Een eenvoudige, snelle methode voor het bepalen van de versuikering potentieel van grote aantallen van plantaardige biomassa monsters is beschreven. De geautomatiseerde platform voor deze analyse heeft betrekking op de voorbereiding van de plantaardige biomassa voor analyse in platen met 96 putjes en de daaropvolgende prestaties van de voorbehandeling, hydrolyse en kwantificering van de vrijgekomen suikers.
Polysacchariden die make-up plant lignocellulose biomassa kan worden onderverdeeld in een reeks van suikers die vervolgens kan worden gebruikt in de oprichting van een bioraffinage te produceren. Deze grondstoffen zou een nieuwe industriële platform, dat zowel duurzaam en klimaatneutraal, om de huidige afhankelijkheid van fossiele brandstoffen te vervangen. De weerspannigheid aan deconstructie waargenomen in lignocellulose materiaal wordt geproduceerd door een aantal intrinsieke eigenschappen van plantaardige celwanden. Kristallijne cellulose is ingebed in een matrix Polysacchariden zoals xylans en arabinoxylanen, en de hele structuur wordt ingekapseld door de fenolische polymeer lignine, dat is ook moeilijk te verteren 1. Om de verteerbaarheid van plantaardige materialen die we nodig hebben om de belangrijkste knelpunten voor de versuikering van de celwanden en ook het scherm mutant en populaties broedvogels te ontdekken aan de variabiliteit te evalueren in versuikering 2 te verbeteren. Deze taken vereisen een hoge doorvoer benadering en hier presenteren we een analytisch platform dat versuikering analyse kan uitvoeren in een 96-well plaat formaat. Dit platform is ontwikkeld om de screening van lignocellulose de verteerbaarheid van grote populaties uit uiteenlopende plantensoorten mogelijk te maken. We hebben teruggeschroefd de reactie volumes voor zachte voorbehandeling, partiële enzymatische hydrolyse en suiker vastberadenheid, zodat grote aantallen snel worden beoordeeld in een geautomatiseerd systeem.
Deze geautomatiseerde platform werkt met milligram hoeveelheden biomassa, het uitvoeren van een kogelmolen onder gecontroleerde omstandigheden om de plant materialen terug te brengen tot een gestandaardiseerde deeltjesgrootte in een reproduceerbare manier. Nadat de monsters zijn grond, de geautomatiseerde opmaak robot uitdeelt gespecificeerd en opgenomen hoeveelheden materiaal in de overeenkomstige putten van 96 diepe put plaat (figuur 1). Normaal gesproken, we afzien van hetzelfde materiaal in vier putten te hebben vier replica voor analyse. Zodra de platen zijn gevuld met het plantmateriaal in de gewenste lay-out, worden ze handmatig verplaatst naar een liquid handling station (figuur 2). In dit station worden de monsters onderworpen aan een milde voorbehandeling met ofwel verdund zuur of alkalische en geïncubeerd bij temperaturen tot 90 ° C. De voorbehandeling oplossing wordt vervolgens verwijderd en de monsters worden gespoeld met buffer om hen terug te gaan naar een geschikte pH voor hydrolyse. De monsters worden vervolgens geïncubeerd met een enzym mengsel voor een variabele lengte van de tijd bij 50 ° C. Een deel wordt overgenomen uit het hydrolysaat en de reducerende suikers worden automatisch bepaald door de MBTH colorimetrische methode.
Variations of the standard saccharification protocol can be used in the same platform for determining the activity of cellulolytic enzymes (i.e. by variation of the enzyme concentrations used in a plate as well as using paper as substrate); comparison of the efficiency of several enzyme mixtures on a specific material; time course for saccharification; etc.
A standard saccharification protocol to compare the saccharification potential in different plant materials involves an eight hour hydrolysis (Figures 3 and 4). Most of the plant materials analysed requires four replicates. Under these conditions, the platform can process 80 samples/day. This analysis is being used to screen large populations of barley, maize, and brachypodium in order to establish variability in saccharification potential and the genes involved in its determination4.
The authors have nothing to disclose.
De auteurs willen graag een Viksø-Nielsen (Novozymes) bedanken voor de gave van de cellulolytische enzymen. Dit werk werd gefinancierd door KP7 VERNIEUWING en door BBSRC projecten BB/G016178 en BB/G016194.
Name of the reagent | Company | Catalogue number |
---|---|---|
Grinding & weighing robot | Labman Automation | |
2 ml micro tube with caps | Sarstedt Ltd | 72.694 |
5 mm stainless steel beads | Qiagen Ltd | 69989 |
1.2ml Abgene square well storage plates | Fisher Scientific Ltd | TUL-050-050C |
Whatman cap mat for 96 square well plates | Fisher Scientific Ltd | 7704-0104 |
Liquid hanling robot | Tecan Group Ltd. | Freedom Evo 200 |
Sulphuric acid | Fisher Scientific Ltd | S/9231/PB17 |
Sodium hydroxide | Fisher Scientific Ltd | BPE359-500 |
Sodium acetate | Sigma-Aldrich | S8750-500G |
Acetic acid | Fisher Scientific Ltd | A/0420/PB17 |
Novozyme 188 | Novozyme | DCN00214 |
Celluclast 1.5L | Novozyme | CCN03122 |
96 well PCR full skirt plates | Sarstedt Ltd | 72.1980.202 |
D-Glucose | Fisher Scientific Ltd | G/0450/53 |
3-Methyl-2-benzothiazolinone hydrazone hydrochloride hydrate | Sigma-Aldrich | 129739-25G |
DL-dithiothreitol | Sigma-Aldrich | D9163-1G |
Corning microplate 96 well flat bottom | Fisher Scientific Ltd | TKT-521-050H |
Ammonium iron (III) sulfate dodecahydrate | Sigma-Aldrich | F1668-250G |
Sulfamic acid | Sigma-Aldrich | 242772-500G |
Hydrochloric acid | Fisher Scientific Ltd | 12462-0026 |