التحضير والتصوير، والكمي لالسطحية الجرثومي على الحركة فحوصات
Summary
Swarming motility is influenced by physical and environmental factors. We describe a two-phase protocol and guidelines to circumvent the challenges commonly associated with swarm assay preparation and data collection. A macroscopic imaging technique is employed to obtain detailed information on swarm behavior that is not provided by current analysis techniques.
Abstract
الحركة سطح البكتيرية، مثل يحتشدون، يتم فحص عادة في المختبر باستخدام المقايسات لوحة التي تستلزم تركيزات محددة من أجار وأحيانا إدراج العناصر المغذية المحددة في وسط النمو. إعداد هذه الوسائط صريحة وظروف النمو سطح يعمل على توفير الظروف المواتية التي تسمح نمو البكتيريا وليس فقط ولكن الحركة منسقة من البكتيريا على هذه الأسطح ضمن الأفلام السائل رقيقة. استنساخ لوحة سرب وغيرها من المقايسات لوحة حركية سطح يمكن أن يكون تحديا كبيرا. خاصة بالنسبة للأكثر "swarmers المعتدلة" التي تظهر حركية فقط ضمن نطاقات أجار 0.4٪ -0.8٪ (وزن / المجلد)، تغييرات طفيفة في بروتوكول أو بيئة معملية يمكن أن تؤثر بشكل كبير نتائج الفحص سرب. "بلل"، أو محتوى الماء في واجهة السائل الصلبة في الهواء من هذه المقايسات لوحة، وغالبا ما يكون متغير رئيسي أن يكون للرقابة. تحديا إضافيا في تقييم يحتشدون هو كيفية قياس سالخلافات bserved بين أي اثنين (أو أكثر) التجارب. نحن هنا التفاصيل بروتوكول مرحلتين تنوعا لإعداد المقايسات وصورة سرب. نحن وتشمل المبادئ التوجيهية للتحايل على التحديات المرتبطة عادة مع إعداد وسائل الاعلام سرب الفحص النوعي والكمي لبيانات من هذه المقايسات. ونحن على وجه التحديد إظهار أسلوبنا باستخدام البكتيريا التي تعبر عن صحفيين الجيني الفلورسنت أو إضاءة الحيوية مثل الأخضر بروتين فلوري (GFP)، و luciferase (لوكس الاوبرون)، أو البقع الخلوية لتمكين التصوير الضوئي الوقت الفاصل بين. علينا أن نظهر كذلك قدرة لدينا وسيلة لتتبع المتنافسة يحتشدون الأنواع في نفس التجربة.
Introduction
العديد من أنواع البكتيريا تتحرك على الأسطح باستخدام مختلف وسائل الدفع الذاتي. بعض الظواهر الحركة يمكن البحث في المختبر باستخدام المقايسات لوحة التي تتأثر البيئة السائلة المرتبطة شبه صلبة تكوين لوحة الفحص. مجموعة فرعية من سطح مفيدا المقايسات لوحة حركية أخرى تنطوي على هواء الغرفة الغاز مراحل عادة. وفقا لذلك، ونتائج معين أي فحص الحركة السطح، يتطلب مراقبة دقيقة واجهة من ثلاث مراحل: سطح صلب البيئي المحلي والبيئة السائلة، وخصائص البيئة الغاز.
ومن المعروف أن وضع الحركة الأكثر دراسة عادة في مثل هذا الفحص من ثلاث مراحل كما يحتشدون. يحتشدون الحركة هي الحركة مجموعة منسقة من الخلايا البكتيرية التي تدفعها سياط من خلال الأفلام السائل رقيقة على السطوح 1. وعادة ما درسه في المختبرات باستخدام المقايسات لوحة شبه صلبة تحتوي على 0.4٪ -0.8٪ (وزن / المجلد) أجار 1. مجموعة منمسببات الأمراض البشرية تستغل هذا السلوك الحركة لاستكشاف واستعمار المضيف البشري. على سبيل المثال، يستخدم المتقلبة الرائعة يحتشدون حركية لنقل ما يصل مجرى البول، ووصلت واستعمار المثانة والكلى 2. ويعتبر يحتشدون حركية عموما خطوة تمهيدية لتشكيل بيوفيلم، والسبب الرئيسي لالمرضية في كثير من مسببات الأمراض البشرية 3.
