Summary

تقليل نقص الأكسجة في شرائح فرس النهر من الكبار والشيخوخة الفئران

Published: July 02, 2020
doi:

Summary

هذا هو بروتوكول لإعداد شريحة حادة من الكبار والشيخوخة فرس النهر الماوس الذي يستفيد من الضخ عبر القلب وقطع شريحة مع الجليد البارد NMDG-aCSF للحد من الضرر نقص الأكسجة في الأنسجة. تبقى الشرائح الناتجة في صحة جيدة على مدار ساعات عديدة ، وهي مناسبة لـ Patch-clamp على المدى الطويل والتسجيلات الميدانية.

Abstract

وقد مكنت شرائح فرس النهر الحادة أجيال من علماء الأعصاب لاستكشاف خصائص متشابك، العصبية، والدوائر بالتفصيل وبدقة عالية. استكشاف LTP و LTD آليات، واحدة حساب تسخين الخلايا العصبية، والتغيرات التي تعتمد على الخبرة في الدوائر، لم يكن ممكنا بدون هذا الإعداد الكلاسيكي. ومع ذلك، مع بعض الاستثناءات القليلة، تم إجراء معظم البحوث الأساسية باستخدام شرائح فرس النهر الحادة باستخدام شرائح من القوارض من أعمار مبكرة نسبيا، ~ P20-P40، على الرغم من أن آليات الإثارة متشابك ومتأصلة لها ذيل التنموية الطويلة التي تصل إلى P60 الماضي. النداء الرئيسي لاستخدام شرائح فرس النهر الشباب هو الحفاظ على صحة الخلايا العصبية بمساعدة ارتفاع التسامح للأضرار نقص الأكسجة. ومع ذلك، هناك حاجة لفهم وظيفة الخلايا العصبية في مراحل أكثر نضجا من التنمية، وزيادة من خلال تطوير نماذج حيوانية مختلفة من الأمراض العصبية التي تتطلب إعداد الدماغ الشيخوخة. هنا وصفنا تعديلا لإعداد شريحة قرن آمون الحاد الذي يسلم بشكل موثوق شرائح صحية من فرس النهر الماوس الكبار والشيخوخة. الخطوات الحاسمة للبروتوكول هي الضخ عبر القلب والقطع مع الجليد الباردة خالية من الصوديوم NMDG-aSCF. معا، هذه الخطوات تخفيف انخفاض نقص الأكسجة الناجم عن ATP عند قطع الرأس، فضلا عن وذمة السامة للخلايا الناجمة عن تدفقات الصوديوم السلبية. نُوضِّفُ كيفية قصّ شرائح مُنَعَرِفِ مِنْ قرن آمون بالإضافة إلى قشرةِ قَدَسْةِ تَعْزِزِيْ بِنْفِرِةِ. شرائح فرس النهر الحادة التي تم الحصول عليها بهذه الطريقة صحية بشكل موثوق على مدى ساعات عديدة من التسجيل ، وهي مناسبة لكل من التسجيلات الميدانية والتسجيلات المستهدفة باللصقبص ، بما في ذلك استهداف الخلايا العصبية ذات التسمية الفلورية.

Introduction

وقد سهل ظهور الثدييات الاستعدادات شريحة الدماغ الحادة التجارب على المستوى الخلوية والتشابكية التي كانت ممكنة سابقا إلا في الاستعدادات اللافقارية مثل Aplysia1. وكان تطوير شرائح فرس النهر الحادة ذات أهمية خاصة، حيث أنها هيكل مسؤول عن تكوين الذاكرة والعمل والسياق، ولها دوائر ثلاثية متشابك متخصصة قابلة للتلاعب الفسيولوجي السهل. ومع ذلك ، فإن الغالبية العظمى من شرائح الدماغ الحادة لا تزال مستعدة من الفئران والجرذان الصغيرة نسبيا ، حيث أنه من الأسهل الحفاظ على الخلايا العصبية والدوائر الصحية ، وتبقى الشرائح قابلة للحياة لفترات أطول من الزمن2،3،4. هنا، نقدم تعديلات على بروتوكولات التقطيع القياسية التي تؤدي إلى زيادة جدوى شرائح قرن آمون الحادة من الفئران البالغة والشيخوخة.

