提示された子宮頸部操作方法は、精管切除された雄と雌を繁殖させる必要なしに、マウスにおいて偽妊娠を誘発することができる。偽妊娠の誘導は、非外科的胚移植および非外科的人工授精の成功に必要であり、どちらも提示されている。
胚移植または人工授精で妊娠を正常に維持するためには、雌レシピエントマウスを偽妊娠状態に誘導する必要があります。雌マウスは伝統的に精管切除された雄と一晩ペアになり、翌朝、交尾プラグの存在が評価されます。偽妊娠雌の作製効率を高めるために、マウスにおける非外科的胚移植または人工授精技術と組み合わせて使用される子宮頸部操作技術が標準化されている。小さなプラスチック棒の鈍い端を膣に挿入して子宮頸部に接触させ、トリマーとの接触によって30秒間振動させます。手順は迅速で、麻酔や鎮痛を必要としません。この技術は、偽妊娠の女性を生産する信頼性と予測可能性を高め、精管切除された男性の必要性を完全に排除します。CD1マウスの場合、子宮頸部操作を用いた偽妊娠誘導の効率は、発情期の雌では83%(N = 76)でしたが、発情期の雌の38%のみが精管切除された雄(N = 24)によって塞がれていました。CD1マウスの人工授精は、ホルモンとの発情同期、子宮頸部操作、および精子の子宮移植によって行われました。子宮頸管操作を受けた人工授精レシピエント(N = 76)の妊娠率は72%、平均同腹児数は8.3匹でした。この方法は、非外科的胚移植用の偽妊娠雌を作製するためにも使用することができる。したがって、子宮頸部操作による偽妊娠の誘発は、非外科的生殖補助技術を実行するときに精管切除された男性と交尾するよりも便利で効率的な代替手段です。子宮頸部マニピュレーションを使用すると、必要な動物の数を減らし、外科的に変更された男性の必要性を排除することにより、生殖補助医療に3R(置換、縮小、および改良)の利点が提供されます。
生殖補助医療は、遺伝子組み換えマウスモデルの作製、凍結保存からの菌株の回収、健康状態が損なわれた菌株の再誘導、年齢を一致させたコホートの産生を含む戦略的なビバリウム管理に使用されます。マウスにおけるすべての生殖補助医療は、胚発生のために偽妊娠の女性レシピエントの使用を必要とする。歴史的に、偽妊娠レシピエントは、外科的精管切除または遺伝的に不妊のいずれかである不妊の男性と交尾することによって生成され、交尾プラグの存在は翌朝評価されます1。最近、マウスにおける音波刺激のためのプロトコルが、前核または二細胞マウス胚の外科的移植のために開発された2。また、人工授精や胚盤胞の非外科的胚移植に使用するための子宮頸管操作(CM)プロトコルも開発しました。この手順を使用する理論的根拠は、必要な動物の数を3R削減し(雄マウスを必要としなくなった)、使用される技術を改良すること(雄マウスの外科的精管切除術手順をもはや必要としない)を提供することです。このプロトコルの説明には、CMを通常のワークフローに統合するのに役立つ関連する生殖補助医療が含まれています。CM法の全体的な目標は、人工授精や胚移植などの生殖補助医療のための偽妊娠雌の生成における雄マウスの使用を置き換えることです。
ここで説明するCMプロトコルは、マウスの人工授精を支援するために最初に開発されました。人工授精プロトコルは、最初に説明したように、50%の妊娠率を達成し、平均同腹児数は7匹でした3。CD1レシピエントマウスは、授精前の47時間間隔で、妊娠中の牝馬血清ゴナドトロピン(PMSG)およびヒト絨毛性ゴナドトロピン(hCG)を含む低用量のホルモンと発情同期した。発情同期の利点は、通常の勤務時間中にプロトコルを使用できることでした。人工授精直後に雌を精管切除雄と対にし,交尾プラグの存在により交配を確認した。レシピエントとの交配率の不一致は、手順の難しさとして報告されました。したがって、偽妊娠の誘発のために交配に代わるものが求められました。