النمط الظاهري يحتشدون متنوع للغاية بين الأنواع البكتيرية. نجاح التجريبية والتكاثر تعتمد بقوة على عوامل مثل تكوين المغذيات، نوع أجار وتكوينها، بروتوكول التعقيم (على سبيل المثال، التعقيم)، علاج وسائل الإعلام شبه صلبة، والرطوبة المحيطة (على سبيل المثال، والتغيرات الموسمية)، من بين أمور أخرى 3-5. تباين ردود حركية سطح يؤكد على التحديات التي واجهتها في هذه الدراسات ووسائل الإعلام تأثير كبير والبيئة يمكن أن تمارس. بالنسبة لبعض الأنواع يحتشدون، مثل الزائفة، يحتشدون يذكرهيمكن أن يحدث ility على مجموعة متنوعة من التراكيب وسائل الإعلام، على الرغم من أن النمط الظاهري المرصود والمصاحبة معدل التوسع سرب سوف تختلف اختلافا كبيرا 3. ويمكن الجمع بين هذه العوامل تجعل دراسات الحركة سطح صعبة للغاية. تغيرات موسمية داخل المختبر يمكن أن تؤثر هذه المقايسات ثلاث مراحل: المقايسات قد تعمل على نحو أفضل في الهواء الرطبة من الصيف وأسوأ في الهواء الجاف من الشتاء. هنا نقدم المبادئ التوجيهية العامة للتحايل بعض من أبرز التحديات عند تنفيذ الدراسات سطح لوحة حركية.
وبالنسبة لبعض الدراسات حركية السطح، وتطوير الظواهر المحددة هي ذات أهمية كبيرة. معظم، ولكن ليس كل شيء، الدراسات المنشورة لدراسة يحتشدون من P. الزنجارية تظهر تشكيل المحلاق أو فركتلات يشع من مركز التلقيح 3-9. الاختلافات بين P. وقد تم توثيق سلالات الزنجارية 5،8، ولكن الكثير من وجود أو عدم وجود المحلاق يمكن أن يعزى إلى specifiج المتوسطة وبروتوكول يستخدم لهذه المقايسات لوحة سرب الحركة. نحن هنا تتضمن تفاصيل حول كيفية تعزيز أسراب تشكيل حالق لP. الزنجارية. لأن P. الزنجارية هي مجرد واحدة من العديد من أنواع البكتيريا يحتشدون، ندرج أيضا تفاصيل عن طريقة لدينا لدراسة يحتشدون من العصوية الرقيقة ومزلق من المكورة المخاطية زانثس. مثل P. الزنجارية، والبحث الحالي على B. الرقيقة وM. زانثس يمتد مجموعة من الموضوعات مثل الباحثين يعملون على تمييز جوانب تبوغ، حركية، استجابة الإجهاد، والسلوك الانتقالي 1،10. هناك حاجة لتحديد الأنماط وديناميات سلوك معين (ق) لهذه الخلايا في مجموعات يحتشدون.
الحصول على البيانات الحركة السطح، ويمكن تحليل، وتفسير تكون مرهقة والنوعي. لقد قمنا بتطوير بروتوكول لتحليل العيانية مفصل لأسراب البكتيرية التي توفر بالإضافة إلى سرب التشكل منطقة والصورةإيزي (على سبيل المثال، قطر)، المعلومات الحيوية الكمية المتعلقة معدل التوسع سرب وتوزيع المنتجات الحيوية البكتيرية أو الكثافة 7. وعلاوة على ذلك، يمكن لهذا الأسلوب الاستفادة من البروتينات المتاحة الفلورسنت، والتلألؤ، والأصباغ للحصول على رؤية شاملة من التفاعلات البكتيرية 8، وكذلك لتتبع تركيب المنتجات الحيوية (على سبيل المثال، rhamnolipid P. الزنجارية 7،8) ضمن سرب.
