Cet article compare directement la résolution, la sensibilité et les contrastes d’imagerie de la diffusion Raman stimulée (SRS) et de la diffusion Raman anti-Stokes cohérente (CARS) intégrées dans la même plate-forme de microscope. Les résultats montrent que CARS a une meilleure résolution spatiale, SRS donne de meilleurs contrastes et une meilleure résolution spectrale, et les deux méthodes ont une sensibilité similaire.
La diffusion Raman stimulée (SRS) et la microscopie cohérente anti-diffusion Raman (CARS) sont les technologies d’imagerie par diffusion Raman cohérente les plus largement utilisées. L’imagerie hyperspectrale SRS et CARS offre des informations spectrales Raman à chaque pixel, ce qui permet une meilleure séparation des différentes compositions chimiques. Bien que les deux techniques nécessitent deux lasers d’excitation, leurs schémas de détection de signal et leurs propriétés spectrales sont très différents. L’objectif de ce protocole est d’effectuer à la fois l’imagerie hyperspectrale SRS et CARS sur une seule plate-forme et de comparer les deux techniques de microscopie pour l’imagerie de différents échantillons biologiques. La méthode de focalisation spectrale est utilisée pour acquérir des informations spectrales à l’aide de lasers femtosecondes. En utilisant des échantillons chimiques standard, la sensibilité, la résolution spatiale et la résolution spectrale de SRS et CARS dans les mêmes conditions d’excitation (c.-à-d. puissance à l’échantillon, temps de séjour en pixels, lentille d’objectif, énergie d’impulsion) sont comparées. Les contrastes d’imagerie de CARS et SRS pour les échantillons biologiques sont juxtaposés et comparés. La comparaison directe des performances CARS et SRS permettrait une sélection optimale de la modalité d’imagerie chimique.
Le phénomène de diffusion Raman a été observé pour la première fois en 1928 par C. V. Raman1. Lorsqu’un photon incident interagit avec un échantillon, un événement de diffusion inélastique peut se produire spontanément, dans lequel le changement d’énergie du photon correspond à une transition vibratoire des espèces chimiques analysées. Ce processus ne nécessite pas l’utilisation d’une étiquette chimique, ce qui en fait un outil polyvalent et sans étiquette pour l’analyse chimique tout en minimisant la perturbation des échantillons. Malgré ses avantages, la diffusion Raman spontanée souffre d’une faible section de diffusion (généralement 10à 11 inférieure à la section transversale d’absorption infrarouge [IR]), ce qui nécessite de longs temps d’acquisition pour l’analyse2. Ainsi, la recherche d’une augmentation de la sensibilité du processus de diffusion Raman est essentielle pour pousser les technologies Raman à l’imagerie en temps réel.
Un moyen efficace d’améliorer considérablement la sensibilité de la diffusion Raman consiste à utiliser des processus de diffusion Raman cohérents (CRS), pour lesquels deux impulsions laser sont généralement utilisées pour exciter les transitions vibratoires moléculaires 3,4. Lorsque la différence d’énergie des photons entre les deux lasers correspond aux modes vibratoires des molécules de l’échantillon, de forts signaux Raman seront générés. Les deux procédés CRS les plus couramment utilisés pour l’imagerie sont la diffusion Raman anti-Stokes cohérente (CARS) et la diffusion Raman stimulée (SRS)5. Au cours des deux dernières décennies, les développements technologiques ont fait progresser les techniques de microscopie CARS et SRS pour devenir des outils puissants pour la quantification sans étiquette et l’élucidation des changements chimiques dans les échantillons biologiques.
L’imagerie chimique par microscopie CARS peut être datée de 1982, lorsque le balayage laser a été appliqué pour la première fois pour acquérir des images CARS, démontré par Duncan et al6. La modernisation de la microscopie CARS a été considérablement accélérée après les vastes applications de la microscopie à fluorescence multiphotonique à balayage laser7. Les premiers travaux du groupe Xie utilisant des lasers à haut taux de répétition ont permis à CARS de devenir une plate-forme d’imagerie chimique à grande vitesse, sans étiquette, pour la caractérisation de molécules dans des échantillons biologiques 8,9,10. L’un des principaux problèmes de l’imagerie CARS est la présence d’un arrière-plan non résonant, ce qui réduit le contraste de l’image et déforme le spectre Raman. De nombreux efforts ont été faits pour réduire le fond non résonant 11,12,13,14,15 ou pour extraire les signaux Raman résonnants des spectres CARS 16,17. Une autre avancée qui a considérablement fait progresser le domaine est l’imagerie hyperspectrale CARS, qui permet une cartographie spectrale à chaque pixel d’image avec une sélectivité chimique améliorée 18,19,20,21.
La diffusion Raman stimulée (SRS) est une technologie d’imagerie plus jeune que CARS, bien qu’elle ait été découverte plus tôt22. En 2007, la microscopie SRS a été rapportée en utilisant une source laser à faible taux de répétition23. Bientôt, plusieurs groupes ont démontré l’imagerie SRS à grande vitesse en utilisant des lasers à haut taux de répétition 24,25,26. L’un des principaux avantages de la microscopie SRS par rapport à CARS est l’absence du fond non résonant27, bien que d’autres arrière-plans tels que la modulation de phase croisée (XPM), l’absorption transitoire (TA), l’absorption à deux photons (TPA) et l’effet photothermique (PT) puissent se produire avec SRS28. De plus, le signal SRS et la concentration de l’échantillon ont des relations linéaires, contrairement à CARS, qui a une dépendance quadratique signal-concentration29. Cela simplifie la quantification chimique et le démélange spectral. Le SRS multicolore et hyperspectral a évolué sous différentes formes 30,31,32,33,34,35,36, la focalisation spectrale étant l’une des approches les plus populaires pour l’imagerie chimique 37,38.
