Summary

Konstruera cykliska peptider med hjälp av ett on-tether sulfoniumcenter

Published: September 28, 2022
doi:

Summary

Detta protokoll presenterar syntesen av cykliska peptider via bisalkylering mellan cystein och metionin och den facila tiolen-yne-reaktionen som utlöses av propargylsulfoniumcentret.

Abstract

Under de senaste åren har cykliska peptider väckt ökad uppmärksamhet inom läkemedelsupptäckt på grund av deras utmärkta biologiska aktiviteter, och som en följd av detta används de nu kliniskt. Det är därför viktigt att söka effektiva strategier för att syntetisera cykliska peptider för att främja deras tillämpning inom läkemedelsupptäckt. Detta dokument rapporterar ett detaljerat protokoll för effektiv syntes av cykliska peptider med användning av on-harts eller intramolekylär (intermolekylär) bisalkylering. Med hjälp av detta protokoll syntetiserades linjära peptider genom att dra nytta av fastfaspeptidsyntes med cystein (Cys) och metionin (Met) kopplade samtidigt på hartset. Vidare syntetiserades cykliska peptider via bisalkylering mellan Met och Cys med hjälp av en avstämbar tjuder och ett on-tether sulfoniumcenter. Hela den syntetiska vägen kan delas in i tre huvudprocesser: avskyddet av Cys på hartset, kopplingen av länkaren och cykliseringen mellan Cys och Met i en trifluorättiksyra (TFA) klyvningslösning. Dessutom, inspirerad av sulfoniumcentrets reaktivitet, fästes en propargylgrupp till Met för att utlösa tiolon-yne-tillsats och bilda en cyklisk peptid. Därefter torkades de råa peptiderna och löstes i acetonitril, separerades och renades sedan genom högpresterande vätskekromatografi (HPLC). Molekylvikten för den cykliska peptiden bekräftades genom vätskekromatografi-masspektrometri (LC-MS), och stabiliteten hos den cykliska peptidkombinationen med reduktanten bekräftades ytterligare med användning av HPLC. Dessutom analyserades det kemiska skiftet i den cykliska peptiden med 1 H kärnmagnetisk resonans (1H NMR) spektra. Sammantaget syftade detta protokoll till att upprätta en effektiv strategi för att syntetisera cykliska peptider.

Introduction

Protein-proteininteraktioner (PPI)1 spelar en avgörande roll i läkemedelsforskning och utveckling. Att konstruera stabiliserade peptider med en fast konformation med kemiska medel är en av de viktigaste metoderna för att utveckla mimetiska motiv av PPI2. Hittills har flera cykliska peptider som riktar sig mot PPI utvecklats för klinisk användning3. De flesta peptider är begränsade till en α-helix-konformation för att minska konformationsentropin och förbättra den metaboliska stabiliteten, målbindande affinitet och cellpermeabilitet 4,5. Under de senaste 2 decennierna har sidokedjorna av Cys 6,7, lysin8,9, tryptofan 10, arginin 11 och Met12,13 satts in i onaturliga aminosyror för att fixera peptiden i en cyklisk konformation. Sådana cykliska peptider kan rikta in sig på ett unikt kemiskt utrymme eller speciella platser och därigenom utlösa en kovalent reaktion för att bilda protein-peptidkovalent bindning14,15,16,17. I en ny rapport från Yu et al., en kloracetamid förankrades på domänen för peptidligander, vilket säkerställde en kovalent konjugeringsreaktion med utmärkt proteinspecificitet18. Dessutom införlivades elektrofila stridsspetsar, såsom akrylamid och arylsulfonylfluorid (ArSO2F), ytterligare i peptider av Walensky et al.19 för att bilda stabiliserade peptidkovalenta hämmare och förbättra antitumöreffekten av peptidhämmare. Därför är det mycket viktigt att införa ytterligare en funktionell grupp för att kovalent modifiera proteinpeptidligander20. Dessa grupper reagerar inte bara med proteiner på sidokedjan utan stabiliserar också peptidens sekundära struktur21. Appliceringen av kovalent modifierade proteiner inducerade av peptidligander är emellertid begränsad på grund av den komplicerade syntetiska vägen och den ospecifika bindningen av de kemiska grupperna22,23. Effektiva strategier för syntes av cykliska peptider är därför brådskande.

