluorin)6. En revanche, ces approches sont limitées ou peu pratiques lors de l’évaluation des niveaux de récepteurs de surface in vivo. Par exemple, la procédure de biotinylation de surface peut ne pas être pratique pour traiter de grandes quantités et un grand nombre d’échantillons de tissus cérébraux in vivo en raison de son prix relativement élevé et des étapes ultérieures nécessaires pour purifier les protéines biotinylées sur des billes conjuguées à l’avidine. Pour les neurones intégrés dans une architecture cérébrale tridimensionnelle, la faible accessibilité des anticorps ou les difficultés de quantification au microscope peuvent constituer une limitation importante pour l’évaluation des niveaux de récepteurs de surface in vivo. Pour visualiser la distribution des récepteurs des neurotransmetteurs dans les cerveaux intacts, des méthodes non invasives, telles que la tomographie par émission de positrons, pourraient être utilisées pour mesurer l’occupation des récepteurs et estimer les niveaux de récepteursde surface 7. Cependant, cette approche repose essentiellement sur la disponibilité de ligands radio spécifiques, d’équipements coûteux et d’une expertise spéciale, ce qui la rend moins accessible pour une utilisation régulière par la plupart des chercheurs.

Ici, nous décrivons une méthode simple et polyvalente pour mesurer les niveaux de récepteurs de surface dans des cerveaux d’animaux expérimentaux ex vivo à l’aide d’un agent de réticulation chimique soluble dans l’eau et imperméable à la membrane, le bis(sulfosuccinimidyl)suberate (BS3)8,9. BS3 cible les amines primaires dans la chaîne latérale des résidus de lysine et peut réticuler de manière covalente les protéines à proximité les unes des autres. Lorsque les tranches de cerveau sont fraîchement préparées à partir d’une région d’intérêt et incubées dans un tampon contenant BS3, les récepteurs de surface cellulaire sont réticulés avec des protéines voisines et, par conséquent, se transforment en espèces de poids moléculaire plus élevé, tandis que les récepteurs associés à l’endomembrane intracellulaire restent inchangés. Par conséquent, les pools de récepteurs de surface et intracellulaires peuvent être séparés par électrophorèse sur gel de dodécylsulfate-polyacrylamide de sodium (SDS-PAGE) et quantifiés par transfert Western à l’aide d’anticorps spécifiques au récepteur à étudier.

Le stress chronique léger imprévisible (UCMS) est un paradigme expérimental bien établi pour induire un stress psychosocial chronique chez les rongeurs10. UCMS provoque des phénotypes comportementaux anxieux / dépressifs et des déficits cognitifs via la modulation d’un éventail de systèmes de neurotransmetteurs, y compris le GABA et ses récepteurs10,11. En particulier, le récepteur GABA A contenant la sous-unité α5 (α5-GABAAR) est impliqué dans la régulation de la mémoire et des fonctions cognitives12,13, suggérant l’implication possible de fonctions altérées de cette sous-unité dans les déficits cognitifs induits par UCMS. Dans ce protocole, nous avons utilisé le test de réticulation BS3 pour quantifier les niveaux d’α5-GABAAR exprimé en surface dans le cortex préfrontal des souris exposées à l’UCMS par rapport aux souris témoins non stressées.

Protocol

Tous les travaux sur les animaux prévus dans ce protocole ont été effectués conformément à la Loi sur les animaux destinés à la recherche de l’Ontario (L.R.O. 1990, chapitre A.22) et au Conseil canadien de protection des animaux (CCPA) et ont été approuvés par le Comité de protection des animaux de l’établissement. 1. Préparation des animaux Déterminez le nombre d’animaux à utiliser dans les expériences et divisez-les en groupes ou cohortes exp…

Representative Results

Pour démontrer la faisabilité du test de réticulation BS3 pour évaluer les niveaux d’α5-GABA A R de surface dans le PFC de souris, nous avons analysé 10 μg chacun des échantillons de protéines réticulées et non réticulées BS3 sur SDS-PAGE et analysé les protéines par transfert Western à l’aide d’un anticorps anti-α5-GABAAR (polyclonal de lapin) (Figure 7). Les échantillons de protéines non réticulées ont donné la quantité totale d’α5-GABA…

