Summary

בניית פפטידים מחזוריים באמצעות מרכז סולפוניום על קשירה

Published: September 28, 2022
doi:

Summary

פרוטוקול זה מציג את הסינתזה של פפטידים מחזוריים באמצעות ביסלקילציה בין ציסטאין למתיונין ואת תגובת תיול-ין המופעלת על ידי מרכז פרופרגיל סולפוניום.

Abstract

בשנים האחרונות, פפטידים מחזוריים מושכים תשומת לב גוברת בתחום גילוי התרופות בשל פעילותם הביולוגית המצוינת, וכתוצאה מכך הם משמשים כיום קלינית. לכן, חיוני לחפש אסטרטגיות יעילות לסינתזה של פפטידים מחזוריים כדי לקדם את יישומם בתחום גילוי התרופות. מאמר זה מדווח על פרוטוקול מפורט לסינתזה יעילה של פפטידים מחזוריים באמצעות ביסלקילציה תוך-מולקולרית או תוך-מולקולרית (בין-מולקולרית). באמצעות פרוטוקול זה, פפטידים ליניאריים סונתזו על ידי ניצול סינתזת פפטידים בפאזה מוצקה עם ציסטאין (Cys) ומתיונין (Met) המצומדים בו זמנית על השרף. יתר על כן, פפטידים מחזוריים סונתזו באמצעות ביסלקילציה בין Met ו- Cys באמצעות קשירה הניתנת לכוונון ומרכז סולפוניום על קשירה. ניתן לחלק את כל המסלול הסינתטי לשלושה תהליכים עיקריים: הגנה על Cys על השרף, צימוד המקשר, ומחזוריות בין Cys ו- Met בתמיסת ביקוע חומצה טריפלואורואצטית (TFA). יתר על כן, בהשראת התגובה של מרכז הסולפוניום, קבוצת פרופרגיל הוצמדה למטרופוליטן כדי לגרום לתוספת תיול-ין וליצור פפטיד מחזורי. לאחר מכן, הפפטידים הגולמיים יובשו והתמוססו באצטוניטריל, הופרדו ולאחר מכן טוהרו על ידי כרומטוגרפיה נוזלית בעלת ביצועים גבוהים (HPLC). המשקל המולקולרי של הפפטיד המחזורי אושר על ידי ספקטרומטריית כרומטוגרפיה-מסה נוזלית (LC-MS), והיציבות של שילוב הפפטיד המחזורי עם הרדוקטנט אושרה עוד יותר באמצעות HPLC. בנוסף, השינוי הכימי בפפטיד המחזורי נותח על ידי ספקטרום תהודה מגנטית גרעינית של 1 H (1H NMR). בסך הכל, פרוטוקול זה נועד לבסס אסטרטגיה יעילה לסינתזה של פפטידים מחזוריים.

Introduction

אינטראקציות חלבון-חלבון (PPIs)1 ממלאות תפקיד מרכזי במחקר ובפיתוח תרופות. בניית פפטידים מיוצבים עם קונפורמציה קבועה באמצעים כימיים היא אחת השיטות החשובות ביותר לפיתוח מוטיבים מימטיים של PPIs2. עד כה פותחו מספר פפטידים מחזוריים המכוונים ל-PPIs לשימוש קליני3. רוב הפפטידים מוגבלים לקונפורמציה של סליל α כדי להפחית את האנטרופיה הקונפורמציונית ולשפר את היציבות המטבולית, זיקת קשירת המטרה וחדירות התאים 4,5. בשני העשורים האחרונים, השרשראות הצדדיות של Cys 6,7, ליזין 8,9, טריפטופן 10, ארגינין 11ו-Met 12,13 הוכנסו לחומצות אמינו לא טבעיות כדי לקבע את הפפטיד לקונפורמציה מחזורית. פפטידים מחזוריים כאלה יכולים לכוון למרחב כימי ייחודי או לאתרים מיוחדים, ובכך לעורר תגובה קוולנטית ליצירת קוולנטית חלבונית-פפטידית קוולנטית14,15,16,17. בדו”ח שפורסם לאחרונה על ידי Yu et al., כלורואצטמיד עוגן בתחום של ליגנדות פפטידיות, מה שמבטיח תגובת הצמדה קוולנטית עם ספציפיות מצוינת לחלבון18. יתר על כן, ראשי נפץ אלקטרופיליים, כגון אקרילאמיד ואריל סולפוניל פלואוריד (ArSO2F), שולבו עוד יותר בפפטידים על ידי Walensky et al.19 כדי ליצור מעכבי פפטיד קוולנטיים מיוצבים ולשפר את ההשפעה האנטי-סרטנית של מעכבי פפטידים. לכן, חשוב מאוד להציג קבוצה פונקציונלית נוספת על מנת לשנות באופן קוולנטי ליגנדות חלבון-פפטיד20. קבוצות אלה לא רק מגיבות עם חלבונים בשרשרת הצדדית אלא גם מייצבות את המבנה המשני של הפפטיד21. עם זאת, היישום של חלבונים שעברו שינוי קוולנטי המושרה על ידי ליגנדות פפטידיות מוגבל בשל המסלול הסינתטי המסובך והקשירה הלא ספציפית של הקבוצות הכימיות22,23. אסטרטגיות יעילות לסינתזה של פפטידים מחזוריים נדרשים, אם כן, בדחיפות.

