Summary

التفكك الحاد من الجلكى الشبكي المحاوير لتمكين تسجيل من الإصدار الوجه غشاء من محطات قبل المشبكي الوظيفية الفردية

Published: October 01, 2014
doi:

Summary

Recording Ca2+ currents at the presynaptic release face membrane is key to a precise understanding of Ca2+ entry and neurotransmitter release. We present an acute dissociation of the lamprey spinal cord that yields functional isolated reticulospinal axons, permitting recording directly from the release face membrane of individual presynaptic terminals.

Abstract

انتقال متشابك هو عملية سريعة للغاية. إمكانات العمل مدفوعة تدفق الكالسيوم 2+ في محطة قبل المشبكي، من خلال قنوات الكالسيوم الجهد بوابات (VGCCs) الموجود في غشاء الوجه الإفراج عنهم، هو على الزناد لانصهار حويصلة والافراج عن العصبي. حاسمة بالنسبة لسرعة انتقال متشابك هو التزامن المكاني والزمني بين وصول إمكانات العمل، VGCCs وآلية إطلاق ناقل عصبي. القدرة على تسجيل مباشرة الكالسيوم 2+ التيارات من الغشاء الإفراج وجه محطات قبل المشبكي الفردية أمر حتمي لفهم دقيق للعلاقة بين الكالسيوم قبل المشبكي 2+ وإطلاق ناقل عصبي. الوصول إلى غشاء قبل المشبكي الإفراج الوجه لتسجيل الكهربية غير متوفر في معظم الاستعدادات والكالسيوم قبل المشبكي 2+ تميزت الدخول باستخدام تقنيات التصوير وmeasureme الحالي العيانيةاليلة – التقنيات التي ليس لديها قرار زمني يكفي لتصور دخول الكالسيوم 2+. لم يكن توصيف VGCCs مباشرة في محطات قبل المشبكي واحدة ممكن في نقاط الاشتباك العصبي المركزي وتمت حتى الآن تحققت بنجاح إلا في الكأس من نوع المشبك من العقدة الهدبية وفرخ في كؤوس زهرية الفئران. عالجنا هذه المشكلة بنجاح في المشبك الشبكي العملاق من الحبل الشوكي الجلكى من خلال تطوير إعداد فصلها تماما من الحبل الشوكي يمكن أن ينتج محاور الشبكي المعزولة مع محطات قبل المشبكي وظيفية خالية من الهياكل بعد المشبكي. يمكننا تسمية fluorescently وتحديد محطات قبل المشبكي الفردية واستهدافهم للتسجيل. باستخدام هذا الإعداد، واتسمت VGCCs مباشرة في وجه الافراج عن محطات قبل المشبكي الفردية باستخدام المناعية والكهربية النهج. وقد سجلت كاليفورنيا 2+ التيارات مباشرة في إطلاق الوجه غشاء سمحطات قبل المشبكي فردية جمعة، أول مثل هذا التسجيل التي يتعين الاضطلاع بها في نقاط الاشتباك العصبي المركزي.