Discussion

Bien que l’impact du stress psychosocial chronique sur les comportements (c.-à-d. l’émotivité et les déficits cognitifs) et les changements moléculaires (c.-à-d. l’expression réduite des gènes GABAergiques et les déficits qui l’accompagnent dans la neurotransmission GABAergique) soient bien documentés10, les mécanismes sous-jacents à ces déficits doivent être étudiés plus avant. En particulier, compte tenu de l’étude récente montrant que le stress chronique affecte de m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs remercient le personnel de l’animalerie de CAMH d’avoir pris soin des animaux pendant toute la durée de l’étude. Ces travaux ont été financés par les Instituts de recherche en santé du Canada (IRSC Project Grant #470458 à T.T.), le Fonds de découverte du CAMH (à T.P.), la National Alliance for Research on Schizophrenia and Depression (NARSAD award #25637 à E.S.) et le Campbell Family Mental Health Research Institute (à E.S.). E.S. est le fondateur de Damona Pharmaceuticals, une société biopharmaceutique dédiée à l’introduction de nouveaux composés GABAergiques à la clinique.

Materials

0.5 M EDTA, pH 8.0 Invitrogen 15575020
1 M HEPES Gibco 15630080
10x TBS Bio-Rad 1706435
2.5 M (45%, w/v) Glucose Sigma G8769
2-mercaptoethanol Sigma M3148
4x SDS sample buffer (Laemmli) Bio-Rad 1610747
Bis(sulfosuccinimidyl)suberate (BS3) Pierce A39266 No-Weigh Format; 10 x 2 mg
Brain matrix Ted Pella 15003 For mouse, 30 g adult, coronal, 1 mm
Calcium chloride (CaCl2) Sigma C4901
Curved probe Fine Science Tools 10088-15 Gross Anatomy Probe; angled 45
Deionized water milli-Q EQ 7000 Ultrapure water [resistivity 18.2 MΩ·cm @ 25 °C; total organic carbon (TOC) ≤ 5 ppb] 
Dithiothreitol (DTT) Sigma 10197777001
Filter paper (3MM) Whatman 3030-917
Forceps (large) Fine Science Tools 11152-10 Extra Fine Graefe Forceps
Forceps (small) Fine Science Tools 11251-10 Dumont #5 Forceps
GABA-A R alpha 5 antibody Invitrogen PA5-31163 Polyclonal Rabbit IgG; detect erroneous signal upon chemical crosslinking
GABA-A R alpha 5 C-terminus antibody R&D Systems PPS027 Polyclonal Rabbit IgG; cross-reacts with mouse and rat
Glycine Sigma W328707
Horseradish peroxidase-conjugated goat anti-rabbit IgG (H+L) Bio-Rad 1721019
Magnesium chloride (MgCl2·6H2O) Sigma M2670
Nonidet-P40, substitute (NP-40) SantaCruz 68412-54-4
Potassium chloride (KCl) Sigma P9541
Protease inhibitor cocktail Sigma P8340
PVDF membrane Bio-Rad 1620177
Scissors (large) Fine Science Tools 14007-14 Surgical Scissors – Serrated
Scissors (small) Fine Science Tools 14060-09 Fine Scissors – Sharp
Sodium chloride (NaCl) Sigma S9888
Sonicator (Qsonica Sonicator Q55)  Qsonica 15338284
Table-top refregerated centrifuge Eppendorf 5425R
Tissue punch (ID 1 mm) Ted Pella 15110-10 Miltex Biopsy Punch with Plunger, ID 1.0 mm, OD 1.27 mm
Trans-Blot Turbo 5x Transfer buffer Bio-Rad 10026938
Tube rotator (LabRoller) Labnet H5000

