Um método simples e rápido para determinar o potencial de sacarificação de um grande número de amostras de biomassa vegetal é descrito. A plataforma automatizada para esta análise envolve a preparação da biomassa de plantas para análise em 96 placas bem e do desempenho posterior de hidrólise pré-tratamento e quantificação dos açúcares liberados.
Polissacarídeos que compõem a biomassa vegetal lignocelulósica pode ser dividido para produzir uma variedade de açúcares que posteriormente podem ser utilizados no estabelecimento de uma biorefinaria. Essas matérias-primas que constituem uma nova plataforma industrial, que seja sustentável e carbono neutro, para substituir a actual dependência de combustíveis fósseis. A recalcitrância à desconstrução observado em materiais lignocelulósicos é produzido por várias propriedades intrínsecas das paredes celulares das plantas. Celulose cristalina é incorporado na matriz de polissacarídeos, tais como xilanas e arabinoxilanos, e toda a estrutura é envolto pela fenólicos polímero da lignina, que também é difícil de digerir 1. A fim de melhorar a digestibilidade dos materiais vegetais precisamos descobrir os principais gargalos para a sacarificação das paredes das células e também mutante tela e populações reprodutoras para avaliar a variabilidade na sacarificação 2. Estas tarefas requerem uma abordagem de alto rendimento e aqui apresentamos uma plataforma analítica que pode realizar a análise sacarificação em um formato placa de 96 poços. Esta plataforma foi desenvolvida para permitir o rastreamento de digestibilidade da lignocelulose de grandes populações de espécies de plantas variadas. Nós temos reduzido os volumes de reação para pré-tratamento gentil, hidrólise enzimática parcial de açúcar e determinação, para permitir que um grande número de ser avaliado rapidamente em um sistema automatizado.
Esta plataforma automatizada trabalha com quantidades de miligramas de biomassa, realizando moagem, sob condições controladas para reduzir os materiais vegetais a uma granulometria padronizada de forma reproduzível. Depois que as amostras são moídas, o robô automatizado dispensa a formatação quantidades especificadas e registradas de material nos poços correspondentes da placa de 96 poços profundos (Figura 1). Normalmente, nós dispensar o mesmo material em 4 poços de ter 4 repetições para análise. Uma vez que as placas são preenchidos com o material vegetal no layout desejado, eles são movidos manualmente para uma estação de manipulação de líquidos (Figura 2). Nesta estação as amostras são submetidas a um pré-tratamento leve com um ácido diluído ou alcalina e incubadas a temperaturas de até 90 ° C. A solução de pré-tratamento é posteriormente removida e as amostras são lavadas com tampão para devolvê-los a um pH adequado para a hidrólise. As amostras são então incubados com uma mistura de enzimas por um período de tempo variável, a 50 ° C. Uma alíquota é retirada do hidrolisado e os açúcares redutores são automaticamente determinados pelo método colorimétrico MBTH.
Variations of the standard saccharification protocol can be used in the same platform for determining the activity of cellulolytic enzymes (i.e. by variation of the enzyme concentrations used in a plate as well as using paper as substrate); comparison of the efficiency of several enzyme mixtures on a specific material; time course for saccharification; etc.
A standard saccharification protocol to compare the saccharification potential in different plant materials involves an eight hour hydrolysis (Figures 3 and 4). Most of the plant materials analysed requires four replicates. Under these conditions, the platform can process 80 samples/day. This analysis is being used to screen large populations of barley, maize, and brachypodium in order to establish variability in saccharification potential and the genes involved in its determination4.
The authors have nothing to disclose.
Os autores gostariam de agradecer A Viksø-Nielsen (Novozymes) para o dom das enzimas celulolíticas. Este trabalho foi financiado pelo FP7 RENOVAÇÃO e por projetos BBSRC BB/G016178 e BB/G016194.
Name of the reagent | Company | Catalogue number |
---|---|---|
Grinding & weighing robot | Labman Automation | |
2 ml micro tube with caps | Sarstedt Ltd | 72.694 |
5 mm stainless steel beads | Qiagen Ltd | 69989 |
1.2ml Abgene square well storage plates | Fisher Scientific Ltd | TUL-050-050C |
Whatman cap mat for 96 square well plates | Fisher Scientific Ltd | 7704-0104 |
Liquid hanling robot | Tecan Group Ltd. | Freedom Evo 200 |
Sulphuric acid | Fisher Scientific Ltd | S/9231/PB17 |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific Ltd | BPE359-500 |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | S8750-500G |
Acetic acid | Fisher Scientific Ltd | A/0420/PB17 |
Novozyme 188 | Novozyme | DCN00214 |
Celluclast 1.5L | Novozyme | CCN03122 |
96 well PCR full skirt plates | Sarstedt Ltd | 72.1980.202 |
D-Glucose | Fisher Scientific Ltd | G/0450/53 |
3-Methyl-2-benzothiazolinone hydrazone hydrochloride hydrate | Sigma-Aldrich | 129739-25G |
DL-dithiothreitol | Sigma-Aldrich | D9163-1G |
Corning microplate 96 well flat bottom | Fisher Scientific Ltd | TKT-521-050H |
Ammonium iron (III) sulfate dodecahydrate | Sigma-Aldrich | F1668-250G |
Sulfamic acid | Sigma-Aldrich | 242772-500G |
Hydrochloric acid | Fisher Scientific Ltd | 12462-0026 |