This protocol describes a system architecture for performing automated small volume (0.15–1.5 ml) particle separations using a microfluidic device, and discusses methods to optimize acoustofluidic device performance and operation.
Mikroakışkan cihazların en büyük avantajı, böylece reaktif atık azaltılması ve değerli örneği koruyarak, küçük bir örnek hacimleri işlemek için yeteneğidir. Bununla birlikte, dayanıklı örnek düzenlemesi elde etmek için bu makro ölçekli bir ortamda cihaz entegre gidermek için gereklidir. Mikroakışkan cihazlar ile tekrarlanabilir, hassas partikül ayrımı gerçekleştirmek için, bu protokol mikroakışkan cihazlar kullanarak 0,15-1,5 ml numune hassas işlenmesini sağlayan tam otomatik ve entegre bir platform mikroakışkan sunar. Bu sistemin önemli yönleri kapalı döngü örnek toplama, sistem temizliği ve tekrarlanabilir şekilde çalışmasını sağlamak için gerekli adımları emişli gerçekleştirir modüler cihaz düzeni ve bağlantıları çip, güvenilir ve esnek dünyada sonuçlanan sağlam fikstür ve tam otomasyonlu sıvı taşıma içerir. Farklı mikroakışkan cihazları bu mimari ile birbirlerinin yerine kullanılabilir. Burada bir acoustofluidic cihazı dahil, detay onun characteriztirme, performans optimizasyonu ve biyolojik numunelerin boyut ayrılması için kullanımını göstermektedir. Ayırma deneyler sırasında gerçek zamanlı geri bildirim kullanarak, numune toplama korumak ve örnek konsantre optimize edilmiştir. Ekipmanın çoklu parçalar entegrasyonu gerektiren rağmen, bu mimarinin avantajları hiçbir ek sistem optimizasyonu, cihaz değiştirme kolaylığı ve hassas, sağlam numune işleme ile bilinmeyen örnekleri işlemek için yeteneği vardır.
Örnek ayırma ve fraksiyonlara mikrosıvı teknolojiler için uygulamanın en umut verici alanlarından biridir. Böyle bir numune alma basamaklar etkili klinik teşhis, tedavi geliştirme, Biyodenetleme çabaları ve yaşam bilimleri araştırma ve teknolojinin ilerlemesi için ayrılmaz bir parçasıdır. Bir sayısız mikroakışkan ayırma stratejileri yanı sıra kimyasal ve biyolojik türler için sıvı askıya partikül ve kolloidler için ortaya konulmuştur; 9 – Birkaç yorum bu alanlarda 1 son ilerleme ve gelişmeler genel değerlendirme. (Bundan sonra "Çekirdek Cihazlar" olarak anılacaktır), bu mikroakışkan ayırma teknolojilerin çok yoğun, özelliği olmakla birlikte, çok az sayıda rapor bir sistem seviyesinde örneği ayırma problemi üzerinde durmuştur. Çekirdek Cihazları tipik bir deplasman veya basınç pompası tarafından teslim sıvıyla florpolimer boru arabirim bireysel santimetre ölçekli cips, vardır.Numune hacimlerindeki otomasyonu, güvenilirlik ve azalma artmış dahil – – Mikroakiskan vaadi varsa Ancak, en azından denk bir çaba Çekirdek Cihaz entegre edilmiş olan tam bir ayrılık sisteminin tasarımına adamış olmalıdır, gerçeklik olmaktır .
Buna ek olarak, biodetection için mikroakışkan yaklaşımlar için büyük bir sorun mikro arayüzü makro. Bu ~ macroscale bileşenleri bir mikroakışkan cihazın fiziksel "dünya-to-çip" bağlantıları ve tipik klinik veya analitik numune hacimleri (~ 0.1-10 ml) ve mikroakışkan cips iç hacmi arasındaki uyumsuzluğu (değil sadece anlamına gelir 0,01-10 ul), aynı zamanda bu büyüklük ölçekleri köprü kaynaklanan istatistiksel örnekleme sınırlamaları. Bu konular örnek ön-işleme ve hazırlama biodetection "zayıf halka" olduğu algısının katkıda bulunur. 10 Bu çalışmada ta açıklanan platformuBu zorlukların ele yönünde kes önemli adımlar.