References

  1. Groc, L., Choquet, D. Linking glutamate receptor movements and synapse function. Science. 368 (6496), (2020).
  2. Diering, G. H., Huganir, R. L. The AMPA receptor code of synaptic plasticity. Neuron. 100 (2), 314-329 (2018).
  3. Tomoda, T., Hikida, T., Sakurai, T. Role of DISC1 in neuronal trafficking and its implication in neuropsychiatric manifestation and neurotherapeutics. Neurotherapeutics. 14 (3), 623-629 (2017).
  4. Sumitomo, A., et al. Ulk2 controls cortical excitatory-inhibitory balance via autophagic regulation of p62 and GABAA receptor trafficking in pyramidal neurons. Human Molecular Genetics. 27 (18), 3165-3176 (2018).
  5. Brady, M. L., Jacob, T. C. Synaptic localization of α5 GABA (A) receptors via gephyrin interaction regulates dendritic outgrowth and spine maturation. Developmental Neurobiology. 75 (11), 1241-1251 (2015).
  6. Jacob, T. C., et al. Gephyrin regulates the cell surface dynamics of synaptic GABAA receptors. The Journal of Neuroscience. 25 (45), 10469-10478 (2005).
  7. Takamura, Y., Kakuta, H. In vivo receptor visualization and evaluation of receptor occupancy with positron emission tomography. Journal of Medicinal Chemistry. 64 (9), 5226-5251 (2021).
  8. Archibald, K., Perry, M. J., Molnár, E., Henley, J. M. Surface expression and metabolic half-life of AMPA receptors in cultured rat cerebellar granule cells. Neuropharmacology. 37 (10-11), 1345-1353 (1998).
  9. Boudreau, A. C., et al. A protein crosslinking assay for measuring cell surface expression of glutamate receptor subunits in the rodent brain after in vivo treatments. Current Protocols in Neuroscience. , 1-19 (2012).
  10. Fee, C., Banasr, M., Sibille, E. Somatostatin-positive gamma-aminobutyric acid interneuron deficits in depression: Cortical microcircuit and therapeutic perspectives. Biological Psychiatry. 82 (8), 549-559 (2017).
  11. Bernardo, A., et al. Symptomatic and neurotrophic effects of GABAA receptor positive allosteric modulation in a mouse model of chronic stress. Neuropsychopharmacology. 47 (9), 1608-1619 (2022).
  12. Prévot, T., Sibille, E. Altered GABA-mediated information processing and cognitive dysfunctions in depression and other brain disorders. Molecular Psychiatry. 26 (1), 151-167 (2021).
  13. Martin, L. J., et al. Alpha5GABAA receptor activity sets the threshold for long-term potentiation and constrains hippocampus-dependent memory. The Journal of Neuroscience. 30 (15), 5269-5282 (2010).
  14. Nollet, M. Models of depression: Unpredictable chronic mild stress in mice. Current Protocols. 1 (8), e208 (2021).
  15. Tomoda, T., Sumitomo, A., Newton, D., Sibille, E. Molecular origin of somatostatin-positive neuron vulnerability. Molecular Psychiatry. 27 (4), 2304-2314 (2022).
  16. Guilloux, J. P., et al. Molecular evidence for BDNF- and GABA-related dysfunctions in the amygdala of female subjects with major depression. Molecular Psychiatry. 17 (11), 1130-1142 (2012).
  17. Lin, L. C., Sibille, E. Somatostatin, neuronal vulnerability and behavioral emotionality. Molecular Psychiatry. 20 (3), 377-387 (2015).
  18. Fritschy, J. M., Mohler, H. GABAA-receptor heterogeneity in the adult rat brain: differential regional and cellular distribution of seven major subunits. The Journal of Comparative Neurology. 359 (1), 154-194 (1995).
  19. Rubio, F. J., Li, X., Liu, Q. R., Cimbro, R., Hope, B. T. Fluorescence activated cell sorting (FACS) and gene expression analysis of Fos-expressing neurons from fresh and frozen rat brain tissue. Journal of Visualized Experiments. (114), e54358 (2016).
  20. Boudreau, A. C., Wolf, M. E. Behavioral sensitization to cocaine is associated with increased AMPA receptor surface expression in the nucleus accumbens. The Journal of Neuroscience. 25 (40), 9144-9151 (2005).
  21. Conrad, K. L., et al. Formation of accumbens GluR2-lacking AMPA receptors mediates incubation of cocaine craving. Nature. 454 (7200), 118-121 (2008).
  22. Tomoda, T., et al. BDNF controls GABAAR trafficking and related cognitive processes via autophagic regulation of p62. Neuropsychopharmacology. 47 (2), 553-563 (2022).
  23. Hernandez-Rabaza, V., et al. Sildenafil reduces neuroinflammation and restores spatial learning in rats with hepatic encephalopathy: Underlying mechanisms. Journal of Neuroinflammation. 12, 195 (2015).

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Sumitomo, A., Zhou, R., Prevot, T., Sibille, E., Tomoda, T. BS3 Chemical Crosslinking Assay: Evaluating the Effect of Chronic Stress on Cell Surface GABAA Receptor Presentation in the Rodent Brain. J. Vis. Exp. (195), e65063, doi:10.3791/65063 (2023).

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