Inspirerad av de mångsidiga strategierna för cykliska peptider 2,24,25,26, försöker detta protokoll utveckla en enkel och effektiv metod för att stabilisera peptider. Dessutom noterade vi att sidokedjegruppen i en stabil peptid kunde reagera kovalent med ett målprotein när det var rumsligt nära peptidliganderna. Bristen på kemiskt modifierad Met fylldes av Deming-gruppen 2013 genom att utveckla en ny metod för att producera selektivt modifierad peptidmetionin27. Baserat på denna bakgrund fokuserade Shi et al. på utvecklingen av ringförslutningen av sidokedjor för att bilda ett sulfoniumsaltcentrum. När peptidliganden kombineras med målproteinet reagerar sulfoniumsaltgruppen kovalent med det rumsligt nära Cys-proteinet. har under de senaste åren utformat en ny metod för att stabilisera cyklisk peptid28. Sulfoniumsaltet på den cykliska peptiden reducerades av ett reduktionsmedel med en sulfhydrylgrupp som reversibelt reducerades till Met. Reaktionen hade emellertid låg effektivitet, vilket var skadligt för efterföljande biologiska applikationsstudier. I den aktuella studien designades en Met-Cys- och propargylbromid-Cys-ringstängningsreaktion, med ett enda sulfoniumsalt kvar på sidokedjan av den cykliska peptiden. Sulfoniumsaltet fungerade som en ny stridsspets som reagerade kovalent med proteinet Cys under rumslig närhet. Kortfattat cyklades en Cys- och Met-muterad peptid genom intramolekylär alkylering, vilket resulterade i generering av ett on-tether sulfoniumcenter. I denna process var bildandet av en sidokedjebro avgörande för cykliska peptider. Sammantaget beskriver detta protokoll en detaljerad sulfoniumbaserad peptidcyklisering som uppnås med hjälp av enkla reaktionsbetingelser och operationer. Syftet är att utveckla en potentiell metod för ytterligare breda biologiska tillämpningar.

Protocol

1. Förberedelse av utrustning VARNING: Morfolin, N,N-dimetylformamid (DMF), diklormetan (DCM), N,N-diisopropyletylamin (DIPEA), TFA, morfolin, piperidin, dietyleter och metanol är giftiga, flyktiga och frätande. Dessa reagenser kan skada människokroppen genom inandning, intag eller hudkontakt. För alla kemiska experiment, använd skyddsutrustning, inklusive engångshandskar, experimentella rockar och skyddsglasögon. Konstruera alla peptidsubstrat på rink-amid …

Representative Results

Alla linjära peptider syntetiserades på Rink-amid MBHA-harts genom standard manuell Fmoc fastfassyntes. En modellcyklisk hexapeptid (Ac (cyklo-I)-WMAAAC-NH2) konstruerades enligt beskrivningen i figur 5A. I synnerhet genererades ett nytt on-tether kiralt centrum genom Met-alkylering, med de två epimererna av cyklisk peptid (Ia, Ib) bekräftad av omvänd fas HPLC. Vidare bestämdes omvandlingen och förhållandet mellan epimerer med användning av integrationen av omvänd fas HP…

Discussion

Det syntetiska tillvägagångssättet som beskrivs i detta dokument ger en metod för att syntetisera cykliska peptider med användning av Cys och Met i peptidsekvensen, där de grundläggande linjära peptiderna konstrueras av vanliga fastfaspeptidsyntestekniker. För bisalkylering av cykliska peptider mellan Cys och Met kan hela den syntetiska vägen delas in i tre huvudprocesser: avskyddet av Cys på hartset, kopplingen av länkaren och cykliseringen mellan Cys och Met i en trifluorättiksyraklyvningslösning. I synne…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi erkänner ekonomiskt stöd från Kinas nationella nyckel-FoU-program (2021YFC2103900); Natural Science Foundation of China beviljar (21778009 och 21977010); Natural Science Foundation i Guangdong-provinsen (2022A1515010996 och 2020A1515010521): Shenzhen Science and Technology Innovation Committee, (RCJC20200714114433053, JCYJ201805081522131455 och JCYJ20200109140406047); och Shenzhen-Hong Kong Institute of Brain Science-Shenzhen Fundamental Research Institutions bidrag (2019SHIBS0004). Författarna erkänner tidskriftsstöd från Chemical Science, The Royal Society of Chemistry för referens 30 och Journal of Organic Chemistry, American Chemical Society, för referens 31.