בהשראת האסטרטגיות הרב-גוניות של פפטידים מחזוריים 2,24,25,26, פרוטוקול זה מנסה לפתח שיטה פשוטה ויעילה לייצוב פפטידים. בנוסף, ציינו כי קבוצת השרשרת הצדדית של פפטיד יציב יכולה להגיב באופן קוולנטי עם חלבון מטרה כאשר הוא היה קרוב מרחבית לליגנדות הפפטידיות. את המחסור ב-Met שעבר שינוי כימי מימשה קבוצת דמינג ב-2013 על ידי פיתוח שיטה חדשנית לייצור פפטיד מתיונין27 שעבר שינוי סלקטיבי. בהתבסס על רקע זה, Shi et al. התמקדו בפיתוח סגירת הטבעת של שרשראות צדדיות ליצירת מרכז מלח סולפוניום. כאשר הליגנד הפפטידי משתלב עם חלבון המטרה, קבוצת מלח הסולפוניום מגיבה באופן קוולנטי עם חלבון Cys הקרוב מרחבית. בשנים האחרונות עיצבו בני שי ואחרים שיטה חדשה לייצוב פפטיד מחזורי28. מלח הסולפוניום שעל הפפטיד המחזורי הופחת על ידי חומר מחזר עם קבוצת סולפהידריל שהופחתה באופן הפיך ל-Met. עם זאת, התגובה הייתה בעלת יעילות נמוכה, מה שהזיק למחקרי יישומים ביולוגיים מאוחרים יותר. במחקר הנוכחי תוכננה תגובת סגירה טבעתית של Met-Cys ופרופרגיל ברומיד-Cys, כאשר מלח סולפוניום יחיד נותר על השרשרת הצדדית של הפפטיד המחזורי. מלח הסולפוניום פעל כראש נפץ חדש שהגיב באופן קוולנטי עם החלבון Cys בסמיכות מרחבית. בקצרה, פפטיד שעבר מוטציה ב-Cys ו-Met היה מחזורי על-ידי אלקילציה תוך-מולקולרית, וכתוצאה מכך נוצר מרכז סולפוניום על-קשירה. בתהליך זה, היווצרות גשר שרשרת צדדי הייתה קריטית עבור פפטידים מחזוריים. בסך הכל, פרוטוקול זה מתאר מחזוריות פפטידית מפורטת מבוססת סולפוניום המושגת באמצעות תנאי תגובה ופעולות פשוטות. המטרה היא לפתח שיטה פוטנציאלית ליישומים ביולוגיים רחבים נוספים.

Protocol

1. הכנת ציוד אזהרה: מורפולין, N,N-דימתילפורמיד (DMF), דיכלורומתאן (DCM), N,N-דיאיזופרופילתילאמין (DIPEA), TFA, מורפולין, פיפרידין, אתר דיאתיל ומתנול הם רעילים, נדיפים וקורוזיביים. ריאגנטים אלה יכולים להזיק לגוף האדם באמצעות שאיפה, בליעה או מגע עם העור. עבור כל הניסויים הכימיים, השת…

Representative Results

כל הפפטידים הליניאריים סונתזו על שרף MBHA של Rink-amide על ידי סינתזה ידנית סטנדרטית של Fmoc בפאזה מוצקה. מודל הקספפטיד מחזורי (Ac (cyclo-I)-WMAAAC-NH2) נבנה כמתואר באיור 5A. יש לציין כי מרכז כיראלי חדש על קשירה נוצר על ידי אלקילציה של Met, כאשר שני האפימרים של פפטיד מחזורי (Ia, Ib) אושרו על ידי …

Discussion

הגישה הסינתטית המתוארת במאמר זה מספקת שיטה לסינתזה של פפטידים מחזוריים באמצעות Cys ו-Met ברצף הפפטידים, שבו הפפטידים הליניאריים הבסיסיים בנויים על ידי טכניקות נפוצות של סינתזת פפטידים בפאזה מוצקה. לצורך ביסלקילציה של פפטידים מחזוריים בין Cys ל-Met, ניתן לחלק את כל המסלול הסינתטי לשלושה תהליכים…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מכירים בתמיכה כספית מתוכנית המו”פ הלאומית של סין (2021YFC2103900); מענקי הקרן למדעי הטבע של סין (21778009, ו-21977010); הקרן למדעי הטבע של מחוז גואנגדונג (2022A1515010996 ו- 2020A1515010521): ועדת החדשנות במדע וטכנולוגיה של שנזן, (RCJC20200714114433053, JCYJ201805081522131455, ו- JCYJ20200109140406047); ומענק מכון שנזן-הונג קונג למדעי המוח-שנזן למוסדות מחקר בסיסיים (2019SHIBS0004). המחברים מכירים בתמיכת כתבי העת של מדעי הכימיה , החברה המלכותית לכימיה לעיון 30 וכתב העת לכימיה אורגנית, האגודה האמריקאית לכימיה, לעיון 31.