العائق الرئيسي أمام قدرة الجسم الحي السابق على البقاء على المدى الطويل من الثديات الدماغ parenchyma هو الضرر hypoxic الأولية التي تحدث بسرعة بمجرد تدفق الدم إلى الدماغ يتوقف بعد قطع الرأس. فقدان الأكسجين النتائج في الاستهلاك الأيضي السريع من موارد الطاقة الرئيسية في الدماغ مع فقدان فوسفو الكرياتين (ف- الكرياتين) كونها أسرع، تليها الجلوكوز، الأدينوسين ثلاثي الفوسفات (ATP)، والجليكوجين4. الحفاظ على ATP له أهمية خاصة لصحة طويلة الأجل لشرائح الدماغ، كما هو مطلوب ATP للحفاظ على إمكانات الغشاء عبر ATPase نا-K، وبالتالي النشاط العصبي,6. مستوى ATP في الدماغ القوارض الكبار هو ~ 2.5 mM، ويسقط بشكل حاد داخل 20 ق من قطع الرأس للوصول إلى حالة ثابتة القاعدية (~ 0.5 mM) في حوالي 1 دقيقة بعد قطع الرأس4،7،8. في الحيوانات الصغيرة، يستغرق وقتا أطول لمراقبة نفس الانخفاض في ATP (~ 2 دقيقة)؛ مع التخدير الفينوباربيالي هو مزيد من تباطؤ إلى 4 دقيقة4. وتبين هذه الاعتبارات أن منع فقدان ATP وغيرها من موارد الطاقة هو استراتيجية ضرورية لمنع تلف نقص الأكسجة في الدماغ، وبدوره للحفاظ على صحة شرائح الدماغ على مدى فترات أطول من الزمن، وخاصة في الحيوانات البالغة.

انخفاض درجات الحرارة تبطئ عملية التمثيل الغذائي. وبالتالي، فقد ثبت أن انخفاض حرارة الجسم متواضعة يحمي احتياطيات الطاقة في الدماغ: في الحيوانات الصغيرة، وخفض درجة حرارة الجسم بمقدار ست درجات، من 37 درجة مئوية إلى 31 درجة مئوية، يحافظ على مستويات ATP إلى حوالي 80٪ من المستويات العادية على مدى 4 ساعة من نقص الأكسجة الخاضعة للرقابة9. كما يتم الحفاظ على مستويات P-الكرياتين، وكذلك احتمالية الفسفور الشامل9. وهذا يشير إلى أن خفض درجة حرارة الجسم قبل قطع الرأس يمكن أن يكون عصبيا، حيث يمكن الحفاظ على مستويات شبه طبيعية من ATP من خلال قطع شريحة وشريحة فترات الانتعاش.

إلى درجة أن قطرة ATP لا يمكن منعها تماما عند قطع الرأس، ومن المتوقع وظيفة ضعف جزئي من ATPase نا- K، تليها إزالة التلوث عن طريق تدفق الصوديوم السلبي. كما يتبع تدفق الصوديوم السلبي من خلال دخول المياه إلى الخلايا، فإنه يسبب وذمة السامة للخلايا وفي نهاية المطاف pyknosis. في الفئران البالغة، استبدال نا + الأيونات مع السكروز في حلول قطع شريحة كانت استراتيجية ناجحة لتخفيف عبء الوذمة السامة للخلايا10،11. في الآونة الأخيرة، وقد أظهرت الكاتيونات العضوية الميثيلية التي تقلل نفاذية قناة الصوديوم12 لتقديم حماية أكثر فعالية من السكروز، وخاصة في شرائح من الفئران الكبار، مع N-الميثيل-D-جلوكوامين (NMDG) يجري الأكثر انطباقا على نطاق واسع عبر مختلف الأعمار ومناطق الدماغ13،14،15،16.

العديد من بروتوكولات تشريح الدماغ تنطوي على استخدام درجات الحرارة الباردة فقط خلال خطوة قطع شريحة، وأحيانا في تركيبة مع نا+ استراتيجية استبدال الأيونات16،17. في الحيوانات الصغيرة ، يبدو أن هذه البروتوكولات توفر الحماية العصبية الكافية حيث يمكن استخراج الأدمغة بسرعة بعد قطع الرأس لأن الجمجمة لا تزال رقيقة وسهلة لإزالة3. ومع ذلك، هذه الاستراتيجية لا تنتج شرائح صحية من الحيوانات البالغة. مع مرور الوقت، أدخلت عدد من المختبرات التي تدرس القوارض البالغة الضخ عبر القلب مع محلول الجليد البارد لخفض درجة حرارة جسم الحيوان، وبالتالي تلف نقص الأكسجة في الدماغ، قبل قطع الرأس. تم تطبيق هذا الإجراء بنجاح لإنتاج شرائح cerebellar18، شرائح midbrain19، شرائح القشرة الجديدة11،20، القشرة الرحاين21، قرن آمون الفئران10،22،23، لمبة الشم24، المخطط البطيني25، القشرة البصرية26.