Introduction

انتقال متشابك هو عملية سريعة ودقيقة للغاية. العمل غزو محتمل من المحطة قبل المشبكي يؤدي إلى فتح VGCCs تقع في الغشاء الإفراج جهه، والزيادة الناتجة في كاليفورنيا قبل المشبكي 2+ بوصفها الزناد عن الانصهار الحويصلة والعصبي الإفراج 1. كل هذه الخطوات تحدث داخل مئات ميكروثانية وبالتالي تتطلب اقتران مكاني ضيق من VGCCs إلى حويصلة الانصهار الآلات 3. وقد تميزت الكالسيوم قبل المشبكي 2+ تدفقات المقام الأول من خلال النهج التصوير باستخدام الأصباغ الكالسيوم 2+ الحساسة 4. دمج الكالسيوم 2+ المخازن المؤقتة التي تعدل الكالسيوم في الخلايا العصبية قبل المشبكي 2+ وقد استخدم لتوصيف غير مباشر العلاقة بين الكالسيوم والنقل العصبي قبل المشبكي 3. بالإضافة إلى ذلك، تحوير قبل المشبكي مجانا كا 2+ تركيز الكالسيوم عن طريق uncaging 2+ 5 أو تسجيل macroscopiج كا استخدمت 2+ التيارات جنبا إلى جنب مع التدابير الانصهار الحويصلة و / أو الإطلاق. مثل قياسات السعة 2 6 أو بعد المشبكي الردود على معالجة نفس السؤال. ومع ذلك، تميز كا 2+ التيارات مباشرة في وجه الإفراج عنهم، وقسم متخصص للغشاء قبل المشبكي حيث تتم ترجمة الاستقطاب في غشاء الكالسيوم 2+ التيارات اثار الانصهار حويصلة متشابك وإطلاق ناقل عصبي، هو جزء لا يتجزأ من الحصول على قياس دقيق لكا 2+ شرط حويصلة متشابك الانصهار. وبالإضافة إلى ذلك، فإن القدرة على تميز مباشرة الكالسيوم 2+ التيارات في محطات قبل المشبكي فردية، إلى جانب قياسات دقيقة في وقت واحد الانصهار حويصلة والافراج يسمح التوضيح الدقيق للعلاقة بين توقيت مدار الساعة من إمكانات العمل، قبل المشبكي الكالسيوم 2+ الحالية، الانصهار حويصلة والافراج عنهم. الوصول إلى غشاء الإفراج الوجهغير متوفرة في معظم محطات قبل المشبكي المقرر ان تغلق بدل من التشعبات بعد المشبكي. وكانت هذه صعوبة الوصول عقبة رئيسية في توصيف VGCCs لأنه يمنع القياسات المباشرة الحالية في محطات قبل المشبكي فردية. وحتى الآن لم توصيف المباشر من قبل المشبكي الكالسيوم 2+ التيارات في محطات قبل المشبكي فردية ممكن في نقاط الاشتباك العصبي المركزي، وقد تتحقق إلا في اثنين من نوع كأسي محطات قبل المشبكي. الكأس من نوع المشبك من فرخ العقدة الهدبية 7-10 والفئران الكؤوس 11،12. في جميع محطات قبل المشبكي الأخرى بما في ذلك المشبك الشبكي العملاق في الجلكى الحبل الشوكي 13، وعدم الوصول إلى غشاء قبل المشبكي الإفراج الوجه وقد استلزم استخدام الأساليب غير المباشرة مثل التصوير الكالسيوم 2+ لدراسة الكالسيوم قبل المشبكي 2+ التدفقات.

<img alt="الشكل 1" fس: محتوى العرض = "5in" src = "/ الملفات / ftp_upload / 51925 / 51925fig1highres.jpg" "500" />
الرقم 1. الجلكى المشبك الشبكي العملاق. (أ) عبر قسم من الجلكى الحبل الشوكي مما يدل توجيه ظهراني البطني. وتتميز محاور الشبكي مع أستريكس الأخضر (ب) إعادة الإعمار 3-D من المشبك الشبكي في النخاع الشوكي الجلكى تظهر المحوار قبل المشبكي الشبكي جعل العديد أون الاتصالات بسنت (تميزت السهام الخضراء) على عصبون بعد المشبكي 13. وقد وصفت محطات قبل المشبكي مع اليكسا فلور 488 هيدرازيد phalloidin مترافق (الأخضر)، بينما يتم شغل عصبون بعد المشبكي مع اليكسا فلور 568 هيدرازيد (الحمراء).