Protocol
Representative Results
Discussion
يمكن تحقيق يحتشدون استنساخه في المختبر أن يكون تحديا، والمقايسات سرب شديدة الحساسية للعوامل البيئية مثل الرطوبة والمواد المغذية المتاحة. الجانب الأكثر أهمية من سطح لوحة حركية الاختبار هو الرطوبة على سطح أجار. قبل التلقيح، يجب أن تكون وسائل الإعلام سرب الجاف بما يكفي لمنع الخلايا البكتيرية من السباحة عبر السائل السطح، ولكن لم يجف وذلك لمنع يحتشدون حركية 5. حضانة ينبغي أن يتم في بيئة رطبة بما فيه الكفاية: الرطوبة قليلة جدا يمكن أن يؤدي إلى جفاف الفحص من خلال الحضانة، بينما الكثير من الرطوبة يمكن أن يؤدي إلى سطح الاصطناعي أو مصطنعة الانتشار. ما لم حاضنة التي تسيطر عليها الرطوبة في متناول اليد، ويمكن الحاضنة ومختبر الرطوبة تختلف بشكل كبير. ونتيجة لذلك، خزان إضافي للمياه، المرطب، أو مزيل الرطوبة داخل الحاضنة قد تكون هناك حاجة لمنع أكثر من تجفيف أو تراكم الرطوبة الزائدة مع الحفاظ على تعصبإيف الرطوبة بالقرب من 80٪. الحفاظ على هذه الرطوبة المثالية قد تكون صعبة إذا كانت التغييرات الموسمية والرطوبة كبيرة. إذا كان هذا هو الحال، فإن بروتوكول سرب الفحص تتطلب بعض التعديلات لحساب التغيرات الموسمية في الرطوبة. لقد وجدنا أن تعديل وقت التجفيف وسائل الإعلام سرب هو أبسط وسيلة لضبط التغييرات الرطوبة الموسمية. مراقبة الرطوبة ثابتة، على حد سواء داخل وخارج الحاضنة، يوصى. وعلاوة على ذلك، فمن المستحسن أن الباحثين معايرة والتحقق من صحة من الصكوك، وحاضنات، والمقاييس، الخ الأخطاء الطفيفة كما هو الحال في درجة الحرارة، وحجم أو مبالغ مكونات وسائل الإعلام يمكن أن تؤثر استنساخ هذه المقايسات.
كما ينبغي الإشارة إلى أن نوع وحجم لوحة المستخدمة في الفحص يمكن أن تؤثر على لوحة الرطوبة، وبالتالي يحتشدون. لوحات محكم لا تنفيس قبالة الرطوبة الزائدة، وبالتالي تشجيع الحركة السباحة. في المقابل، لوحات مفتوحة الوجه تسمح الكثير من رطوبة من الفرار. طبق بيترييوفر بيئة مثالية لأنه منافس خارج ما يكفي من الرطوبة الزائدة لمنع السائل تتراكم، ولكن يحتفظ رطوبة كافية لمنع وسائل الإعلام من الجفاف. تفاصيل هذه الطريقة بروتوكول فحص الحركة السطحية التي تسمح للتصوير عالية الجودة. للحفاظ على أجار واضحة للأطباق بقطر 60 ملم التصوير تمتلئ 7.5 مل من وسائل الإعلام أجار. إذا لم يكن مطلوبا التصوير بالتفصيل، يمكن أحجام تصل إلى 20 مل أيضا تقديم نتائج قابلة للتكرار.
بينما يحتشدون حركية يمكن أن يتحقق على مجموعة واسعة من تركيزات آغار، ومجموعة الأمثل للأجار اللازمة ليحتشدون يعتمد على الأنواع. وعموما، تركيزات أعلى أجار تمنع يحتشدون حركية، وبالتالي الوقت اللازم لإنتاج AN-صورة جاهزة زيادات سرب. P. الزنجارية تكتظ عادة على تركيزات أجار بين 0.4-0.7٪ 1، ومع ذلك نجد أن يحتشدون الأمثل يحدث في نطاق أضيق بكثير (0،4-0،5٪). آخرون، مثل B. الرقيقة وS. المعويسرب عند 0.6٪ أجار، والضمة نظيرة الحالة للدم بنسبة 1.5٪ أجار 10. يتم تحديد تركيز أجار مطلوب أيضا حسب نوع ونوع من أجار. agars نقاء أعلى، مثل نوبل أجار، وتعزيز بقوة يحتشدون في P. ويفضل الزنجارية وأكثر من حبيبات أجار 13،14. ومع ذلك، هذه الإصدارات تنقيته من أجار هي أيضا أكثر عرضة للانتاج الكراميل خلال دورة التعقيم الأوتوكلاف. اعتمادا على الصك، و/ تعديل تسلسل التعقيم تقصير (لربما يغير من دورة العادم لمنع التعرض للحرارة لفترة طويلة) قد تكون هناك حاجة لإعداد وسائل الاعلام سرب باستخدام نوبل أجار.