Materials

1,3-bis(bromomethyl)-benzen Energy D0215
1,3-Dimethylbarbituric acid Energy A46873
1H NMR and HSQC Bruker  AVANCE-III 400
1-Hydroxybenzotriazole hydrate Energy E020543
2-(7-azabenzotriazol-1-yl)-N,N,N',N'-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HATU) Energy A1797
2-mercaptopyridine Energy Y31130
6-Aminocaproic acid Energy A010678
Acetic anhydride Energy A01021454
Acetonitrile Aldrich 9758
Ammonium carbonate Energy 12980
Dichloromethane (DCM) Energy W330229
Digital Heating Cooling Drybath  Thermo Scientific 88880029
Diisopropylethylamine (DIPEA) Energy W320014
Dimethyl formamide (DMF) Energy B020051
Dithiothreitol Energy A10027
Electrospray Ionization Mass SHIMADZU2020  LC-MS2020
Fmoc-Ala-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30101
Fmoc-Arg(Pbf)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30201
Fmoc-Cys(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30501
Fmoc-Gln(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30601
Fmoc-Glu(OtBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30701
Fmoc-His(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30902
Fmoc-Ile-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31001
Fmoc-Lys(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31201
Fmoc-Met-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31301
Fmoc-Pro-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31501
Fmoc-Ser(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31601
Fmoc-Thr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31701
Fmoc-Trp(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31801
Fmoc-Tyr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31901
Fmoc-Val-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R32001
Formic acid Energy W810042
High Performance Liquid
Chromatography
SHIMADZU LC-2030
Methanol Aldrich 9758
Morpholine Aldrich M109062
N,N'-Diisopropylcarbodiimide Energy B010023
Ninhydrin Reagent Energy N7285
Propargyl bromide Energy W320293
Rink Amide MBHA resin Nanjing Peptide Biotech Ltd.
Solid Phase Extraction (SPE) Sample Collection Plates  Thermo Scientific 60300-403
Tetrakis(triphenylphosphine) palladium Energy T1350
Three-way stopcocks Bio-Rad 7328107
Triethylamine Energy B010737
Trifluoroacetic acid (TFA) J&K 101398
Triisopropylsilane (TIS) Energy T1533