Bir sistem düzeyinde görünümünü alarak, bu protokol ~ 10 dakika timescales üzerinde (0.15 ila 1.5 ml arasında değişen) hassas ölçülü analitik ölçekli hacimlerinin güvenilir işleme ayrıntıları. Bu "tek tuşla" operasyonu: fraksiyon koleksiyonu için örnek ve hedef şişeleri içeren kaynak flakon sistemi içine yerleştirilir kez "run" komutu işlemini başlatır ve tüm adımlar bilgisayar kontrollü vardır. Bir Uygulamanın sonunda, toplama şişeler ayrılan fraksiyonların alt analizi için sistemden çıkarılabilir.
Bu sistemde Çekirdek Cihaz örnekten memeli hücre büyüklüğünde (5-20 mikron) partikülleri ayıklayan bir acoustophoresis çip. Acoustophoretic ayrılması o yüksek verimli olmasından dolayı burada seçilir, etiket içermeyen ve temassız, böylece canlı Viru ayıran avantajları sunan (ul / dk 100'ler kadar)Birkaç diğer mikroakışkan teknikler maç hücrelerden ses. 13 ve bu protokolün odak değil, altında yatan kavramların kısa bir özetini mikroakışkan ayrılık uygulamayı anlamakta yardımcı olmak için aşağıda – akustik parçacığın fiziği yaygın, 11 tarif edilmiştir odaklama.
Sıvı dolu Mikrokanallarda rezonansa Ultrason duran dalgalar alçak basınç düğümler doğru parçacıkları sürücü kuvvetlerin doğuran basınç alanları üretmek. Kuvveti büyüklüğü odaklama akustik ideal ölçekli hücre (~ 7-15 ayrılması için uygundur, parçacığın hacmine bağlıdır ve bu gibi, göreli yoğunluklar ve parçacığın sıkıştınlabilme türetilen akustik kontrast faktörü ve süspansiyon sıvısı. 14 Virüs boyutlu (~ 50-200 nm) parçacıklardan um). Daha büyük parçacıklar bir basınç düğüm doğru göç; Ancak, kuvvet büyüklüğü beri için çok küçükdaha küçük 2-3 mikron, bu küçük parçacıklar veya çözünmüş türlerin neredeyse hiç hareket parçacıklar. Akustik ayırma Bizim özel uygulama, daha önce tarif edildiği gibi, 15 kanalının alt bölümlere ayırmak için sıvı ince bir duvar içerir ve ayarlanabilir, odaklama pozisyonda asimetrik yerleşimi sağlar. Bu cihaz tasarımında esneklik katar ve performans avantajları da dahil artmış ayırma kalitesi ve hızı-olan tam başka nitelendirdi. 16,17
Ancak, bu çalışmada açıklanan sistem düzeyindeki tasarım yaklaşımı önemli bir avantajı mikroakışkan Çekirdek Cihazları büyük bir çeşitliliği adapte olmasıdır. Uygun düzenlemeler giriş / çıkış konfigürasyonu değişiklikleri hesaba yapılan, örneğin, atalet, akış alanı ayırma, deterministik yanal olarak yer değiştirmesine (DLD) ve elektrokinetik cihazın farklı türleri dahil olmak üzere diğer pek çok sürekli akış ayırma modu, hali hazırda, dahil edilebilir , akış hızları,ve numune hacimleri. Çeşitli on-chip alanlarının türleri (elektrik, manyetik) veya degradeler (termal, kimyasal) olan cihazlar bu platform barındırmaktadır çip ya da ek donanım entegrasyonu, ek bağlantı gerektirebilir.
Bu protokol, mikroakışkan ayırma cihazı tasarımı ve gravür ve pasivasyon döngüleri alternatif derin ulaşmak için kullandığı birçok mikroimalat tesislerinde (derin reaktif iyon dağlama ulaşabilirsiniz Drie, plazma oyma işlemi silikon cam yongaları üretmek için gerekli adımları sağlar Dikey yan duvarları 18) ile özellik. Sonra, acoustofluidic cihazın karakterizasyonu ayrılması için optimum çalışma parametrelerini belirlemek için, ve nihayet detay tam entegre ayrıştırma sistemi ve biyolojik numunelerin işlenmesi için prosedürü açıklar. Tipik cihaz karakterizasyon sonuçları ve örnek işleme verileri daha sonra sunulmuş ve tartışılmıştır ve bu beğenme önemli avantajları vardırach modülerlik, sağlamlık, hassasiyet ve otomasyon dahil vurgulanır.
