Ce protocole présente la synthèse de peptides cycliques via la bisalkylation entre la cystéine et la méthionine et la réaction thiol-yne facile déclenchée par le centre propargylsulfonium.
Ces dernières années, les peptides cycliques ont attiré une attention croissante dans le domaine de la découverte de médicaments en raison de leurs excellentes activités biologiques et, par conséquent, ils sont maintenant utilisés cliniquement. Il est donc essentiel de rechercher des stratégies efficaces pour synthétiser des peptides cycliques afin de promouvoir leur application dans le domaine de la découverte de médicaments. Cet article rapporte un protocole détaillé pour la synthèse efficace de peptides cycliques en utilisant la résine ou la bisalkylation intramoléculaire (intermoléculaire). En utilisant ce protocole, des peptides linéaires ont été synthétisés en tirant parti de la synthèse peptidique en phase solide avec cystéine (Cys) et méthionine (Met) couplées simultanément sur la résine. De plus, des peptides cycliques ont été synthétisés par bisalkylation entre Met et Cys à l’aide d’une attache accordable et d’un centre de sulfonium sur l’attache. L’ensemble de la voie synthétique peut être divisé en trois processus principaux: la déprotection de Cys sur la résine, le couplage de l’agent de liaison et la cyclisation entre Cys et Met dans une solution de clivage d’acide trifluoroacétique (TFA). De plus, inspiré par la réactivité du centre sulfonium, un groupe propargyle a été attaché au Met pour déclencher l’addition de thiol-yne et former un peptide cyclique. Après cela, les peptides bruts ont été séchés et dissous dans de l’acétonitrile, séparés, puis purifiés par chromatographie liquide à haute performance (HPLC). Le poids moléculaire du peptide cyclique a été confirmé par chromatographie liquide-spectrométrie de masse (LC-MS), et la stabilité de la combinaison peptidique cyclique avec le réducteur a été confirmée par HPLC. De plus, le décalage chimique dans le peptide cyclique a été analysé par des spectres de résonance magnétique nucléaire de 1H (RMN de 1H). Dans l’ensemble, ce protocole visait à établir une stratégie efficace de synthèse des peptides cycliques.
Les interactions protéine-protéine (IPP)1 jouent un rôle central dans la recherche et le développement de médicaments. La construction de peptides stabilisés avec une conformation fixe par des moyens chimiques est l’une des méthodes les plus importantes pour développer des motifs mimétiques des IPP2. À ce jour, plusieurs peptides cycliques ciblant les IPP ont été développés pour un usage clinique3. La plupart des peptides sont contraints à une conformation en α-hélice pour diminuer l’entropie conformationnelle et améliorer la stabilité métabolique, l’affinité de liaison à la cible et la perméabilité cellulaire 4,5. Au cours des 2 dernières décennies, les chaînes latérales de Cys6,7, lysine8,9, tryptophane 10, arginine 11 et Met12,13 ont été insérées dans des acides aminés non naturels pour fixer le peptide dans une conformation cyclique. De tels peptides cycliques peuvent cibler un espace chimique unique ou des sites spéciaux, déclenchant ainsi une réaction covalente pour former une liaison covalente protéine-peptide14,15,16,17. Dans un rapport récent de Yu et al., un chloroacétamide a été ancré sur le domaine des ligands peptidiques, assurant une réaction de conjugaison covalente avec une excellente spécificité protéique18. De plus, des ogives électrophiles, telles que l’acrylamide et le fluorure d’arylsulfonyle (ArSO2F), ont été incorporées dans des peptides par Walensky et al.19 pour former des inhibiteurs covalents peptidiques stabilisés et améliorer l’effet antitumoral des inhibiteurs peptidiques. Par conséquent, il est très important d’introduire un groupe fonctionnel supplémentaire afin de modifier de manière covalente les ligands protéine-peptide20. Ces groupes réagissent non seulement avec les protéines de la chaîne latérale, mais stabilisent également la structure secondaire du peptide21. Cependant, l’application de protéines modifiées par covalence induites par des ligands peptidiques est limitée en raison de la voie synthétique compliquée et de la liaison non spécifique des groupes chimiques22,23. Des stratégies efficaces pour la synthèse de peptides cycliques sont donc nécessaires de toute urgence.