على الرغم من المزايا التي يوفرها الضخ عبر القلب وNa+ استبدال الأيونات في إعداد شرائح من الفئران وفي بعض مناطق الدماغ في الفئران، يبقى قرن الماوس قرن آمين واحدة من أكثر المناطق تحديا للحماية من نقص الأكسجة13،20. حتى الآن، واحدة من النهج الأكثر شيوعا لشرائح قرن آمون من الفئران الشيخوخة ونماذج الماوس من الانعزال العصبي ينطوي على تشريح سريع الكلاسيكية من فرس النهر المعزول27. في البروتوكول الموصوف هنا ، نحن نقلل من فقدان ATP في الدماغ البالغ من خلال إدخال انخفاض حرارة الجسم قبل قطع الرأس عن طريق ضخ الحيوان عبر القلب مع الثلج البارد Na+– السائل النخاعي الاصطناعي المجاني NMDG القائم على NMDG (NMDG-aCSF). ثم يتم قطع شرائح في الجليد الباردة نا+-خالية NMDG-aCSF. مع هذا البروتوكول المعزز نحصل على شرائح قرن آمون حادة من الفئران البالغة والشيخوخة التي هي صحية لمدة تصل إلى 10 ساعة بعد التقطيع ومناسبة لتسجيلات ميدانية طويلة الأجل ودراسات التصحيح المشبك.

Protocol

ويتم تنفيذ هذا البروتوكول وفقاً لدليل رعاية واستخدام الحيوانات المختبرية التابع للمعاهد الوطنية للصحة، وهو دليل أقرته لجنة الرعاية والاستخدام المؤسسية للحيوانات في جامعة ستانفورد. كما تتوافق الطرق مع سياسات جمعية علم الأعصاب بشأن استخدام الحيوانات والبشر في أبحاث علم الأعصاب. <p class="j…

Representative Results

طبقنا البروتوكول أعلاه لتوليد شرائح قرن آمون من CamKIIa-Cre+; WT الفئران على خلفية وراثية مختلطة C57Bl / 6 × SV / 129J، في P > 120. تظهر أعداد كبيرة من الخلايا الهرمية في حقل CA1(الشكل 2A)و subiculum(الشكل 2B)في تباين منخفض عندما لوحظ تحت المجهر التفاضلي للتباين تحت الحمراء (IR-DIC)، وهي ?…

Discussion

ويوضح البروتوكول الموصوف هنا أن شرائح فرس النهر التي تم الحصول عليها من الفئران البالغة والشيخوخة يمكن أن تظل صحية وقابلة للحياة لساعات عديدة بعد القطع. الشرائح المعدة باستخدام هذا البروتوكول مناسبة لتسجيلات اللصق، وكذلك التسجيلات الميدانية طويلة الأمد في مناطق CA1.

هناك خ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

أشكر الدكتورة كارلا ج. شاتز على المشورة والدعم، والدكتورة باربرا ك. بروت وميشيل ك. دريس على قراءة المخطوطة بشكل نقدي. ويدعم العمل المعهد الوطني للصحة EY02858 ومنح مؤسسة ماذرز الخيرية إلى المركز.