本研究は、偽妊娠雌の産生効率を高めるための標準化されたCM技術を提示する。発情期または発情期の女性の場合、小さなプラスチック棒の鈍い端を膣に挿入して子宮頸部に接触させ、トリマーとの接触によって30秒間振動させます。この手順は、ワイヤートップケージで行われます。麻酔や鎮痛は必要ありません。CM技術は、精管切除された男性と交配する必要なしに、非外科的人工授精後に同腹仔を産生することができる偽妊娠雌を産生するのに便利である。CMは、胚移植のレシピエントとしての偽妊娠雌の産生にも使用できます。具体的には、CM技術は、ここで説明するように、非外科的胚移植と組み合わせることができる。非外科的方法は、マウス4,5およびラット6,7における胚盤胞期の胚の胚移植に有効であることが示されている。この非外科的方法は外科的方法に代わる効果的な方法であるため、技術の3Rの改良と見なされます。以前の研究に基づいて、ストレスの尺度としての糞便コルチコステロンレベルは、手順の非外科的性質がげっ歯類のストレスレベルを増加させないことを示しています7,8。この手順は、外科的胚移植よりも技術的に困難が少なく、実行がはるかに高速です。胚が子宮に移されるにつれて、子宮発生のための正しい段階の胚が移されなければならない。マウスの場合、胚盤胞は性交後2.5日(dpc)の偽妊娠レシピエントに移されます。
ここで説明する2つの非外科的手法については、ホルモン投与とCM手法のタイミングが異なる。発情に対するCM処置のタイミングは、偽妊娠レシピエントの生産のための自然な交配に取って代わるので、成功にとって重要である。精管切除された男性が偽妊娠を誘発する必要がなくなるため、この手順は、必要な動物の数を減らし、外科的に変更された男性の必要性を排除することにより、3Rの利点を提供します。手順自体は迅速(30秒)で、麻酔や鎮痛を必要としません。この技術は、生殖補助医療のための偽妊娠雌を作製する際の信頼性と予測可能性を大幅に向上させます。
3Rは、1959年にラッセルとバーチが「人道的実験技術の原則」15で説明したように、研究における動物使用の倫理的枠組みです。3Rは、動物の使用における置換、削減、および改良を表しています。ここで強調されているプロトコルは、3Rに準拠しています。子宮頸部操作技術は、偽妊娠の女性を産むために男性の使用を必要としなくなることによって、必要な動物の数を減らします。この技術はまた、男性に精管切除術を行う必要性を排除し、痛みや苦痛を軽減することで洗練を提供します。ここで説明する生殖補助医療(人工授精と胚移植)は非外科的であるため、どちらも外科的代替手段によって引き起こされる痛みと苦痛を軽減することにより、3Rの洗練を提供します8。
偽妊娠雌の使用は、マウスで生殖補助医療を行う際の子犬の回復に必要です1。CM手順は偽妊娠雌を作製するための効果的な方法であるが、レシピエント雌の発情周期の位相の同期は、プロセスの重要な最初のステップである。発情同期は、潜在的なレシピエントを準備するためにコロニーで必要な雌の数を大幅に減らすことができ、オンデマンドで時限の偽妊娠雌を生産するのに役立ちます。低用量のホルモンを使用しても、CD1マウスの生きた同腹仔の回復に有害な影響はないようです。移植された胚または精子に対して最高品質のレシピエント雌を生み出すホルモンと濃度の組み合わせを見つけるために、他の株に注意を払う必要があります。同期はPMSGとhCG16を使用して達成できますが、過剰排卵の女性を産生する用量は、持続的な妊娠には適切ではない可能性があります17。
女性が発情しているかどうかを判断するために、この研究で細胞学的評価が行われました。発情期は、膣口11、18の観察によっても評価することができる。この方法は非常に有用であり、単独でまたは確認として使用できますが、細胞診の使用よりも主観的です。染色なしの膣細胞診は、角化した上皮細胞を容易に同定できるため、発情期の雌を選択するのに迅速かつ効果的です。このプロトコルでは、潜在的なレシピエントを決定するために、CMの前に細胞学的評価が行われます。CMの前に細胞診を行うことが重要です, 手順では膣領域から脱落した細胞を断片化する傾向があるため, したがって、識別を困難にします.偽妊娠または妊娠の細胞学的評価は、CM(dpcm)後3.5〜11.5日で3日間連続して実施することができる。発情期のサイクリング女性のプロファイルは、角質化上皮細胞のかなりの浸潤を伴う少なくとも1日を有するべきである。偽妊娠/妊娠中の女性は、発情プロファイル(主に細胞数が少ない可能性のある白血球)を3日間連続して表示する必要があります。.
