Белки трансдукции позволяет прямой доставки биологически активных белков в клетки. В отличие от традиционных методов, таких как трансфекции ДНК или вирусной трансдукции этой неинвазивной парадигма позволяет высокоэффективных сотовых манипуляции в титруемой образом в обход сотового токсичность и риск онкогенных преобразование постоянного генетической модификации.
Техника белков трансдукции позволяет прямой доставки биологически активных веществ в клетках млекопитающих [см. обзор 1,2]. Для этого можно использовать translocating способность так называемого ячейки проникающих пептидов (ППС), также обозначается как белка трансдукции доменов (PTDs). TAT-CPP происходит от иммунодефицита человека вирусом типа 1 (ВИЧ-1) Tat (транс-активатор транскрипции) белок широко используется. Положительно заряженные ТАТ способствует клеточной проницаемости тем самым преодолевая барьеры клеточной мембраны путем эндоцитоза и / или прямое проникновение мембраны 2. В сочетании с сигнал ядерной локализации (NLS) слитые белки способны проникать ядра выставке функциональность. Наши видео-презентацию демонстрирует, как иллюстрация для инженерных клеточных белков проницаемой, строительства, производства и применения клеточных проницаемой версию ДНК-модифицирующие фермент Cre.
Cre является конкретным участкам рекомбиназы, который может распознавать и рекомбинировать 34 база сайтов пара loxP в клетках млекопитающих в пробирке и в естественных условиях. Поэтому Cre / loxP система широко используется для условного вызывать мутации в геноме живых клеток 3,4. Доставки активных Cre рекомбиназы к клеткам, однако, представляет собой ограничение.
Мы описываем системы pSESAME вектор, который позволяет прямое включение гена интересов, и предоставляет платформу для быстрого клона разных доменах и тегов, используемых в вектор в удобной и стандартизованным образом. Реорганизация различных тегов, как было показано изменение биохимических свойств белков слияния предоставление возможности для достижения более высокой урожайности и лучшей растворимости. Мы демонстрируем, как можно выразить и очистить рекомбинантных клеточных белков в проникающий и от кишечной палочки. Функциональность рекомбинантный белок Cre, наконец, утверждены в культуре клеток, оценивая его внутриклеточной активности рекомбиназы.
Во время процесса очистки слитый белок Cre важно не пропустить добавлением льда буфера холодной TBS перед центрифугированием. В противном случае Cre рекомбиназы имеет тенденцию осаждаться внутри глицерина буфера.
Если элюата фракция появляется, чтобы стать мутной из-за высокой концентрации гибридный белок дополнительного буфера элюирования следует добавить, пока раствор не прояснилось снова.
Применение 10 мкмоль белка слияния Cre обычно приводит к рекомбинации эффективность от 80 до 100%. Эмбриональной телячьей сыворотки (FCS) является одной из основных компонент среднего ячейки ES сильно подавляет белок трансдукции. Поэтому высокая концентрация Cre рекомбиназы должны были быть использованы. При работе в бессывороточной условиях меньше белка (0,5 – 2 мкм) может быть использован для достижения аналогичных эффективность рекомбинации.
С системой pSESAME вектор в стороны, можно применить технику белков трансдукции к другим белкам, включая транскрипционные факторы, такие как Oct4 и Sox2 7 и Scl/Tal1 8.
Мы благодарим Оливера Brüstle и всех членов инженерно стволовых клеток группы, Боннский университет, за поддержку и ценные обсуждения. Мы благодарим Сабина Шенк для подготовки SDS-PAGE и прочной поддержкой на протяжении всего проекта. Николь Руси и Анна Magerhans при условии, отличную техническую поддержку. Кроме того, мы хотели бы поблагодарить Андреаса и Шейла Бэр Мертенса для производства фильма. Эта работа была поддержана грантами фонда Фольксваген (Az I/77864) и германского министерства образования и научных исследований (BMBF, 01 GN 0813).
Material Name | Type | Company | Catalogue Number | Comment |
---|---|---|---|---|
TUNER (DE3) pLacI | Novagen | 70625 | ||
Glycerol | Carl Roth | 3783.2 | ||
Na2HPO4 | Roth | T876.1 | ||
Trizma Base | Sigma-Aldrich | T1503 | ||
HCl | Roth | 4625.1 | ||
Imidazol | Roth | X998.4 | ||
NaCl | Roth | 9265.2 | ||
Yeast Extract | Roth | 2363.4 | ||
Trypton/Pepton | Roth | 8952.4 | ||
K2HPO4 | Roth | P749.2 | ||
KH2PO4 | Roth | 3904.1 | ||
Ampicillin | Sigma | A9518 | ||
Carbenicillin | Sigma | 6344.2 | ||
HEPES | Sigma | H3375 | ||
Lysozyme | Sigma | 62971 | ||
Benzonase | Novagen | |||
L-Tartaric acid, disodium salt | Sigma | |||
50% Ni-NTA slurry | Invitrogen | R901-15 | ||
EconoPac columns | Biorad | 732-1010 | ||
Sterile filter 0,22μm | Whatman | |||
Paraformaldehyde (PFA) | Sigma | |||
LB medium | Yeast extract, Trypton/Pepton, NaCl | |||
TB medium | Yeast extract, Trypton/Pepton, Glycerol, K2HPO4, KH2PO4 | |||
Lysis Buffer | 50 mM Na2HPO4, 5 mM Tris, pH 7.8 | |||
Tartaric Salt Buffer (TSB) | PTB containing 2 M L-Tartaric acid, disodium salt, and 20 mM Imidazol | |||
Washing Buffer | PTB, 500 mM NaCl, 15 mM Imidazol | |||
Elution Buffer | PTB, 500 mM NaCl, 250 mM Imidazol | |||
High Salt Buffer | 600 mM NaCl, 20 mM HEPES, pH 7.4 | |||
Gylcerol Buffer | 50% glycerol, 500 mM NaCl, 20 mM HEPES, pH 7.4 | |||
TrypLE™ Express | Invitrogen | |||
ESGRO (LIF) | Millipore | |||
NEAA | Gibco | 11140035 | ||
L-Glutamin | Gibco | 25030024 | ||
β-Mercaptoethanol | Gibco | 31350010 | ||
DMEM | Gibco | 11960044 | ||
PBS | Gibco | |||
Fetal Calf Serum (FCS) | PAA | |||
X-Gal staining solution: | 4 mM K3(FeIII(CN)6), 4 mM K4(FeII(CN)6), 2mM MgCl2 0.4 mg/mL X-Gal solved in PBS |
|||
K3(FeIII(CN)6) | Sigma | P-3367 | ||
K4 (FeII(CN)6) | Sigma | P-9387 | ||
MgCl2 | Sigma | M8266 | ||
X-Gal | Sigma | B4252 |