محاور الشبكي الجلكى العملاقة، وتقع في المنطقة البطنية من النخاع الشوكي مواز للمحور منقاري الذيلية-1A الشكل، شكل متعددة أون الاتصالات متشابك بسنت على الخلايا العصبية للالشوكي القرن البطني الشكل 1B 14 13. وقد سجلت العيانية خلية كاملة الكالسيوم 2+ التيارات من محاور الشبكي في النخاع الشوكي سليمة 13،15. ومع ذلك، محاولات عمياء السابقة في القياس المباشر من الكالسيوم أثبتت 2+ التيارات في محاور الشبكي في الجلكى الحبل الشوكي سليمة باستخدام الخلية المرفقة تقنية المشبك التصحيح الفاشل 13 بسبب عدم وجود الوصول إلى غشاء قبل المشبكي الإفراج الوجه بسبب العمليات بعد المشبكي معارضة الشكل 1B. غشاء الإفراج وجه أحرز في السابق الوصول إليها عن طريق إزالة الخلايا العصبية بعد المشبكي 11، اضطراب الميكانيكية المشبك قبل تسجيل 12 أو المعالجة الأنزيمية إلى جانب التفكك الميكانيكية 16. نظرا لمنظمة معقدة من الحبل الشوكي، فإنه يكون من الصعب للغاية تحديد الخلايا العصبية بعد المشبكي وسحب ذلك ميكانيكيا أو التشويش عشرالبريد المشبك. ومن هنا، قررنا استخدام المعالجة الأنزيمية 17 تليها التفكك الميكانيكية.

باستخدام هذا النهج، قمنا بتطوير وإعداد فصلها تماما من الحبل الشوكي الجلكى أن ينتج محاور الشبكي منعزلة قابلة للحياة مع محطات قبل المشبكي وظيفية خالية من أي عمليات بعد المشبكي، وبالتالي توفير وصول غير مقيد إلى محطات قبل المشبكي الفردية. بالتزامن مع معيار مقلوب المجهر والتصوير مضان، وتمكننا من تحديد واستهداف محطات قبل المشبكي fluorescently التي تم تحديدها الفردية، مع ماصة التصحيح يحتوي على محلول التسجيل الذي يعزل الكالسيوم 2+ التيارات والشكل الشكل 4C 4D، لتسجيل باستخدام الخلوي تعلق تقنية الجهد المشبك. وقد سجلت كاليفورنيا 2+ التيارات مباشرة في الغشاء قبل المشبكي الإفراج مواجهة فردية محطات قبل المشبكي الشكل 4F. هذا هو الهامة فياختراق الإقليم الشمالي في مجال انتقال متشابك لأنه هو الأول من نوعه التسجيل التي يتعين الاضطلاع بها في نقاط الاشتباك العصبي المركزي.

Protocol

1. إعداد بولي-D-يسين هيدروبروميد إعداد 1 ملغ / مل بولي-D-يسين هيدروبروميد في 0.1 م العازلة بورات (الرقم الهيدروجيني 8.5). قسامة وتخزينها في -20 درجة مئوية. 2. طل…

Representative Results

هذه العوائد بروتوكول التفكك صحية وظيفية محاور الشبكي معزولة خالية من التوقعات بعد المشبكي الشكل 2F، ولكنها مع ذلك تحتفظ محطات قبل المشبكي وظيفية قادرة على أثار حويصلة متشابك إكسو والإلتقام الشكل 4C و 4D الشكل. أجزاء من المناطق المعزولة م?…

Discussion

بروتوكول التفكك الكبير الذي لدينا هو العائد محاور الشبكي معزولة خالية من التوقعات بعد المشبكي الشكل 2F، ولكن مع ذلك الذي يحتفظ ظيفية محطات قبل المشبكي 4C الشكل والشكل 4D. غياب العمليات بعد المشبكي معارضة المحطة قبل المشبكي يسمح تسجيل الوصول المباشر إ…

Divulgaciones

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work has been supported by NINDS, RO1NS52699 and MH84874 to SA.