Materials

“60 degree” tool made in-house
#10 scalpel blade Bard-Parker (Aspen Surgical) 371110
1M CaCl2 Fluka Analytical 21114
95%O2/5%CO2 Praxiar or another local supplier
Acepromazine maleate (AceproJect) Henry Schein 5700850
Agar Fisher BP1423-500
Beakers, measuring cylinders, reagent bottles
Brushes size 00-2 Ted Pella Crafts stores are another source of soft brushes, with larger selection and better quality than Ted Pella.
CCD camera Olympus XM10
Choline bicarbonate Pfalz & Bauer C21240
Cyanoacrilate glue Krazy glue Singles
Decapitation scissors FST 14130-17
Feather blades Feather FA-10
Filter paper #2 Whatman Either rounds or pieces cut from a bigger sheet work well.
Forceps A. Dumont & Fils Inox 3c
Glass bubblers (Robu glass borosillicate microfilter candles) – porosity 3 Robuglas.com 18103 or 18113 Glass bubblers are more expensive than bubbling stones used in aquaria. However, they are easy to clean and sterilize, and can last a long time.
Glucose Sigma-Aldrich G8270
HCl Fisher A144SI-212
Ice buckets
KCl Sigma-Aldrich P4504
Ketamine HCl (KetaVed) VEDCO NDC 50989-996-06
KH2PO4 Sigma-Aldrich P0662
Leica Tissue slicer VT1000S The cutting settings are 1 mm horizontal blade amplitude, frequency dial at 9, and speed setting at 2
Magnetic stirrers and stir bars
Mg2SO4 x 7H2O Sigma-Aldrich 230391
MgCl2 Sigma-Aldrich M9272
MilliQ water machine Millipore Source for 18 Mohm water
Na-ascorbate Sigma-Aldrich A4035
Na-pyruvate Sigma-Aldrich P8574
NaCl Sigma-Aldrich S3014
NaHCO3 EMD SX0320-1
Needle 27G1/2
NMDG Sigma-Aldrich M2004
Paper tape
Peristaltic pump Cole-Parmer #7553-70
Peristaltic pump head Cole-Parmer Masterflex #7518-00
Personna blades Personna double edge Amazon
pH meter
Recovery chamber in-house made
Scalpel blade handle size 3 Bard-Parker (Aspen Surgical) 371030
Scissors angled blade FST 14081-09
Single edge industrial razor blade #9 VWR 55411
Spatulas
Transfer pipettes Samco Scientific 225
Upright microscope Olympus BX51WI
Xylazine HCl (XylaMed) VetOne 510650

