Мы описываем экспериментальной процедуры для измерения активности нейронов через двойной Оптические окна выше двусторонних первичной соматосенсорные corticies (S1) в Thy1-GCaMP6s трансгенных мышей с использованием 2-Фотон (2 P) микроскопии в естественных условиях.
Мозг млекопитающих экспонатов отмеченные симметрии в сагиттальной плоскости. Тем не менее подробное описание динамики нейронной в симметричных мозга у взрослых млекопитающих животных остается труднодостижимой. В этом исследовании, мы описываем экспериментальной процедуры для измерения динамики кальция через двойной Оптические окна выше двусторонних первичной соматосенсорные corticies (S1) в Thy1-GCaMP6s трансгенных мышей с помощью микроскопии (2 P) 2-Фотон. Этот метод позволяет записи и количественной нейронной активности в регионах мозга двусторонних мыши один в то время в том же эксперимент для длительного периода в естественных условиях. Ключевые аспекты этого метода, который может быть завершен в течение часа, включают процедуры минимально инвазивной хирургии для создания двойной оптический windows и использования изображений 2P. Хотя мы только продемонстрировать технику в районе S1, метод может применяться в других регионах мозга жизни, содействия прояснению структурной и функциональной сложности мозга нейронных сетей.
Кальция и его регулирования имеют важное значение в урегулировании нескольких физиологических процессов. Мониторинг динамики кальция полезно для понимания функции нормального мозга, а также патологические состояния мозга расстройств 1,2,3,4,5,6 ,,78. Imaging флуоресценции GCaMP6s является мощным инструментом для количественной оценки Спайк чисел, времени, и частоту, а также уровень синаптического ввода как in vitro и in vivo 9,10,11.
Мозг млекопитающих экспонатов отмеченные симметрии в сагиттальной плоскости. Несмотря на последних исследованиях неврологических пролить свет на корковых ремоделирования и активности нейронов вызвано травматического головного или спинного мозга травмы 6,7, роли, неповрежденной ткани симметрично соответствующих регионов играть в восстановления являются по-прежнему неясными.
В этом исследовании мы описываем экспериментальной процедуры для создания двусторонних симметричных оптических windows для изображений в естественных условиях . С помощью этих оптических окон, мы описываем измерения динамики кальция из первичного соматосенсорные коре (S1) в GCaMP6s трансгенных мышей с использованием 2P микроскопии. В разделе результаты мы также показывают в vivo дендритных морфология в разное время точек в регионе S1 EGFP трансгенных мышей с использованием 2 P визуализации. Метод наблюдения относительно сети динамика в области двусторонних S1 является лишь первоначальный пример как двойной открытых окон, черепной поможет неврологи зонда местных и симметричной обработки информации в взрослого мозга млекопитающих в нормальных условия или в различных заболеваний моделей в естественных условиях.
Двух фотонных изображений позволяет одновременное измерение активности многих клеток на разумной резолюции на до приблизительно 800 мкм ниже поверхности мозга. Мы интегрировали 2P и двойное оптическое окно техника с генетически закодированный GCaMP6s соблюдать кальция динамика популяций нейронов somata слой V расположен > 500 мкм ниже pia. С открытым оптическим окном на каждой стороне черепа метод позволяет записи нейронной активности регионов симметричный млекопитающих мозга для продолжительного и стабильной кальция, изображений в vivo. Ключевые аспекты этого метода включают в себя производительность минимально инвазивной хирургии для создания оптических окон двойной открытой черепа и 2P изображений нейронной активности регионов симметрично S1.
Анализ сетевой активности в двусторонних S1 регионах является пример того как двойной черепной windows могут быть использованы для зонда местных и симметричной обработки информации в взрослого мозга в vivo. Этот метод также может использоваться для изучения активности нейронов (например с помощью Thy1 –GCaMP6s мышей) и пластичность коры головного мозга B6. CG-Tg (Thy1– рекламы ЯФП) HJrs/J от неповрежденной ткани соответствующего симметричного регионов в восстановлении после деафферентация из-за односторонних травмы ЦНС. Этот метод может также использоваться для изучения корковой активности в ответ на периферийных стимуляции стратегии, такие как optogenetic, электрические или химические стимуляцию. Хотя мы только продемонстрировать технику в районе S1, этот подход можно было бы использовать для расследования деятельности в других областях симметричного в живой мозг таких нейронов слоя V первичной моторной коры (M1). Замечания по реорганизации мозга может предоставить нейронных субстрат для адаптивной мотор, который играет решающую роль в посттравматические восстановления функции. Она также позволяет для хронических измерение симметричных активности клеток генетически выявленных во время поведение в голову Исправлена мышей.
Технически следователи следует уделять пристальное внимание к качеству и согласованности двойной черепной windows. Разбавлять череп черепа окна технику 12 настоятельно рекомендуется для начинающих на практике. Колючки являются отсеков кальция из-за их морфологии и местные механизмы приток и экструзии. В этом исследовании мы использовали B6. CG-Tg (Thy1– рекламы ЯФП) мышах HJrs/J в качестве примера для демонстрации дендритных позвоночника динамика в vivo (рис. 4). Открыть череп стекла окна Установка может привести к высокой позвоночника оборот и реактивной глиальных ответы после хирургии 12. В отличие от этого с техникой окно разбавлять череп, колючки и дендритов могут быть хорошо сохранились.