Materials

1,3-bis(bromomethyl)-benzen Energy D0215
1,3-Dimethylbarbituric acid Energy A46873
1H NMR and HSQC Bruker  AVANCE-III 400
1-Hydroxybenzotriazole hydrate Energy E020543
2-(7-azabenzotriazol-1-yl)-N,N,N',N'-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HATU) Energy A1797
2-mercaptopyridine Energy Y31130
6-Aminocaproic acid Energy A010678
Acetic anhydride Energy A01021454
Acetonitrile Aldrich 9758
Ammonium carbonate Energy 12980
Dichloromethane (DCM) Energy W330229
Digital Heating Cooling Drybath  Thermo Scientific 88880029
Diisopropylethylamine (DIPEA) Energy W320014
Dimethyl formamide (DMF) Energy B020051
Dithiothreitol Energy A10027
Electrospray Ionization Mass SHIMADZU2020  LC-MS2020
Fmoc-Ala-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30101
Fmoc-Arg(Pbf)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30201
Fmoc-Cys(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30501
Fmoc-Gln(Trt)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30601
Fmoc-Glu(OtBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30701
Fmoc-His(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R30902
Fmoc-Ile-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31001
Fmoc-Lys(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31201
Fmoc-Met-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31301
Fmoc-Pro-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31501
Fmoc-Ser(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31601
Fmoc-Thr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31701
Fmoc-Trp(Boc)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31801
Fmoc-Tyr(tBu)-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R31901
Fmoc-Val-OH Nanjing Peptide Biotech Ltd R32001
Formic acid Energy W810042
High Performance Liquid
Chromatography
SHIMADZU LC-2030
Methanol Aldrich 9758
Morpholine Aldrich M109062
N,N'-Diisopropylcarbodiimide Energy B010023
Ninhydrin Reagent Energy N7285
Propargyl bromide Energy W320293
Rink Amide MBHA resin Nanjing Peptide Biotech Ltd.
Solid Phase Extraction (SPE) Sample Collection Plates  Thermo Scientific 60300-403
Tetrakis(triphenylphosphine) palladium Energy T1350
Three-way stopcocks Bio-Rad 7328107
Triethylamine Energy B010737
Trifluoroacetic acid (TFA) J&K 101398
Triisopropylsilane (TIS) Energy T1533