Bu protokol otomatik biyolojik numune işlem gerçekleştirmek için macroscale ekipman mikroakışkan cihazların sistem düzeyinde entegrasyonu sunuyor. Bu platformun modülerliği bir örnek olarak, sunulan protokol karakterize bir acoustofluidic partikül ayırma cihazın performansını optimize odaklanmaktadır, herhangi bir sürekli akış cihaza adapte olmasını sağlar ve. Bu protokolün üç önemli avantajları vurgulanır: (i) modülerlik ve chip-to-dünyanın cihaz performansında (ii) sağlam karakterizasyonu ve partikül ayrılması için hassas olarak ölçülmüş numune hacimleri (iii) otomatik işleme, arabirim.
ben. Modülerlik ve chip-için-dünya arabirim
Şekil 2 de gösterildiği gibi, mikroakışkan çip kolayca doğrudan gözlem için bir mikroskop sahneye uygun özel bir delikli tahta üzerine monte edilir. Breadboard 5 mm-pitch ızgara, ena üzerinde # 6-40 UNF dişli delikler içeriyorçip bling güvenli olması için, ve sıvı bağlantıları yapılacaktır. Sıvı bağlantıları işlenmiş uçları ile tüpler PEEK olan bir lastik yüz sızdırmazlık conta ve paslanmaz çelik bilezikli akışkan çip karşı hangi mühür. Bu arayüz düzeni kolay çip değişimi ve hızlı cihaz yeniden tasarımı, az gerektiren veya diğer sistem bileşenlerine hiçbir değişiklik sağlanan çip ayak izleri ızgara biçimine uygun hale getirir. Örneğin, sürekli akış elektroforezi, termal hücre erimesi, kimyasal sentezi için reaktif 29 hızlı karıştırma ve tek hücreli yakalama ve sorgulama için mikroakışkan çipleri ile bu platformu kullandık.
ii. Cihaz performansı Sağlam karakterizasyonu
Herhangi bir mikroakışkan ayırma cihazının performansını optimize etmek amacıyla, operasyon ilk olarak iyice karakterize edilmelidir. Burada anlatılan sistem bunu yapmak için hızlı ve otomatik protokollerin gelişimini destekler. Belirli examp içinakustik odaklama cihazları, odaklama kalite, çalışma frekansı ve mikroakışkan kanal odaklı partiküllerin pozisyon le, her bir cihaz için ölçülmelidir. Bu ölçümler, piezoseramik sürücü frekansları, gerilim ve akım oranları aralığı boyunca süpürme gerektiren yüksek kaliteli ayrılması için en uygun parametre kombinasyonları belirlemek için. Sunulan protokol otomatik olarak bu ayarlanabilir parametreleri değişir ve veri-alakalı yakalar, yani post-işlenmiş kalite, sıklığını ve pozisyon (Şekil 3) odaklama parçacığın gerekli ölçümleri oluşturmak için vardır kanalda akan parçacıkların floresan görüntüler.
Akustik cihaz performansı tam karakterizasyonu tekrarlayan Adımlar 4.4 ve farklı deneysel koşullar altında gerektiği gibi 4.5 gerektirir. Örneğin, bir çip mutlak odaklama pozisyonu nispeten düşük debiler ve yüksek gerilim frekans tarama çalıştırarak bulunurs düğümü yere tam göçü sağlamak. Ayrıca, bu tür frekans taramaları (bilinen boyutta polistiren boncuklar ile çalışacak) cihazı montaj kalitesini değerlendirmek, ya da (bir çip boncuklar ile karakterize edilmiştir sonra) önceden bilinmeyen parçacık tipi sisteminde nasıl davranacağını belirler. Kötü enerji transferi olanlar bile odak olmaz ise mikroakışkan kanala piezo seramiği iyi bir enerji transferi ile bir çip, dar yüksek debilerde (> 1 ml / dak) ve düşük gerilim (12-15 V pp) de odaklama neden olacaktır Düşük debilerde (<100 ul / dak) ve yüksek gerilim (> 20 V pp) de. Biz mikroakışkan yonga ve piezo seramiği arasında yakın temas sıvısı içine enerji transfer verimi için kritik olduğunu bulduk. Yüksek performanslı cihazların güvenilir üretim sağlayacak mikroakışkan çip ve Piezo seramik yapıştırma optimal yöntemi daha fazla araştırma.