CM技術の開発を通じて、一部のマウスは他のマウスよりもこの手順を受け入れやすいことがわかりました。CD1雌マウスは、その穏やかな性質と優れた育成本能のために優れた候補です。この菌株は取り扱いが容易で、CMおよび非外科的生殖補助医療技術中に良好に機能します。C57Bl/6マウスは、より攻撃的で育成が少ない傾向があります。このプロトコルは、CMを使用して偽妊娠C57Bl / 6女性を効果的に生成しましたが、手順に一貫して寛容である可能性は低かった。これは、CM中の発情期といくらか相関しているようでした。 発情期または発情期の女性はより受容的でした。動物が入るための濃縮チューブの使用は、処置のための膣へのアクセスを可能にし、そして女性を落ち着かせるのを助けた。手順自体は女性を完全に拘束していないので、動物はいつでも引き離すことができます。これが発生した場合、動物の位置を変えることができ、その後手順を続けることができます。女性が立ち去ると処置のタイミングは止まり、処置が再開されたときに再開する。手技の成功に重要なのは、発情周期の段階(発情後期および発情期)および桿体と子宮頸部との接触である。トリマーの振動は標準化されたCMを提供します。子宮頸部との接触を確実にするために、ロッドに穏やかな圧力が加えられ、ロッドの小さな前後の動きで子宮頸部に対するロッドの位置が保証されます。
CMの使用は、発情周期の正しい段階にある女性を精子移植の前に選択することができ、プロトコルが精管切除された男性との交配を条件としなくなったため、NSAIプロトコルを改善しました。人工授精の発情周期の同期は、卵母細胞の成熟が4日目の朝の精子移植に対応するようにタイミングが調整されます。プロトコルの成功に重要なのは、受精が起こるように排卵のタイミングを適応させることです。 体外 受精に使用されるタイミングについて示唆されているように、予想される精子移植の15〜17時間前にhCGを投与するように注意する必要があります1。精子サンプルの品質は、人工授精の結果に直接影響します。容量化された新鮮な精子は最高のパフォーマンスを発揮します。良質の凍結保存された精子は、 生体内で受精胚を生成することができます。ただし、子宮角に移された残留凍結保護剤は着床を阻害する可能性があるため、解凍した精子の直接移動には注意が必要です(未発表の観察)。
胚移植と組み合わせたCMの使用は、概念的には簡単な適応です。発情周期の同期により、受信者プールの生成に必要な女性の数が減少します。CMの前に発情期を決定すると、偽妊娠レシピエントを獲得する可能性が高まります。この方法の1つの欠点は、胚移植時のレシピエントの細胞診が流動的な段階にあることである。女性が発情期から偽妊娠プロファイルに移行している場合、すべての細胞型が存在し、偽妊娠は細胞診が数日間追跡された場合にのみ明らかになります。CD1およびC57Bl/6マウスの発情期から偽妊娠への移行の成功率>80%から、この方法は胚移植レシピエントに適していると期待されます。予備的な結果は、限られた非外科的胚移植で良好な成功を示しています。一般に、非外科的胚移植の効率は外科的技術4,5の効率に匹敵し、非外科的移植は胚盤胞段階での外科的胚移植に取って代わることができます。初期段階の胚では、胚盤胞期までの胚培養が必要です。しかしながら、外科的移植が好ましい場合、適切な偽妊娠レシピエント2に必要な正しいタイミングにCM技術を適合させることができる。一般に、胚レシピエントは胚よりも1日進んでいません。例えば、胚盤胞はドナーから3.5 dpcで採取され、2.5 dpcレシピエントに移されます。したがって、CMは、レシピエントが胚よりも発達の少ない偽妊娠状態になるように実行する必要があります。
結論として、ここで概説したCM技術は、マウスの他の生殖補助医療技術との統合に優れた有望性を示しています。私たちは、非外科的技術を使用した人工授精と胚移植のための成功したプロトコルを提供してきました。組み合わせて、CM技術は、(1)精管切除された男性の必要性を排除することによる動物数の減少、および(2)外科的技術を非外科的代替手段に置き換えることによる技術の洗練を含む3Rの利点を提供します。
The authors have nothing to disclose.