تكوين وسائل الإعلام أيضا يلعب دورا في سرب النمط الظاهري لوحظ 3. P. عادة ما يتم تنفيذ الزنجارية الدراسات يحتشدون حركية باستخدام الحد الأدنى من وسائل الإعلام المغذيات. نحن نفضل فاب المتوسط 4،8 (مواد الجدول)، ولكن وسائل الإعلام الأخرى، مثل M9، LB، أو اختلافات طفيفة في وسائل الإعلام هذه الشائعة،وقد استخدمت بنجاح 9،15،16. وأفضل طريقة لتحقيق تشكيل حالق على FAB المتوسطة الحد الأدنى تستكمل مع الجلوكوز كمصدر للكربون والأحماض casamino (CAA)، ولكن من دون مصدر النيتروجين إضافية (أي، (NH 4) 2 SO 4) 6،13. إذا تشكيل حالق أو التشكل ليس هو المحور الرئيسي لهذه الدراسة، ثم FAB الحد الأدنى من المتوسط (مواد الجدول، الجدول 1) تخلو من الجهاز المركزي للمحاسبات يوصى بحيث آثار مصادر الكربون محددة و / أو مغذيات إضافية يمكن دراستها بالتفصيل. الأنواع الأخرى، مثل B. الرقيقة (المقدمة هنا)، هي swarmers تنوعا، وقادرة على يحتشدون على LB وأجار المحبب. هذه الأنواع سرب بسهولة، لا تتطلب سوى ~ 10 ساعة لتطوير سرب كامل. هذا المعدل يحتشدون بسرعة يجعل التالية من تطور سرب المحتمل أن تكون صعبة ولكن لدينا بروتوكول يجعل هذا ممكنا تتبع للغاية. القدرة على أداء سرب الوقت الفاصل بين التصوير توفر substanللمحاكمة سهولة في الحصول على البيانات سرب، ولا سيما من مثل هذا swarmers متعطشا.
ونحن نقدم قوية، شامل، والبروتوكول على مرحلتين والمبادئ التوجيهية التي تهدف إلى تعزيز التنفيذ واستنساخ البكتيريا البحوث الحركة السطحية وأكدت في المقام الأول الجوانب الهامة لدراسة بوساطة سوطي يحتشدون. تفاصيل هذا البروتوكول سرب فحص جوانب هامة من تكوين وسائل الإعلام والتعامل مع لوحات حركية سطح لتوفير قدر أكبر من الاتساق والتكاثر داخل وبين المجموعات البحثية. سيؤدي ذلك إلى تحسين أساس المقارنة بين الدراسات البحثية المختلفة. وبالإضافة إلى ذلك، فإن النهج المقدمة وبروتوكول يوفر وسيلة لجعل البحث على سطح يحتشدون وحركية أقل عرضة للتغيرات البيئية من خلال جعل الباحثون على علم بأن هذه العوامل تؤثر على عملهم وتوفير الحلول الممكنة (على سبيل المثال، كيف يمكن للتغييرات صغيرة في أجار تؤثر يحتشدون 4،5 ). وعلاوة على ذلك، قدم بروتوكول لتحديد جوانب العيانية من يحتشدون، ويوفر فرصة لقياس العديد من سمات النمو سطح البكتيريا التي كانت في السابق غير قابل للقياس.
نحن لم فحص كل البكتيريا متحركة السطح في تطوير هذا البروتوكول. على هذا النحو، فمن المتوقع أن سيطلب تعديلات بروتوكول للأنواع لم يقدم هنا. ويقتصر كفاءة هذا البروتوكول في إطار حدود المتأصلة في المعدات والمواد المستخدمة. على سبيل المثال، والدراسات المتعلقة درجة الحرارة ليست ممكنة حتى الآن مع محطة التصوير بروكر، منذ التحكم في درجة الحرارة ليست سمة من سمات المعدات. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن استخدام الأصباغ (مثل النيل الأحمر إلى وصمة عار rhamnolipids) على قيود الحركية وتركيز 8. هذه التقنية تعتمد بقوة على معالجة وتحليل الصور الرقمية. تحسين التشغيل الآلي لتحليل البيانات (على سبيل المثال، وذلك باستخدام وحدات الماكرو إضافية وظيفة البرنامج النصي في يماغيج) من شأنه أن يقلل من الوقت اللازم لتحليلوتوسيع فائدة البيانات. وأخيرا، نظرا لمتانة بروتوكول التصوير، وينبغي أن تهدف التطبيقات المستقبلية في توسيع هذه التقنية لدراسة السطوح نمو أقل موحدة التي هي أكثر أهمية على الأسطح مستعمرة من قبل البكتيريا المسببة للأمراض البيئية و.