Cars et SRS nécessitent la focalisation de la pompe et des faisceaux laser Stokes sur l’échantillon pour correspondre à la transition vibratoire des molécules pour l’excitation du signal. Les microscopes CARS et SRS ont également beaucoup en commun. Cependant, la physique sous-jacente à ces deux processus et les détections de signaux impliquées dans ces technologies de microscopie présentent des disparités 3,39. CARS est un processus paramétrique qui n’a pas de couplage d’énergie photon-molécule net3. Le SRS, cependant, est un processus non paramétrique et contribue au transfert d’énergie entre les photons et les systèmes moléculaires27. Dans CARS, un nouveau signal à la fréquence anti-Stokes est généré, tandis que SRS se manifeste par le transfert d’énergie entre la pompe et les faisceaux laser Stokes.
Le signal CARS satisfait Eq (1)28.
(1)
Pendant ce temps, le signal SRS peut être écrit comme Eq (2) 28.
(2)
Ici, Ip, Is, ICARS et ΔISRS sont les intensités du faisceau de pompe, du faisceau de Stokes, du signal CARS et des signaux SRS, respectivement. χ(3) est la susceptibilité optique non linéaire de troisième ordre de l’échantillon et est une valeur complexe composée de parties réelles et imaginaires.
Ces équations expriment les profils spectraux et la dépendance signal-concentration de CARS et SRS. Les différences physiques se traduisent par des schémas de détection disparates pour ces deux technologies de microscopie. La détection du signal dans CARS implique généralement la séparation spectrale des photons nouvellement générés et la détection à l’aide d’un tube photomultiplicateur (PMT) ou d’un dispositif à couplage de charge (CCD); pour srS, l’échange d’énergie entre la pompe et les faisceaux de Stokes est généralement mesuré par modulation d’intensité à grande vitesse à l’aide d’un modulateur optique et démodulation à l’aide d’une photodiode () associée à un amplificateur de verrouillage.
Bien que de nombreux développements et applications technologiques aient été publiés ces dernières années dans les domaines CARS et SRS, aucune comparaison systématique des deux techniques CRS n’a été effectuée sur la même plate-forme, en particulier pour la microscopie hyperspectrale CARS et SRS. Des comparaisons directes de la sensibilité, de la résolution spatiale, de la résolution spectrale et des capacités de séparation chimique permettraient aux biologistes de choisir la meilleure modalité pour la quantification chimique. Dans ce protocole, des étapes détaillées pour construire une plate-forme d’imagerie multimodale avec des modalités hyperspectrales CARS et SRS basées sur un système laser femtoseconde et une focalisation spectrale sont fournies. Les deux techniques ont été comparées dans le sens avant pour la résolution spectrale, la sensibilité de détection, la résolution spatiale et les contrastes d’imagerie des cellules.
Le protocole présenté ici décrit la construction d’un microscope CRS multimodal et la comparaison directe entre CARS et l’imagerie SRS. Pour la construction du microscope, les étapes critiques sont le chevauchement spatial et temporel des faisceaux et l’optimisation de la taille des faisceaux. Il est recommandé d’utiliser un échantillon standard tel que le DMSO avant l’imagerie biologique pour optimiser le SNR et calibrer les décalages Raman. La comparaison directe entre les images CARS et SRS révèle q…
The authors have nothing to disclose.
Cette recherche a été soutenue par le fonds de démarrage du département de chimie de l’Université Purdue.
2D galvo scanner set | Thorlabs | GVS002 | |
Acousto-optic modulator | Isomet | M1205-P80L-0.5 | |
AOM driver | Isomet | 532B-2 | |
Data acquisition card | National Instruments | PCle 6363 | Custom ordered filter (980 sp) |
Delay stage | Zaber | X-LSM050A | |
Deuterium oxide | Millipore Sigma | 151882-100G | |
Dichroic mirror for beam combination | Thorlabs | DMLP1000 | |
Dichroic mirror for signal separation | Semrock | FF776-Di01-25×36 | |
DMSO | MiliporeSigma | 200-664-3 | |
MIA PaCa 2 Cells | ATCC | CRL-1420 | |
Femtosecond laser system | Spectral Physics | InSightX3+ | |
Filter for CARS | Chroma | AT655/30m | |
Filter for SRS | Chroma | ET980sp | |
Function generator | Rigol | DG1022Z | |
Glass rods | Lattice Electro Optics | SF-57 | |
Half-wave plate | Newport | 10RP02-51; 10RP02-46 | |
LabVIEW 2020 | National Instruments | This is the image acquisition software | |
Lock-in amplifier | Zurich Instrument | HF2LI | |
Microscope housing | Olympus | BX51W1 | |
Objective lens | Olympus | UPLSAPO60XW | |
Origin Pro 2019b | OriginLab Corporation | This is the spectral fitting software | |
Oscilloscope | Tektronix | TBS2204B | |
Photodiode | Hamamatsu | S3994-01 | |
PMT detector | Hamamatsu | H7422P-40 | |
PMT voltage amplifier | Advanced Research Instrument Corp. | PMT4V3 | |
Polarizing beamsplitter cube | Thorlabs | PBS255 | |
Terminal block | National Instruments | BNC-2110 |