References

  1. Arkin, M. R., Tang, Y. Y., Wells, J. A. Small-molecule inhibitors of protein-protein interactions: Progressing toward the reality. Chemistry Biology. 21 (9), 1102-1114 (2014).
  2. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bis-alkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  3. Muttenthaler, M., King, G. F., Adams, D. J., Alewood, P. F. Trends in peptide drug discovery. Nature Reviews Drug Discovery. 20 (4), 309-325 (2021).
  4. White, C. J., Yudin, A. K. Contemporary strategies for peptide macrocyclization. Nature Chemistry. 3 (7), 509-524 (2011).
  5. Victoria, G. G., Reddy, S. R. Recent advances in the synthesis of organic chloramines and their insights into health care. New Journal of Chemistry. 45, 8386-8408 (2021).
  6. Kim, J. I., et al. Conformation and stereoselective reduction of hapten side chains in the antibody combining site. Journal of the American Chemical Society. 113 (24), 9392-9394 (1991).
  7. Waddington, M. A., et al. An organometallic strategy for cysteine borylation. Journal of the American Chemical Society. 143 (23), 8661-8668 (2021).
  8. Luong, H. X., Bui, H. T. P., Tung, T. T. Application of the all-hydrocarbon stapling technique in the design of membrane-active peptides. Journal of Medicinal Chemistry. 65 (4), 3026-3045 (2022).
  9. Góngora-Benítez, M., Tulla-Puche, J., Albericio, F. Multifaceted roles of disulfide bonds. peptides as therapeutics. Chemical Reviews. 114 (2), 901-926 (2014).
  10. Li, B., et al. Cooperative stapling of native peptides at lysine and tyrosine or arginine with formaldehyde. Angewandte Chemie International Edition. 60 (12), 6646-6652 (2021).
  11. Blaum, B. S., et al. Lysine and arginine side chains in glycosaminoglycan-protein complexes investigated by NMR, cross-Linking, and mass spectrometry: a case study of the factor h-heparin Interaction. Journal of the American Chemical Society. 132 (18), 6374-6381 (2010).
  12. Petitdemange, R., et al. Selective tuning of elastin-like polypeptide properties via methionine oxidation. Biomacromolecules. 18 (2), 544-550 (2016).
  13. Kadlcik, V., et al. Reductive modification of a methionine residue in the amyloid-beta peptide. Angewandte Chemie International Edition. 45 (16), 259 (2006).
  14. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).
  15. Reddy, C. B. R., et al. Antiviral activity of 3-(1-chloropiperidin-4-yl)-6-fluoro benzisoxazole 2 against white spot syndrome virus in freshwater crab, Paratelphusa hydrodomous. Aquaculture Research. 47 (8), 2677-2681 (2015).
  16. Embaby, A. M., Schoffelen, S., Kofoed, C., Meldal, M., Diness, F. Rational tuning of fluorobenzene probes for cysteine-selective protein modification. Angewandte Chemie International Edition. 57 (27), 8022-8026 (2018).
  17. Jiang, H. F., Chen, W. J., Wang, J., Zhang, R. S. Selective N-terminal modification of peptides and proteins: recent progresses and applications. Chinese Chemical Letters. 33 (1), 80-88 (2022).
  18. Yu, Y., et al. PDZ-reactive peptide activates ephrin-B reverse signaling and inhibits neuronal chemotaxis. ACS Chemical Biology. 11 (1), 149-158 (2016).
  19. Huhn, A. J., Guerra, R. M., Harvey, E. P., Bird, G. H., Walensky, L. D. Selective covalent targeting of anti-apoptotic BFL-1 by cysteine-reactive stapled peptide inhibitors. Cell Chemical Biology. 23 (9), 1123-1134 (2016).
  20. Chow, H. Y., Zhang, Y., Matheson, E., Li, X. C. Ligation technologies for the synthesis of cyclic peptides. Chemical Reviews. 119 (17), 9971-10001 (2019).
  21. Zhang, H. Y., Chen, S. Y. Cyclic peptide drugs approved in the last two decades (2001-2021). RSC Chemical Biology. 3 (1), 18-31 (2021).
  22. Lee, Y. J., Han, S. H., Lim, Y. B. Simultaneous stabilization and multimerization of a peptide alpha-helix by stapling polymerization. Macromolecular Rapid Communications. 37 (13), 1021-1026 (2016).
  23. Karthikeyan, K., et al. Anti-viral activity of methyl 1-chloro-7-methyl-2-propyl-1h-benzo[d] imidazole-5-carboxylate against white spot syndrome virus in freshwater crab (Paratelphusa hydrodromous). Aquaculture International. 30, 989-998 (2022).
  24. Zhao, H., et al. Crosslinked aspartic acids as helix-nucleating templates. Angewandte Chemie International Edition. 55 (39), 12088-12093 (2016).
  25. Hu, K., et al. An in-tether chiral center modulates the helicity, cell permeability, and target binding affinity of a peptide. Angewandte Chemie International Edition. 55 (28), 8013-8017 (2016).
  26. Hu, K., Sun, C., Li, Z. Reversible and versatile on-tether modification of chiral-center-induced helical peptides. Bioconjugate Chemistry. 28 (7), 2001-2007 (2017).
  27. Kramer, J. R., Deming, T. J. Reversible chemoselective tagging and functionalization of methionine containing peptides. Chemical Communications. 49 (45), 5144-5146 (2013).
  28. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bisalkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  29. Merrifield, B. Solid phase synthesis. Nobel lecture, 8 December 1984. Bioscience Reports. 5 (5), 353-376 (1985).
  30. Wang, D. Y., et al. A sulfonium tethered peptide ligand rapidly and selectively modifies protein cysteine in vicinity. Chemical Science. 10 (19), 4966-4972 (2019).
  31. Hou, Z. F., et al. A sulfonium triggered thiol-yne reaction for cysteine modification. The Journal of Organic Chemistry. 85 (3), 1698-1705 (2020).
  32. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).
check_url/64289?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Song, C., Hou, Z., Jiao, Z., Liu, Z., Lian, C., Zhang, M., Liang, W., Yin, F., Li, Z. Constructing Cyclic Peptides Using an On-Tether Sulfonium Center. J. Vis. Exp. (187), e64289, doi:10.3791/64289 (2022).

View Video