References

  1. Arkin, M. R., Tang, Y. Y., Wells, J. A. Small-molecule inhibitors of protein-protein interactions: Progressing toward the reality. Chemistry Biology. 21 (9), 1102-1114 (2014).
  2. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bis-alkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  3. Muttenthaler, M., King, G. F., Adams, D. J., Alewood, P. F. Trends in peptide drug discovery. Nature Reviews Drug Discovery. 20 (4), 309-325 (2021).
  4. White, C. J., Yudin, A. K. Contemporary strategies for peptide macrocyclization. Nature Chemistry. 3 (7), 509-524 (2011).
  5. Victoria, G. G., Reddy, S. R. Recent advances in the synthesis of organic chloramines and their insights into health care. New Journal of Chemistry. 45, 8386-8408 (2021).
  6. Kim, J. I., et al. Conformation and stereoselective reduction of hapten side chains in the antibody combining site. Journal of the American Chemical Society. 113 (24), 9392-9394 (1991).
  7. Waddington, M. A., et al. An organometallic strategy for cysteine borylation. Journal of the American Chemical Society. 143 (23), 8661-8668 (2021).
  8. Luong, H. X., Bui, H. T. P., Tung, T. T. Application of the all-hydrocarbon stapling technique in the design of membrane-active peptides. Journal of Medicinal Chemistry. 65 (4), 3026-3045 (2022).
  9. Góngora-Benítez, M., Tulla-Puche, J., Albericio, F. Multifaceted roles of disulfide bonds. peptides as therapeutics. Chemical Reviews. 114 (2), 901-926 (2014).
  10. Li, B., et al. Cooperative stapling of native peptides at lysine and tyrosine or arginine with formaldehyde. Angewandte Chemie International Edition. 60 (12), 6646-6652 (2021).
  11. Blaum, B. S., et al. Lysine and arginine side chains in glycosaminoglycan-protein complexes investigated by NMR, cross-Linking, and mass spectrometry: a case study of the factor h-heparin Interaction. Journal of the American Chemical Society. 132 (18), 6374-6381 (2010).
  12. Petitdemange, R., et al. Selective tuning of elastin-like polypeptide properties via methionine oxidation. Biomacromolecules. 18 (2), 544-550 (2016).
  13. Kadlcik, V., et al. Reductive modification of a methionine residue in the amyloid-beta peptide. Angewandte Chemie International Edition. 45 (16), 259 (2006).
  14. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).
  15. Reddy, C. B. R., et al. Antiviral activity of 3-(1-chloropiperidin-4-yl)-6-fluoro benzisoxazole 2 against white spot syndrome virus in freshwater crab, Paratelphusa hydrodomous. Aquaculture Research. 47 (8), 2677-2681 (2015).
  16. Embaby, A. M., Schoffelen, S., Kofoed, C., Meldal, M., Diness, F. Rational tuning of fluorobenzene probes for cysteine-selective protein modification. Angewandte Chemie International Edition. 57 (27), 8022-8026 (2018).
  17. Jiang, H. F., Chen, W. J., Wang, J., Zhang, R. S. Selective N-terminal modification of peptides and proteins: recent progresses and applications. Chinese Chemical Letters. 33 (1), 80-88 (2022).
  18. Yu, Y., et al. PDZ-reactive peptide activates ephrin-B reverse signaling and inhibits neuronal chemotaxis. ACS Chemical Biology. 11 (1), 149-158 (2016).
  19. Huhn, A. J., Guerra, R. M., Harvey, E. P., Bird, G. H., Walensky, L. D. Selective covalent targeting of anti-apoptotic BFL-1 by cysteine-reactive stapled peptide inhibitors. Cell Chemical Biology. 23 (9), 1123-1134 (2016).
  20. Chow, H. Y., Zhang, Y., Matheson, E., Li, X. C. Ligation technologies for the synthesis of cyclic peptides. Chemical Reviews. 119 (17), 9971-10001 (2019).
  21. Zhang, H. Y., Chen, S. Y. Cyclic peptide drugs approved in the last two decades (2001-2021). RSC Chemical Biology. 3 (1), 18-31 (2021).
  22. Lee, Y. J., Han, S. H., Lim, Y. B. Simultaneous stabilization and multimerization of a peptide alpha-helix by stapling polymerization. Macromolecular Rapid Communications. 37 (13), 1021-1026 (2016).
  23. Karthikeyan, K., et al. Anti-viral activity of methyl 1-chloro-7-methyl-2-propyl-1h-benzo[d] imidazole-5-carboxylate against white spot syndrome virus in freshwater crab (Paratelphusa hydrodromous). Aquaculture International. 30, 989-998 (2022).
  24. Zhao, H., et al. Crosslinked aspartic acids as helix-nucleating templates. Angewandte Chemie International Edition. 55 (39), 12088-12093 (2016).
  25. Hu, K., et al. An in-tether chiral center modulates the helicity, cell permeability, and target binding affinity of a peptide. Angewandte Chemie International Edition. 55 (28), 8013-8017 (2016).
  26. Hu, K., Sun, C., Li, Z. Reversible and versatile on-tether modification of chiral-center-induced helical peptides. Bioconjugate Chemistry. 28 (7), 2001-2007 (2017).
  27. Kramer, J. R., Deming, T. J. Reversible chemoselective tagging and functionalization of methionine containing peptides. Chemical Communications. 49 (45), 5144-5146 (2013).
  28. Shi, X. D., et al. Reversible stapling of unprotected peptides via chemoselective methionine bisalkylation/dealkylation. Chemical Science. 9 (12), 3227-3232 (2018).
  29. Merrifield, B. Solid phase synthesis. Nobel lecture, 8 December 1984. Bioscience Reports. 5 (5), 353-376 (1985).
  30. Wang, D. Y., et al. A sulfonium tethered peptide ligand rapidly and selectively modifies protein cysteine in vicinity. Chemical Science. 10 (19), 4966-4972 (2019).
  31. Hou, Z. F., et al. A sulfonium triggered thiol-yne reaction for cysteine modification. The Journal of Organic Chemistry. 85 (3), 1698-1705 (2020).
  32. Reguera, L., Rivera, D. G. Multicomponent reaction toolbox for peptide macrocyclization and stapling. Chemical Reviews. 119 (17), 9836-9860 (2019).

Play Video

Cite This Article
Song, C., Hou, Z., Jiao, Z., Liu, Z., Lian, C., Zhang, M., Liang, W., Yin, F., Li, Z. Constructing Cyclic Peptides Using an On-Tether Sulfonium Center. J. Vis. Exp. (187), e64289, doi:10.3791/64289 (2022).

View Video