Son olarak, tam birBir acoustophoretic aygıtın operasyon resmi mikro-küreleri ile yapılan ayırma deneyler, Aşama 4 (Şekil 3), ilgili çalışma parametrelerinin bir fonksiyonu olarak DPT ve LPO toplanan parçacık sayısı ile görüntü-bazlı frekans tarama ölçümlerinin bir araya getirilmesiyle elde edilebilir Şekil 6'da gösterildiği gibi, Aşama 5'de olduğu gibi, otomatik deney gibi bir dizi hızlı bir şekilde partikül ayrılması için bir cihazı çalıştırmak için uygun bir parametre alanı kullanıcıya bildiren tek bir aygıtın performansı ve ayarlanabilirliği, karakterize edilebilir.
iii. Parçacık ayrılması için otomatik küçük örnek işleme
Başarılı ve doğru mikroakışkan çipli örnek işleme için, güvenilir ve hassas ölçüm, yük, teslim ve onlar geçerken sıvı hacimleri toplamak için kritik öneme sahiptir. Örnek hacmi küçük olduğu zaman bu hassasiyet özellikle önemlidirKlinik veya araştırma laboratuvar ortamlarında yaygındır (~ 0.1-1 ml). 30 Hassas numune alma sırasında numunenin hiç geribildirim ile bir cihazın içine şırınga ve infüzyon içine numune elle çekilmesi istihdam geleneksel mikroakışkan deneylerde zorlu ayrılmış vardır ve toplanan edilmelidir zaman. Sunulan protokol örneği bobin yükleme otomatik bünyesinde bulundurmaktadır ve küçük örnek hacimlerinin tekrarlanabilir ayrımlarını sağlamak için akış sensörleri gerçek zamanlı geribildirim ile birleştiğinde dağıtma.
Şekil 5, tipik bir ayırma deneyi ile ilgili DPT ve LPO ölçülen akış profillerini göstermektedir. İlk olarak, en az 35 ul lider tampon numunesi akustik çip ulaşmadan önce istikrarlı akışını sağlamak için yüklenir. Nedeniyle önde gelen tampon örnek seyreltme aşırı olur çünkü 100 ul daha az örnek hacimleri, bu sistem yapılandırması için tavsiye edilmez. Bir hava fişi th başında kullanılanönde gelen tamponu önce e enjeksiyon karıştırma ve numune seyreltme ve akış sensörleri bir göstergesi olarak hizmet önlenmesi, aşağıda sıvıdan örnek fişi ayırmak için. Akışkan olarak ilk geçici sistemi ile hareket başlar sonra, her iki satış keskin başak sinyalleri ilk hava kabarcığı geçişini gösterir. Numune, sistem üzerinden ikinci hava kabarcığı geçer sonra başka başak ve şırınga pompası durduktan sonra sıfıra akış hızında nihayet nihai bir azalma akarken bu geçici kararlı akış uzun bir süre tarafından takip edilmektedir.
Akış sensörleri ile hava fişler geçişi dolayısıyla olmayan numune sıvı hacimleri ile kayıp numune ve seyreltme minimize başlangıç ve örnek toplama durdurmak için vanaları geçmek için tetik noktalar olarak kullanılır. Işlenmiş örnek hacimlerinin Kapalı döngü ölçüm öncesinde deney girdi örnek değiştiğinde her zaman başlamasından bu değerleri yeniden programı gereksinimini ortadan kaldırır. Bu özelliközellikle önemli numune hacmi çok klinik örnekleri için, örneğin, sınırlı olduğunda. Gerçek zamanlı akış izleme de sorun giderme yardımcı olur; (örneğin, bir yapışmasına neden çıkışları birinde oluşturan) fakir bir çalışma Şekil 5b gibi, elde edilen akım profillerinden derhal açıktır.