References

  1. Glanzman, D. L. The cellular mechanisms of learning in Aplysia: of blind men and elephants. Biological Bulletin. 210 (3), 271-279 (2006).
  2. Aitken, P. G., et al. Preparative methods for brain slices: a discussion. Journal of Neuroscince Methods. 59 (1), 139-149 (1995).
  3. Edwards, F. A., Konnerth, A. Patch-clamping cells in sliced tissue preparations. Methods in Enzymology. 207 (13), 208-222 (1992).
  4. Lowry, O. H., Passonneau, J. V., Hasselberger, F. X., Schulz, D. W. Effect of Ischemia on Known Substrates and Cofactors of the Glycolytic Pathway in Brain. Journal of Biological Chemistry. 239, 18-30 (1964).
  5. Lipton, P., Whittingham, T. S. The effect of hypoxia on evoked potentials in the in vitro hippocampus. Journal of Physiology. 287, 427-438 (1979).
  6. Lipton, P., Whittingham, T. S. Reduced ATP concentration as a basis for synaptic transmission failure during hypoxia in the in vitro guinea-pig hippocampus. Journal of Physiology. 325 (1), 51-65 (1982).
  7. Free Mandel, P. H.S. Free nucleotides of the brain in various mammals. Journal of Neurochemistry. 8, 116-125 (1961).
  8. Andjus, R. K., Dzakula, Z., Markley, J. L., Macura, S. Brain energetics and tolerance to anoxia in deep hypothermia. Annals of the New York Academy of Sciences. 1048, 10-35 (2005).
  9. Williams, G. D., Dardzinski, B. J., Buckalew, A. R., Smith, M. B. Modest hypothermia preserves cerebral energy metabolism during hypoxia-ischemia and correlates with brain damage: a 31P nuclear magnetic resonance study in unanesthetized neonatal rats. Pediatric Research. 42 (5), 700-708 (1997).
  10. Gasparini, S., Losonczy, A., Chen, X., Johnston, D., Magee, J. C. Associative pairing enhances action potential back-propagation in radial oblique branches of CA1 pyramidal neurons. Journal of Physiology. 580 (3), 787-800 (2007).
  11. Thomson, A. M., Bannister, A. P. Release-independent depression at pyramidal inputs onto specific cell targets: dual recordings in slices of rat cortex. Journal of Physiology. 519 (1), 57-70 (1999).
  12. Hille, B. The permeability of the sodium channel to organic cations in myelinated nerve. Journal of General Physiology. 58 (6), 599-619 (1971).
  13. Ting, J., Daigle, T., Chen, Q., Feng, G., Martina, M., Taverna, S. . Patch-Clamp Methods and Protocols. 1183, 221-242 (2014).
  14. Jiang, X., et al. Principles of connectivity among morphologically defined cell types in adult neocortex. Science. 350 (6264), 1-10 (2015).
  15. Djurisic, M., Brott, B. K., Saw, N. L., Shamloo, M., Shatz, C. J. Activity-dependent modulation of hippocampal synaptic plasticity via PirB and endocannabinoids. Molecular Psychiatry. 24 (8), 1206-1219 (2019).
  16. Djurisic, M., et al. PirB regulates a structural substrate for cortical plasticity. Proceedings of the National Academy of Sciences U S A. 110 (51), 20771-20776 (2013).
  17. Vidal, G. S., Djurisic, M., Brown, K., Sapp, R. W., Shatz, C. J. Cell-Autonomous Regulation of Dendritic Spine Density by PirB. eNeuro. 3 (5), 1-15 (2016).
  18. Blot, A., Barbour, B. Ultra-rapid axon-axon ephaptic inhibition of cerebellar Purkinje cells by the pinceau. Nature Neuroscience. 17 (2), 289-295 (2014).
  19. Lammel, S., Ion, D. I., Roeper, J., Malenka, R. C. Projection-specific modulation of dopamine neuron synapses by aversive and rewarding stimuli. Neuron. 70 (5), 855-862 (2011).
  20. Ting, J. T., et al. Preparation of Acute Brain Slices Using an Optimized N-Methyl-D-glucamine Protective Recovery Method. Journal of Visual Experiments. (132), e53825 (2018).
  21. Moyer, J. R., Brown, T. H. Methods for whole-cell recording from visually preselected neurons of perirhinal cortex in brain slices from young and aging rats. Journal of Neuroscience Methods. 86 (1), 35-54 (1998).
  22. Losonczy, A., Magee, J. C. Integrative properties of radial oblique dendrites in hippocampal CA1 pyramidal neurons. Neuron. 50 (2), 291-307 (2006).
  23. Frick, A., Magee, J., Johnston, D. LTP is accompanied by an enhanced local excitability of pyramidal neuron dendrites. Nature Neuroscience. 7 (2), 126-135 (2004).
  24. Alvarado-Martinez, R., Salgado-Puga, K., Pena-Ortega, F. Amyloid beta inhibits olfactory bulb activity and the ability to smell. PLoS One. 8 (9), 75745 (2013).
  25. Brooks, J. M., O’Donnell, P. Kappa Opioid Receptors Mediate Heterosynaptic Suppression of Hippocampal Inputs in the Rat Ventral Striatum. Journal of Neuroscience. 37 (30), 7140-7148 (2017).
  26. Goel, A., Lee, H. K. Persistence of experience-induced homeostatic synaptic plasticity through adulthood in superficial layers of mouse visual cortex. Journal of Neuroscience. 27 (25), 6692-6700 (2007).
  27. Mathis, D. M., Furman, J. L., Norris, C. M. Preparation of acute hippocampal slices from rats and transgenic mice for the study of synaptic alterations during aging and amyloid pathology. Journal of Visual Experiments. (49), e2330 (2011).
  28. Izumi, Y., Zorumski, C. F. Neuroprotective effects of pyruvate following NMDA-mediated excitotoxic insults in hippocampal slices. Neuroscience Letters. 478 (3), 131-135 (2010).
  29. Hajos, N., Mody, I. Establishing a physiological environment for visualized in vitro brain slice recordings by increasing oxygen supply and modifying aCSF content. Journal of Neuroscience Methods. 183 (2), 107-113 (2009).
  30. . Hippocampus Rat Available from: https://synapseweb.clm.utexas.edu/hippocampus-rat (1999)
  31. Combe, C. L., Canavier, C. C., Gasparini, S. Intrinsic Mechanisms of Frequency Selectivity in the Proximal Dendrites of CA1 Pyramidal Neurons. Journal of Neuroscience. 38 (38), 8110-8127 (2018).
  32. Rothman, S. M. The neurotoxicity of excitatory amino acids is produced by passive chloride influx. Journal of Neuroscience. 5 (6), 1483-1489 (1985).

Play Video

Cite This Article
Djurisic, M. Minimizing Hypoxia in Hippocampal Slices from Adult and Aging Mice. J. Vis. Exp. (161), e61377, doi:10.3791/61377 (2020).

View Video