La disección e inmunohistoquímica de larva, pupa y adulto<em> Drosophila</em> Retinas
Summary
La<em> Drosophila</emRetina> es una red cristalina de tipo compuesto por un pequeño número de tipos de células que se generan de una manera estereotipada<sup> 1</sup>. Su docilidad al análisis genético sofisticado permite el estudio de complejos programas de desarrollo. Este protocolo describe disecciones e inmunohistoquímica de retinas en tres etapas de desarrollo discretos, con un enfoque en la diferenciación de los fotorreceptores.
Abstract
El ojo compuesto de Drosophila melanogaster se compone de alrededor de 750 omatidios (ojos unitarios). Cada ommatidium se compone de alrededor de 20 células, incluyendo las células secretoras de cono-lente, células de pigmento, una célula de cerdas y ocho fotorreceptores (RP) R1-R8 2. Los BPs tienen estructuras especializadas microvillar, los rhabdomeres, que contienen pigmentos sensibles a la luz, la rodopsina (RHS). Los rhabdomeres de seis rupias (R1-R6) forman un trapecio y contienen Rh1 3 4. Los rhabdomeres de R7 y R8 están situados en tándem en el centro del trapezoide y comparte el mismo camino de la luz. R7 y R8 RP estocásticamente expresan diferentes combinaciones de RHS en dos subtipos principales 5: En el subtipo 'p', p RH3 en R7s se acopla con Th5 en p R8s, mientras que en el subtipo 'y', Th4 en R7s y se asocia con RH6 en y r8s 6 7 8.
Especificación temprana de RP y desarrollo de omatidios comienza en el ojo larval-antenal disco imaginal, una monocapa de células epiteliales. Una ola de diferenciación barre a través del disco 9 e inicia el ensamblaje de células indiferenciadas en ommatidia 10-11. El R8 'célula fundador se especifica primero y recluta R1-6 y R7 12-14. Posteriormente, durante el desarrollo pupal, PR diferenciación conduce a amplios cambios morfológicos 15, incluyendo la formación de rhabdomere, sinaptogénesis y la expresión final rh.
En este protocolo, se describen métodos para disecciones de retina y de inmunohistoquímica en tres períodos definidos de desarrollo de la retina, que se pueden aplicar para abordar una variedad de cuestiones relativas a la formación de la retina y las vías de desarrollo. Aquí, nosotros usamos estos métodos para visualizar la gradual diferenciación PR a nivel de una sola célula en su totalidad larval monte, midpupal retinas y adultos ( <strong> Figura 1).
Protocol
Discussion
1. Solución de problemas
En nuestra experiencia, las disecciones requieren práctica (hasta varias semanas) y son facilitados por lograr una posición cómoda de la mano 21 descansando los codos y los antebrazos sobre la mesa y con los dedos en contacto con la placa de disección. De esta forma los dedos, los pulgares sólo el, índice y medio realizar movimientos sutiles.
Extracción de la lámina sin dañar los fotorreceptores es probablemente el paso …
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Este trabajo fue apoyado por una beca de Ehrman a HY. H., Jane Coffin Childs Memorial Fund para la beca de investigación postdoctoral médica a JJR, NIH subvención F32EY016309 a DV, una Beca Universidad de Nueva York Dean Disertación para DJ, NIH EY13010 GrantR01 para CD y una beca de la DFG a JR (RI 2208/1- 1). Damos las gracias a Nina Vogt y Boodram Pamela para comentarios sobre el manuscrito.
Materials
| Reagent | |||
| Phosphate-buffered saline (PBS1x, pH 7.4) | Sigma | Prepare 10x stock solution 20. Dilute with distilled water to obtain 1x PBS and store at room temperature. Cool on ice before dissections. | |
| Triton-X 100 | Sigma | 9002-93-1 | Caution: Irritant! Wear gloves. Prepare 50 ml 1xPBS with 0.3% Triton X-100 (PBST). Store at room temperature. |
| 37% formaldehyde solution | Fisher Scientific | F75P1GAL | Caution: Toxic, probable human carcinogen! Wear gloves. Before the fixation step, freshly prepare 3.7% solution in a chemical fume hood by diluting with PBS, store on ice. |
| 5% normal horse serum | Jackson Immuno Research | 008-000-001 | Prepare 5% v/v dilution in PBST. Store at four degrees. |
| Primary and secondary antibodies (e.g. Donkey anti-sheep Alexa Fluor 488, Donkey-anti rabbit Alexa Fluor 555, Donkey anti-mouse Alexa Fluor 647) | Invitrogen Molecular Probes | A11015 A31572 A31571 |
Dilute secondary antibodies 1:800 in PBST and store at four degrees. |
| Alexa Fluor 488 Phalloidin | A12379 | Dilute 1:100 in secondary antibody solution. | |
| Slowfade Gold Antifade reagent | Invitrogen Molecular Probes | S36936 | Mounting medium. Store at -20 degrees. |
| Glycerol | Fisher Scientific | G31-1 | For mounting. Prepare 10 ml of 50% dilution with distilled water, store at room temp. |
| CO2 | For anesthetizing adult flies. | ||
| Equipment | |||
| Two sharp forceps (Dumont #55) | Fine Science Tools | 11255-20 | |
| Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit | Dow Corning | Prepare Sylgard dissection dish by filling a plastic Petri dish with Sylgard mixture. | |
| Three-well glass dissection dishes | Fisher Scientific | 21-379 | |
| Two minutien dissecting pins (0.1 mm diameter) and two pinholders (12 cm) | Fine Science tools | 26002-10 | Insert one minutien pin in each of the two pinholders and bend one of the pins to form a hook. |
| Microscope cover slips (22×22-1 and 24×40-1) | Fisher Scientific | 12-542A | |
| Microscope slides (25x75x1.0 mm; precleaned) | Fisher Scientific | 12-550-143 | |
| 1.5 ml microcentrifuge tubes | |||
| Clear nail polish or Scotch tape | |||
| Orbital shaker | Bellco | ||
| Slide holder box | Fisher Scientific | ||
| Parafilm | Bemis | PM996 | |
| Thin paintbrush | |||
| P20 and P200 micropipettes and tips | |||
| Dissecting microscope | |||
| Small bucket with ice | For cooling the glass well plates, dissected retinas and solutions. |
References
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