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
وقدم الدعم الجزئي لهذا العمل من قبل المعهد الوطني للصحة (1R01GM095959-01A1 وR01GM100470، لMA وJDS) ومنحة مرفق الأساسية من معهد العلوم السريرية وبالحركة إنديانا (بتمويل جزئي من المعاهد الوطنية للصحة منحة # UL1 TR000006، ل JDS).
Materials
| Materials table | ||||
| Company | Catalog Number | Amount | Comments | |
| Reagentsa: | ||||
| FAB Minimal Media: | Prepare every ~4 weeks. Top to 1 L with nanopure H2O. | |||
| (NH4)2SO4 | Sigma | A4418 | 2 g | Not used in P. aeruginosa tendril formation studies. |
| Na2HPO4 x 7H2O | Sigma-Aldrich | S9390 | 9 g | |
| KH2PO4 | Sigma | P5655 | 3 g | |
| NaCl | BDH | BDH8014 | 3 g | |
| MgCl2 x 6H2O solution (198 g/L) | Fisher Scientific | M33 | 1 ml | |
| CaCl2 x 2H2O solution (14 g/L) | Fisher Scientific | C79 | 1 ml | |
| Trace metal solution (see below) | n/a | n/a | 1 ml | |
| Trace Metal Solution: | Top to 1 L with nanopure H2O. Maintain in a glass bottle, stirring and covered with foil. | |||
| CaSO4 x 2H2O | Sigma-Aldrich | 255548 | 200 mg | |
| MnSO4 x H2O | Sigma-Aldrich | M7634 | 20 mg | |
| CuSO4 x 5H2O | Fisher Scientific | C493 | 20 mg | |
| ZnSO4 x 7H2O | Sigma-Aldrich | Z4750 | 20 mg | |
| CoSO4 x 7H2O | Sigma-Aldrich | C6768 | 10 mg | |
| NaMoO4 x 2H2O | Sigma | S6646 | 10 mg | |
| H3BO3 | Fisher Scientific | A74 | 5 mg | |
| FeSO4 x 7H2O | Sigma-Aldrich | F7002 | 200 mg | |
| CTT Media: | Prepare as needed. Top to 100 ml with nanopure H2O. | |||
| Tris-HCl, 1 M solution (adjust to pH 8.0) | Amresco | 0234 | 1 ml | Prepare a 1 M stock solution in nano pure H2O. Adjust pH to 8.0 and filter sterilize (0.2 μm pore). |
| K2HPO4, 1 M solution (adjust to pH 7.6) | Sigma-Aldrich | P3786 | 0.1 ml | Prepare a 1 M stock solution in nano pure H2O. Adjust pH to 7.6 and filter sterilize (0.2 μm pore). |
| MgSO4 solution | Fisher Scientific | M65 | 0.8 ml | Prepare a 1 M stock solution in nano pure H2O. Filter sterilize (0.2 μm pore). |
| Casitone | BD Diagnostics | 225930 | 1 g | |
| Additional Reagents: | ||||
| LB Broth, Lennox | BD Diagnostics | 240230 | 2 % (wt/vol) | |
| D-(+)-Glucose | Sigma-Aldrich | G5767 | 30 mM for overnight broth cultures; 12 mM for swarm media | Prepare a 1.2 M filter sterilized stock solution in nano pure H2O. Add to media after autoclaving. |
| Casamino acids (CAA) | Amresco | J851 | 0.10 % (wt/vol) | Recommended for P. aeruginosa tendril formation studies. Add to media prior to autoclaving. |
| Agar, Noble | Sigma-Aldrich | A5431 | 0.45 % (wt/vol) | Preferred Noble agar for P. aeruginosa surface motility studies. Add to media prior to autoclaving. |
| Agar, Noble | Affymetrix | 10907 | 1.50 % (wt/vol) | Used in M. xanthus surface motility studies. Not recommended for P. aeruginosa motility studies. Add to media prior to autoclaving. |
| Agar, Granulated | Fisher Scientific | BP1423 | 0.60 % (wt/vol) | |
| Higgins Waterproof Black India Ink | Higgins | HIG44201 | 0.50 % (vol/vol) | Mix ink with inoculum to test swarm media surface moisture. |
| SYTO® 64 Red Fluorescent Nucleic Acid Stain | Invitrogen | S-11346 | Use 4 μl (for P. aeruginosa) or 8 µl (for M. xanthus) of SYTO® 64 per 100 ml of molten agar (added after autoclaving). | |
| Relevant Materials and Equipment: | ||||
| Petri dish, sterile, 150 mm x 15 mm (Dia.x H) | VWR | 25384-326 | ||
| Petri dish, sterile, 100 mm x 15 mm (Dia.x H) | VWR | 25384-342 | ||
| Petri dish, sterile, 60 mm x 15 mm (Dia.x H) | VWR | 25384-092 | ||
| In-Vivo Xtream | Bruker | Use for the macroscopic imaging of surface motility studies. http://www.bruker.com/products/preclinical-imaging/opticalx-ray-imaging/in-vivo-xtreme/overview.html | ||
| Bruker MI software | Bruker | http://www.bruker.com/fileadmin/user_upload/8-PDF-Docs/PreclinicalImaging/Brochures/MI-software-brochure.pdf | ||
| ImageJ software | NIH | http://imagej.nih.gov/ij/ | ||
| aSee MSDS of reagents for handeling and disposal information. | ||||
References
- Kearns, D. B. A field guide to bacterial swarming motility. Nature Reviews: Microbiology. 8 (9), 634-644 (2010).
