Summary

Patch Clamp Opnamen van Mouse Retinal Neuronen in een donker aangepaste Slice Voorbereiding

Published: September 12, 2010
doi:

Summary

Hier beschrijven we een procedure voor het genereren van donker aangepaste plakjes van de muis netvlies voor elektrofysiologische opnames.

Abstract

Onze visuele ervaring wordt gestart wanneer de visuele pigment in ons netvlies fotoreceptoren fotonen van licht energie absorbeert en initieert een cascade van intracellulaire gebeurtenissen die leiden tot sluiting van cyclisch-nucleotide-gated kanalen in het celmembraan. De resulterende verandering in de membraanpotentiaal leidt weer tot vermindering van de hoeveelheid van de neurotransmitter release van zowel de staafjes en kegeltjes synaptische terminals. Om te meten hoe het licht opgewekte verandering in fotoreceptor membraanpotentiaal leidt tot downstream activiteiten in het netvlies, hebben wetenschappers gemaakt elektrofysiologische opnames van het netvlies slice de voorbereidingen voor tientallen jaren 1,2. In het verleden zijn deze schijfjes zijn hand gesneden met een scheermesje op het netvlies weefsel dat wordt gehecht aan papieren filter, in de afgelopen jaren een andere methode van in plakken snijden is ontwikkeld, waarbij het netvlies weefsel is ingebed in een lage temperatuur gelering agar en in plakjes gesneden op een koele oplossing met een trillende microtoom 3,4. Deze voorbereiding maakt het netvlies plakken met minder beschadiging van het oppervlak en zeer robuust licht-geëvoceerde responsen. Hier hebben we document hoe deze procedure kan worden gedaan onder infrarood licht om te voorkomen dat het bleken van de visuele pigment.

Protocol

1. Voorbereiden Elektroden Bereid de opname-en referentie-elektroden door dompelen ze beide in 1 M NaCl en het rijden 15V tussen ze met behulp van een 1 Hz sinusgolf voor ~ 20 s. Maak de registrerende elektroden met behulp van een micropipet trekker (Sutter Instrumenten P-97). Voor de patch-pipetten gebruiken een borosilicaatglas met een buitendiameter van 1,2 mm en een inwendige diameter van 0,69 mm (Sutter Instruments, Cat # B120-69-10). Meet de serie weerstand via de punt van de elektrode. Op bas…

Discussion

Snijd de opname van gewervelde netvliezen zijn gemaakt voor tientallen jaren 1,2, en zijn redelijk succesvol in het verstrekken van een dieper begrip van hoe de retinale circuits codeert invallende licht. De voordelen van het snijden met een trillende microtoom in plaats van rechtstreeks met een scheermesje is dat het netvlies plakken minder schade aan het oppervlak oplopen. Met een zuigkracht pipet is het gemakkelijk te verwijderen deze schade en doel gezonde cellen net onder de oppervlakte die hun connectiv…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd ondersteund door NIH Grant EY17606 (APS).

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Micropipette Puller   Sutter Instruments P-97  
Borosilicate glass   Sutter Instruments B120-69-10  
Polyethylene tubing   Intramedic PE205  
Agar   Sigma A7002  
Low gelling temp agarose   Sigma A0701  
Ames’ Medium   Sigma A1420  
Penicillin-Streptomycin   Sigma P0781  

References

  1. Weblin, F. Transmission along and between rods in the tiger salamander retina. J Physiol. 280, 449-470 (1978).
  2. Wu, S. M. Synaptic connections among retina neurons in living slices. J Neurosci Methods. 20, 139-149 (1987).
  3. Rieke, F. Temporal contrast adaptation in salamander bipolar cell. J Neurosci. 21, 9445-9454 (2001).
  4. Armstrong-Gold, C., &amp, R. i. e. k. e., F, . Bandpass filtering at the rod to second-order cell synapse in salamander (Ambystoma tigrinum) retina. J Neurosci. 23, 3796-3806 (2003).
  5. Masland, R. H. The fundamental plan of the retina. Nat Neurosci. 4, 877-886 (2001).
  6. Wassle, H. Parallel processing in the mammalian retina. Nat Rev Neurosci. 5, 747-757 (2004).

Play Video

Cite This Article
Arman, A. C., Sampath, A. P. Patch Clamp Recordings from Mouse Retinal Neurons in a Dark-adapted Slice Preparation. J. Vis. Exp. (43), e2107, doi:10.3791/2107 (2010).

View Video