We would like to thank Dr. Dave Featherstone (Department of Biological Sciences, University for Illinois at Chicago) for providing us with the suture glue used in the immunohistochemistry work. We thank Michael Alpert for his comments and proofreading of the manuscript.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
0.2 µm syringe filter EMD Millipore SLGV004SL
22×60 mm coverslips Fisherbrand 12545J
Advasep-7 Cydex Pharmaceuticals ADV7
Alexa Fluor 488 Phalloidin Invitrogen/Life Technologies A12379
Alexa-633 conjugated goat anti-rabbit secondary antibody Invitrogen/Life Technologies A21070
Antifreeze Prestone
Boric acid Sigma-Aldrich B7660
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A7906
Bright field light source Dolan-Jenner Fiberlite 180
Calcium chloride Sigma Aldrich C4901
Collagenase Type IA from Cloristridium histolyticum Sigma-Aldrich C9891
Cover slip Fisher-Scientific 12-545-J
Dextrose Sigma-Aldrich D9559
Digital CCD Camera Hamamatsu C8484-03G01
Dissection fine forceps Fine Science Tools 91150-20
Dissection forceps Fine Science Tools 11251-20
Dissection microscope Leica Biosystems Leica MZ 12
Dissection scissors Fine Science Tools 15025-10
Dissection scissors fine Fine Science Tools 91500-09
Dissection scissors ultra fine Fine Science Tools 15000-08
FM 1-43 Invitrogen/Life Technologies T3163
Glycine Sigma-Aldrich G7126
HEPES Sigma-Aldrich H7523
High vacuum grease Dow-Corning
Hydrochloric acid Fisherbrand SA-56-500
Immersion oil Fisher-Scientific M2000
Industrial grade Nitrogen gas tank Praxair UN1066
Insect pins Fine Science Tools 26002-10
Liquid suture glue Braun Veterinary Cair Division 8V0305 The suture glue we used in our experiments was provided to us by another lab. It is no longer manufactured. We have sourced a Histoacryl Suture Glue for future use from Aesculap (Ts1050071FP)
Magnesium chloride Sigma-Aldrich M2670
Methanol Sigma-Aldrich 154903
Non-fat dry milk Cell Signaling Technology 9999S
P-87 Micropipette puller Sutter Instruments
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Perfusion pump Cole-Palmer Masterflex C/L
Petri dish 100×15 mm Fisher-Scientific 875712
Petri dish 35×10 mm Fisher-scientific 875712
Poly-D-lysine hydrobromide Sigma-Aldrich P1024 MW > 300000
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Potassium phosphate monobasic Sigma-Aldrich P5379
Primary antibodiesR-type calcium channel Alomone Labs ACC-006
Protease Type XIV from Streptomyces griseus Sigma-Aldrich P5147
Scalpel blades World Precision Instruments  500240
Schot Duran Preesure Bottle Fisher-Scientific 09-841-006
Silicone tubing for glue application Cole-Palmer 07625-26
Slicing base plate Leica Biosystems 14046327404
Slicing chamber Leica Biosystems 1.4046E+10
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
Sodium hydroxide S8045
Sodium phosphate dibasic Sigma-Aldrich S9763
Sodium tetraborate Sigma-Aldrich B3545
Sylgard 160 Silicone Elastomer Kit Dow Corning  SYLGARD® 160 To prepare, mix elastomer A and elastomer B 10:1 by weight
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning SYLGARD® 184  To prepare, mix elastomer and curing agent 10:1 by weight
Teflon coated forceps Fine Science Tools 11626-11
Tricaine methanesulphonate Sigma-Aldrich A5040
Vibratome blades World Precision Instruments  BLADES
Xenon lamp Nikon