Inspiré par les multiples stratégies des peptides cycliques 2,24,25,26, ce protocole tente de développer une méthode simple et efficace pour stabiliser les peptides. De plus, nous avons noté que le groupe de chaînes latérales d’un peptide stable pouvait réagir de manière covalente avec une protéine cible lorsqu’elle était spatialement proche des ligands peptidiques. Le manque de Met chimiquement modifié a été comblé par le groupe Deming en 2013 en développant une nouvelle méthode de production de méthioninepeptidique 27 sélectivement modifiée. Sur la base de ce contexte, Shi et al. se sont concentrés sur le développement de la fermeture en anneau des chaînes latérales pour former un centre de sel de sulfonium. Lorsque le ligand peptidique se combine avec la protéine cible, le groupe sel de sulfonium réagit de manière covalente avec la protéine Cys spatialement proche. Ces dernières années, Shi et al. ont conçu une nouvelle méthode pour stabiliser le peptide cyclique28. Le sel de sulfonium sur le peptide cyclique a été réduit par un agent réducteur avec un groupe sulfhydryle qui a été réduit de manière réversible à Met. Cependant, la réaction avait une faible efficacité, ce qui était nocif pour les études d’application biologique ultérieures. Dans la présente étude, une réaction de fermeture de cycle Met-Cys et bromure de propargyle-Cys a été conçue, avec un seul sel de sulfonium restant sur la chaîne latérale du peptide cyclique. Le sel de sulfonium a agi comme une nouvelle ogive qui a réagi de manière covalente avec la protéine Cys à proximité spatiale. En bref, un peptide muté par Cys et Met a été cyclisé par alkylation intramoléculaire, ce qui a entraîné la génération d’un centre de sulfonium sur l’attache. Dans ce processus, la formation d’un pont de chaîne latérale était essentielle pour les peptides cycliques. Dans l’ensemble, ce protocole décrit une cyclisation détaillée des peptides à base de sulfonium qui est réalisée en utilisant des conditions de réaction et des opérations simples. L’objectif est de développer une méthode potentielle pour d’autres applications biologiques à grande échelle.
L’approche synthétique décrite dans cet article fournit une méthode de synthèse de peptides cycliques à l’aide de Cys et Met dans la séquence peptidique, dans laquelle les peptides linéaires de base sont construits par des techniques courantes de synthèse peptidique en phase solide. Pour la bisalkylation de peptides cycliques entre Cys et Met, l’ensemble de la voie synthétique peut être divisé en trois processus majeurs : la déprotection des Cys sur la résine, le couplage de l’agent de liaison, et la…
The authors have nothing to disclose.
Nous reconnaissons le soutien financier du Programme national de R&D clé de la Chine (2021YFC2103900); les subventions de la Fondation chinoise des sciences naturelles (21778009 et 21977010); la Fondation des sciences naturelles de la province du Guangdong (2022A1515010996 et 2020A1515010521): le Comité de l’innovation scientifique et technologique de Shenzhen (RCJC20200714114433053, JCYJ201805081522131455 et JCYJ20200109140406047); et la subvention Shenzhen-Hong Kong Institute of Brain Science-Shenzhen Fundamental Research Institutions (2019SHIBS0004). Les auteurs remercient le soutien de la revue Chemical Science , The Royal Society of Chemistry pour la référence 30 et The Journal of Organic Chemistry, American Chemical Society, pour la référence 31.
1,3-bis(bromomethyl)-benzen | Energy | D0215 | |
1,3-Dimethylbarbituric acid | Energy | A46873 | |
1H NMR and HSQC | Bruker | AVANCE-III 400 | |
1-Hydroxybenzotriazole hydrate | Energy | E020543 | |
2-(7-azabenzotriazol-1-yl)-N,N,N',N'-tetramethyluronium hexafluorophosphate (HATU) | Energy | A1797 | |
2-mercaptopyridine | Energy | Y31130 | |
6-Aminocaproic acid | Energy | A010678 | |
Acetic anhydride | Energy | A01021454 | |
Acetonitrile | Aldrich | 9758 | |
Ammonium carbonate | Energy | 12980 | |
Dichloromethane (DCM) | Energy | W330229 | |
Digital Heating Cooling Drybath | Thermo Scientific | 88880029 | |
Diisopropylethylamine (DIPEA) | Energy | W320014 | |
Dimethyl formamide (DMF) | Energy | B020051 | |
Dithiothreitol | Energy | A10027 | |
Electrospray Ionization Mass | SHIMADZU2020 | LC-MS2020 | |
Fmoc-Ala-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30101 | |
Fmoc-Arg(Pbf)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30201 | |
Fmoc-Cys(Trt)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30501 | |
Fmoc-Gln(Trt)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30601 | |
Fmoc-Glu(OtBu)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30701 | |
Fmoc-His(Boc)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R30902 | |
Fmoc-Ile-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31001 | |
Fmoc-Lys(Boc)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31201 | |
Fmoc-Met-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31301 | |
Fmoc-Pro-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31501 | |
Fmoc-Ser(tBu)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31601 | |
Fmoc-Thr(tBu)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31701 | |
Fmoc-Trp(Boc)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31801 | |
Fmoc-Tyr(tBu)-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R31901 | |
Fmoc-Val-OH | Nanjing Peptide Biotech Ltd | R32001 | |
Formic acid | Energy | W810042 | |
High Performance Liquid Chromatography |
SHIMADZU | LC-2030 | |
Methanol | Aldrich | 9758 | |
Morpholine | Aldrich | M109062 | |
N,N'-Diisopropylcarbodiimide | Energy | B010023 | |
Ninhydrin Reagent | Energy | N7285 | |
Propargyl bromide | Energy | W320293 | |
Rink Amide MBHA resin | Nanjing Peptide Biotech Ltd. | ||
Solid Phase Extraction (SPE) Sample Collection Plates | Thermo Scientific | 60300-403 | |
Tetrakis(triphenylphosphine) palladium | Energy | T1350 | |
Three-way stopcocks | Bio-Rad | 7328107 | |
Triethylamine | Energy | B010737 | |
Trifluoroacetic acid (TFA) | J&K | 101398 | |
Triisopropylsilane (TIS) | Energy | T1533 |