この出版物で報告された研究は、賞番号R43OD020304の国立衛生研究所の研究インフラストラクチャプログラム局長室と、賞番号R44MH122117の国立衛生研究所の国立精神衛生研究所によってサポートされました。内容は著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を表すものではありません。
Blastocyst stage embryos | |||
CARD Fertiup Preincubation Medium (PM) | CosmoBio | KYD-002-EX | For sperm capacitation |
Embryo handling pipette | Cook Medical | K-FPIP-1120-10BS | Flexipet is available in various diameters |
Embryo handling pipette assembly | Paratechs | 90010 | |
Female mice, Crl:CD1(ICR) | Charles River Laboratories | 22 | >8 weeks old |
Forceps | Fine Science Tools | 11053-10 | Toothed, for dissection |
Forceps | Fine Science Tools | 11052-10 | Curved, for dissection |
Forceps | Fine Science Tools | Dumont #5 | Fine, for dissection |
Hemocytometer | Fisher Scientific | 267110 | Optional |
human Chorionic Gonadotropin (hCG) | Prospec | hor-250 | For estrus synchronization |
Incubator, 37 °C 5% CO2 | Thermo Scientific | ||
Incubator, 37 °C, benchtop | Cook | K-MINC-1000 | |
Kimwipes | Kimberly-Clark | 34155 | Absorbant tissues |
M2 medium | Millipore | MR-015-D | Embryo handling medium |
Male mice, Crl:CD1(ICR) | Charles River Laboratories | 22 | >8 weeks old |
mC&I device | ParaTechs | 60020 | For sperm transfer, specula included |
mCM rod | ParaTechs | 90050 | Smooth, blunt, with a diameter @3 mm |
Microscope | Olympus | SZX7 | 20x and 40x magnification with transmitted and reflected illumination source for embryo work and dissections |
Microscope | ACCU-SCOPE | 3032 | 100x magnification with bright field illumination |
Microscope slides | Fisher Scientific | 12-544-7 | |
mNSET device | ParaTechs | 60010 | For embryo transfer, specula included |
Needles, 26 G | Exel | 26402 | |
Papanicolaou Staining System | VWR | 76265-730 | Optional |
Paraffin oil | Sigma-Aldrich | 18512 | |
Pipette, P200 | Corning | 4074 | Fits the C&I device for sperm transfer |
Pipette, PR-2 | Rainin | 17008648 | Fits the NSET device for embryo transfer |
Pregnant Mare Serum Gonadotropin (PMSG) | Prospec | hor-272 | For estrus synchronization |
Scale | American Weigh Scales | LB-1000 | |
Scissors | Fine Science Tools | 14068-12 | Dissection |
Scissors | Fine Science Tools | 14081-09 | Angled, dissection |
Swabs, Constix | Contec | SC-4 | For vaginal cytology |
Syringes, 1 cc | Becton Dickenson and Company | 309659 | |
Tissue culture dishes, 35 mm | Falcon | 353001 | |
Tissue culture dishes, 60 mm | Falcon | 353004 | |
Trimmer | Wahl | ChroMini T-Cut | |
Wire bar topped mouse cage |