Referencias

  1. Katz, B., Miledi, R. The timing of calcium action during neuromuscular transmission. Journal of Physiology. 189 (3), 535-544 (1967).
  2. Sabatini, B. L., Regehr, W. G. Timing of neurotransmission at fast synapses in the mammalian brain. Nature. 384 (6605), 170-172 (1996).
  3. Augustine, G. J., Adler, E. M., Charlton, M. P. The calcium signal for transmitter secretion from presynaptic nerve terminals. Annals of the New York Academy of Sciences. 635, 365-381 (1991).
  4. Zucker, R. S. Calcium and transmitter release. Journal of Physiology Paris. 87 (1), 25-36 (1993).
  5. Delaney, K. R., Shahrezaei, V. Uncaging Calcium in Neurons. Cold Spring Harbor protocols. (12), (2013).
  6. Paradiso, K., Wu, W., Wu, L. G. Methods for patch clamp capacitance recordings from the calyx. Journal of Visualized Experiments. (6), 244 (2007).
  7. Stanley, E. F. The calyx-type synapse of the chick ciliary ganglion as a model of fast cholinergic transmission. Canadian Journal of Physiology and Pharmacology. 70, S73-S77 (1992).
  8. Church, P. J., Stanley, E. F. Single L type calcium channel conductance with physiological levels of calcium in chick ciliary ganglion neurons. The Journal of Physiology. 496 (Pt 1), 59-68 (1996).
  9. Stanley, E. F. Single calcium channels and acetylcholine release at a presynaptic nerve terminal. Neuron. 11 (6), 1007-1011 (1993).
  10. Weber, A. M., Wong, F. K., Tufford, A. R., Schlichter, L. C., Matveev, V., Stanley, E. F. N-type Ca(2+) channels carry the largest current implications for nanodomains and transmitter release. Nature Neuroscience. 13 (11), 1348-1350 (2010).
  11. He, L., Wu, X. S., Mohan, R., Wu, L. G. Two modes of fusion pore opening revealed by cell attached recordings at a synapse. Nature. 444 (7115), 102-105 (2006).
  12. Sheng, J., He, L., et al. Calcium channel number critically influences synaptic strength and plasticity at the active zone. Nature Neuroscience. 15 (7), 998-1006 (2012).
  13. Photowala, H., Freed, R., Alford, S. Location and function of vesicle clusters, active zones and Ca2+ channels in the lamprey presynaptic terminal. The Journal of Physiology. 569. 569 (Pt 1), 119-135 (2005).
  14. Rovainen, C. M. Synaptic interactions of reticulospinal neurons and nerve cells in the spinal cord of the sea lamprey. Journal of Comparative Neurology. 154 (2), 207-223 (1974).
  15. Takahashi, M., Freed, R., Blackmer, T., Alford, S. Calcium influx independent depression of transmitter release by 5 HT at lamprey spinal cord synapses. The Journal of Physiology. 532 (2), 323-336 (2001).
  16. Stanley, E. F., Goping, G. Characterization of a calcium current in a vertebrate cholinergic presynaptic nerve terminal. The Journal of Neuroscience. 11 (4), 985-993 (1991).
  17. El Manira, A., Bussières, N. Calcium channel subtypes in lamprey sensory and motor neurons. Journal of Neurophysiology. 78 (3), 1334-1340 (1997).
  18. Kay, A. R., Alfonso, A., et al. Imaging synaptic activity in intact brain and slices with FM1 43 in C elegans lamprey and rat. 24 (4), 809-817 (1999).
  19. Betz, W. J., Bewick, G. S. Optical analysis of synaptic vesicle recycling at the frog neuromuscular junction. Science. 255 (5041), 200-203 (1992).
  20. Bleckert, A., Photowala, H., Alford, S. Dual pools of actin at presynaptic terminals. Journal of Neurophysiology. 107 (12), 3479-3492 (2012).
  21. Gustafsson, J. S., Birinyi, A., Crum, J., Ellisman, M., Brodin, L., Shupliakov, O. Ultrastructural organization of lamprey reticulospinal synapses in three dimensions. The Journal of Comparative Neurology. 450 (2), 167-182 (2002).
  22. Broadie, K., Featherstone, D. E., Chen, K. Electrophysiological Recording in the Drosophila Embryo. Journal of Visualized Experiments. (27), (2009).
  23. Rae, J. L., Levis, R. A. A method for exceptionally low noise single channel recordings. Pflügers Archiv European Journal of Physiology. 420 (5-6), 618-620 (1992).

Play Video

Citar este artículo
Ramachandran, S., Alford, S. Acute Dissociation of Lamprey Reticulospinal Axons to Enable Recording from the Release Face Membrane of Individual Functional Presynaptic Terminals. J. Vis. Exp. (92), e51925, doi:10.3791/51925 (2014).

View Video