Esneklik ve acoustofluidic ayırma etkinliğini sunulan sistem mimarisi ile arıtılmış, NV ve GGV virüs stokları göstermek için mikroakışkan çip yoluyla hücre stokları çivili ve işleme ile ayrılmıştır. Şekil 7a, Raji hücreleri 97 gibi virüslerden iyi ayrılmış olduğunu göstermektedir çip çıkan Raji hücrelerin% 'si ve böylece DPT DENV bir zenginleştirilmiş örnek bırakarak LPO olduğu tespit edilmiştir. Buna karşılık, NV ayırma verimliliği DENV% 70 DPT bulunan çip çıkarken ile düşüktü. Bu separati sarım tarafından uyarılan küçük bir konvektif karıştırma atfedilebilirkanalda, ancak LPO içine Raji hücreleri ile birlikte göç bazı NV parçacıkların daha yatkın. Akıcılık arasında yanal göç Hücreler bile düşük Reynolds sayısı az, onlarla bazı sıvıyı sürükleyin. Bu mekanizma, aynı zamanda spesifik olmayan yüzey adsorpsiyonunun, viral partiküller LPO içine aktarın. Baştan sıralama tespit etmek ve virüsleri tanımlamak için kullanılır Bununla beraber, DPT DENV oldukça zenginleştirilmiş örneği, örneğin, önemli bir avantajdır.
Şekil 7b, bir deney vadede, çip çıkan Boa hücrelerin sadece yaklaşık% 70 Raji hücreleri için yaklaşık% 100 ayırma verimliliği ile karşılaştırıldığında, LPO bulundu göstermektedir. Bu nedenle daha küçük bir akustik kuvvetlerinde ortaya çıkan, Raji hücreleri ile karşılaştırıldığında, iki hücre tipleri arasında ayrım performans farkı daha küçük bir ortalama boyutu ya da boa hücre düşük yoğunluğuna atfedilebilir. Bu varsayımları, Boa büyüklüğü, yoğunluğu ve morfolojisi onaylamak veya reddedeceksüspansiyon halindeki hücreler (normal olarak yapışık büyüdüğü) Boa hücrelerinin doğru bir ileri araştırmalar için bir çaba ölçülmelidir. Aynı deneylerde, benzer DENV ile deneyler, kurtarıldı GGV toplu viral fraksiyonun bir zenginleşme gösteren DPT çıktı.
Sunulan veriler biyolojik örneklerin çeşitli işlemek için mühendislik geniş uygulanamaz platformların doğal zorlukları vurgulayın. Önemlisi, biyolojik etkileşimler, fiziksel ve mekanik etkilere gibi büyük bir rol oynamaya başlayabilirsiniz. Ancak, bu ön deneyler de güç ve klinik ve araştırma uygulamalarında örnek işleme için bu sistem mimarisini kullanan sözünü göstermektedir. Sağlam, iyi karakterize mühendislik sistemi olarak bu platform yeni bilimsel sorulara cevap aramaya yeteneği sağlar.
The authors have nothing to disclose.
This work was performed under the auspices of the U.S. Department of Energy by Lawrence Livermore National Laboratory under Contract DE-AC52-07NA27344, and partially supported by LLNL’s Laboratory Directed Research and Development (LDRD) program, 14-LW-077. The authors thank Michael Wilson, Mark Stenglein and Joe DeRisi at the Univeristy of California, San Francisco for generously providing GGV and Boa cell samples. EJF acknowledges support from the LLNL Lawrence Scholar Graduate Program. MS acknowledges support from the UC Office of the President Lab Fees Research Program. LLNL-JRNL-665235
Materials required for Steps 1-3: Device Design, Fabrication and Assembly | |||
Double Sided Polished Silicon Wafer | Silicon Quest International, Inc. San Jose, CA, USA | 100 mm <100> prime wafer | 1-20 ohm-cm, 495 +/- 25µm Double-side polished |
Glass Wafer | Bullen Ultrasonics, Eaton, OH, USA | 100mmx0.5mm Boro | |
Photoresist, AZ 1518 | MicroChemicals GmbH, Ulm, Germany | AZ 1518 | Photoresist used to adhere wafer to blank wafer for DRIE etching |
Photoresist, AZ 4620 | MicroChemicals GmbH, Ulm, Germany | AZ 4620 | Photoresist to define fluidic and via mask patterns |
DRIE plasma etcher | STPS, Newport, NP, United Kingdom | Multiplex Advance Oxide Etch (AOE) ICP system | |
Wafer Bonder | Electronic Visions Group, St.Florian am Inn, Austria | EVG 501 | |
Dicing saw | Kulicke & Soffa Industries, Singapore | K&S 982 | |
Epoxy kit | Epoxy Technology, Billerica, MA, USA | EPO-TEK 301 | Epoxy used to couple piezo and microfluidic chip |