Выбор размеров и толщины оптических окон будет зависеть желаемого поля зрения, кривизны черепа, черепа толщина и тип изображений 13. Недостаточное давление оптических coverglasses на дура может вызвать утолщение Дура, отрастания черепа и увеличение мозга движения. В отличие от избыточного давления оптического coverglasses могут препятствовать корковых кровотока.
Оптические окна Ассамблеи клей и вылечить дополнительные слои coverglasses, один за один раз с оптическим клей и длинноволновых ультрафиолетового света. Чтобы помочь укреплению клеевое соединение, теплые окна изготовлены (50 ° C за 12 ч) в инкубаторе. Хранить coverglass оптическое окно в этанол 70% (vol/vol) и до операции, промойте его с стерильного физиологического раствора. Оптические окна необходимо изучить на недостатки (например, неправильное количество оптических выравнивание клей или неточной) под стереоскоп перед использованием, чтобы избежать неудачи. Если оптический клей слишком тонкий, воздушные пространства может быть увеличилась, могут вызвать оптических аберраций или Стекло покровное отряд в имплантации. Напротив слишком много оптических клей может вызвать переполнение прошлое края окна черепной.
Таким образом, здесь мы опишем экспериментальной процедуры для измерения динамики кальция или дендритных морфологии черепа окон от 2 симметричный первичной соматосенсорной коры регионов в Thy1-GCaMP6s и Thy1– рекламы ЯФП трансгенных мышей, соответственно с помощью микроскопии 2P. Этот метод может значительно облегчить, пройдя сложные структурные и функциональные отношения нейронных сетей.
The authors have nothing to disclose.
Мы очень благодарны Wenbiao Ган (Скирболл институт, Кафедра физиологии и неврологии, Нью-Йорк университета Школа медицины, США) за прекрасное техническое руководство и Патти Рали, медицинский редактор (Департамент нейрохирургии, Индиана Школа университета медицины), для редактирования рукопись. Мы благодарим доктор Jinhui Чен (Старк нейронаук научно-исследовательский институт, Университет Индианы школа медицины, США) за предоставление B6. CG-Tg (Thy1– рекламы ЯФП) HJrs/J мышей. Эта работа частично поддержали Фонд директора больницы Цзинань военного региона хребтовые пла 2016ZD03 (XJL) и низ NS059622, NS073636, DOD CDMRP W81XWH-12-1-0562, заслуги обзор премии I01 BX002356 от Департамента ветеранов США Дел, Крейг H Neilsen фонд 296749, Индиана спинного и головного мозга травмы исследовательский фонд, фонды пожертвований Mari Hulman Джордж (XMX).
C57BL/6J-Tg(Thy1-GCaMP6s)GP4.3Dkim/J | Jackson | 24275 | Can be any strains made by the genetically-encoded neuronal indicator and effector expressing the green fluorescent calcium indicator, GCaMP, in subsets of excitatory neurons in the cortex. |
B6.Cg-Tg(Thy1-EGFP)OJrs/GfngJ. | Jackson | 7919 | Can be any strains expressing EGFP in subsets of neurons within specific populations in the cortex; providing a bright, vital Golgi-like stain. |
Dumont no. 5 forceps, standard, Dumoxel | Fine Science Tools | 11251-30 | Can be any brand of choice. |
Dumont no. 5SF forceps | Fine Science Tools | 11252-00 | Can be any brand of choice. |
Micro Bead Sterilizer | Southern Labware | B1201 | Can be any brand of choice. |
Harishige’s SG-4N Head Holding Adaptor | Tritech Research | SG-4N | Can be any brand of choice. |
Ideal Micro-Drill Complete Kit | Harvard Apparatus | 72-6065 | Can be any brand of choice. |
Burrs for Micro Drill | Fine Science Tools | 19007-05 | Can be any brand of choice. |
Round cover glass, 3 mm | Harvard Biosciences | W4 64-0720 | Can be any brand of choice. |
Round cover glass, 5 mm | Harvard Biosciences | W4 64-0700 | Can be any brand of choice. |
Norland optical adhesive | Norland Products | 7106 | Can be any brand of choice. |
Loctite liquid super glue | WB Mason | LOC1647358 | Can be any brand of choice. |
Grip cement kit, powder and solvent | Dentsply | 675570 | Can be any brand of choice. Mix 5 parts of white dental cement powder (Grip Cement) with one part of black Tempera powder paint (to shield from light; some users prefer a 10:1 ratio). |
Gel foam | Moore Medical | 2928 | Can be any brand of choice. |
Micro dissecting scissors | Roboz | RS-5841 | Can be any brand of choice. |
Artificial cerebrospinal fluid (ASF) | – | – | The ACSF contains 125 mM NaCl, 4.5 mM KCl, 26 mM NaHCO3, 1.25 mM NaH2PO4, 2 mM CaCl2, 1 mM MgCl2 and 20 mM glucose. Bubble the ACSF with oxygen (95% oxygen, 5% carbon dioxide) and adjust the pH to 7.4. Prepare fresh ACSF solution before every experiment. |