- Burall, L. S., et al. et al.Proteus mirabilis. genes that contribute to pathogenesis of urinary tract infection: Identification of 25 signature-tagged mutants attenuated at least 100-fold. Infection and Immunity. 72 (5), 2922-2938 (2004).
- Shrout, J. D., et al. The impact of quorum sensing and swarming motility on Pseudomonas aeruginosa. biofilm formation is nutritionally conditional. Mol Microbiol. 62 (5), 1264-1277 (2006).
- Kamatkar, N. G., Shrout, J. D. Surface hardness impairment of quorum sensing and swarming for Pseudomonas aeruginosa. PLoS One. 6 (6), e20888 (2011).
- Tremblay, J., Déziel, E. Improving the reproducibility of Pseudomonas aeruginosa. swarming motility assays. Journal of Basic Microbiology. 48 (6), 509-515 (2008).
- Caiazza, N. C., Shanks, R. M., O’Toole, G. A. Rhamnolipids modulate swarming motility patterns of Pseudomonas aeruginosa. Journal of Bacteriology. 187 (21), 7351-7361 (2005).
- Du, H., et al. High density waves of the bacterium Pseudomonas aeruginosa. in propagating swarms result in efficient colonization of surfaces. Biophysical Journal. 103 (3), 601-609 (2012).
- Morris, J. D., et al. Imaging and analysis of Pseudomonas aeruginosa. swarming and rhamnolipid production. Appl Environ Microbiol. 77 (23), 8310-8317 (2011).
- Tremblay, J., Richardson, A. P., Lépine, F., Déziel, E. Self-produced extracellular stimuli modulate the Pseudomonas aeruginosa. swarming motility behaviour. Environmental Microbiology. 9 (10), 2622-2630 (2007).
- Partridge, J. D., Harshey, R. M. Swarming: flexible roaming plans. J Bacteriol. 195 (5), 909-918 (2013).
- Patrick, J. E., Kearns, D. B. Laboratory strains of Bacillus subtilis .do not exhibit swarming motility. Journal of Bacteriology. 191 (22), 7129-7133 (2009).
- . . Molecular Imaging. , (2014).
- Harshey, R. M., Matsuyama, T. Dimorphic transition in Escherichia coli. and Salmonella typhimurium.: surface-induced differentiation into hyperflagellate swarmer cells. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA. 91 (18), 8631-8635 (1994).
- Rashid, M. H., Kornberg, A. Inorganic polyphosphate is needed for swimming, swarming, and twitching motilities of Pseudomonas aeruginosa. Proc Nat Acad Sci U.S.A.. 97 (9), 4885-4890 (2000).
- Caiazza, N. C., Merritt, J. H., Brothers, K. M., O’Toole, G. A. Inverse regulation of biofilm formation and swarming motility by Pseudomonas aeruginosa. PA14. Journal of Bacteriology. 189 (9), 3603-3612 (2007).
- Kuchma, S. L., et al. Cyclic-di-GMP-mediated repression of swarming motility by Pseudomonas aeruginosa.: the pilY1. gene and its impact on surface-associated behaviors. J Bacteriol. 192 (12), 2950-2964 (2010).