PZT piezoceramic | Piezo Systems, Woburn, MA, USA | PSI-5A4E | 37.5 × 10 × 0.5 mm |
28 AWG Kynar-insulated solid wire | Squires Electronics, Cornelius, OR, USA | UL1422 | |
2-part silver epoxy | MG Chemicals, Surrey, BC, Canada | 8331 | Conductive adhesive for attaching wire leads to PZT |
L-edit | Tanner EDA, Monrovia, CA, USA | Ledit v15.1 64-bit | CAD software for mask layout |
Materials required for Step 4: Characterizaiton of Acoustic Focusing Performance | |||
Dual Pump | Harvard Apparatus, Holliston, MA, USA | PHD ULTRA Series, 703007 | |
5ml syringes | Becton-Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA | 309646 | |
Luer to Threaded port adapter | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-659 | Connects syringe to tubing |
Union | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-623 | Connects world to chip connections to fluoropolymer tubing. Can also use webbed |
Ferrule 1/4-28 flat bottom | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-200 | Used with nut to make connections between tubing and syringe, flow sensors and world to chip hardware |
Nut 1/4-28 flat bottom | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | P-202 | Used with ferrule to make connections between tubing and syringe, flow sesnsors and world to chip hardware |
1/16" OD Fluoropolymer tubing | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1912L | Tubing to connect syringe pumps to world to chip connections. Tubing size is not critical during claibration steps (.01-.03" ID typically used, other suitable part numbers: 1907L, 1902L). |
Small ID fluoropolymer tubing | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1476-20 | Used for Flow restrictors: 0.006" ID, 1/16" OD FEP |
PEEK tubing | Connects from chip to fluoropolymer tubing. | ||
Cooling fan | Multicomp, Leeds, England | MC19663 | |
Function Generator | Agilent, Santa Clara, CA, USA | 33220A | |
RF amplifier | ENI, Rochester, NY | 325 LA | Must be able to amplify signals from <1V in the range of 1-2MHz to 25 Vpp to the piezo. |
CCD Camera | Photometrics, Tucscon, AZ, USA | CoolSnap HQ | |
Inverted Microscope | Zeiss, Oberkochen, Germany | Axiovert S100 | |
FITC filter set | Chroma Tech, VT, USA | SP101 | |
Objective, 10x | Zeiss, Oberkochen, Germany | ACHROPLAN | |
Oscilloscope | Tektronix, Beaverton, OR, USA | TDS3014B | To monitor voltage output by RF amplifier |
MatLab | Mathworks, Natick, MA, USA | R2014a | |
Driver interface software to integrate Photometrics camera with LabVIEW | R Cubed Software, Lawrenceville, NJ, USA | SITK | |
Tween 20 | Sigma Aldrich, St. Lousi, MO, USA | P9416 | |
Dragon Green Fluorescent 5.76 or 7.32 µm Beads | Bangs Laboratory, IN, USA | FS06F | |
Additional materials required for Step 5: Automated Separation | |||
Multiport valves | VICI, Houston, TX, USA | C25Z-3180EUHA | In the current configuration 4 valves are needed |
Flow Sensors | Sensirion, Westlake Village, CA, USA | SLI-1000 | |
Fluoropolymer tubing, .01 and .03" ID | IDEX, Oak Harbor, WA, USA | 1902L and 1912L | High purity PFA preferred |
Nut | VICI, Houston, TX, USA | ZN1PK-10 | Used with ferrule to make connections between tubing and valves. Alternative part numbers: MZN1PK-10, LZN1PK-10 |
Ferrule | VICI, Houston, TX, USA | ZGF1PK-10 | Used with nut to make connections between tubing and valves. |
LabVIEW | National Instruments, Austin, TX, USA | LabVIEW Professional Development system | Laboratory Automation Software |
PBS | Teknova, Hollister, CA, USA | P0200 | |
Raji Cells | ATTC, Manassas, VA, USA | CCL86 | |
Boa Cells | Kindly provided by the DeRisi Laboratory at UCSF | ||
GGV | Kindly provided by the DeRisi Laboratory at UCSF | ||
DENV | Kindly provided by Jose Pena at LLNL | ||
Coulter Counter Z2 | Beckman Coulter, Brea, CA, USA | Z2 | |
Hemacytometer | Fisher Scientific, Waltman, MA, USA | 0267151B |