Summary

Differentiatie van menselijke pluripotente stamcellen in pancreas bètacelvoorlopers in een 2D-kweeksysteem

Published: December 16, 2021
doi:

Summary

Het huidige protocol beschrijft een verbeterde methode om de co-expressie van PDX1- en NKX6.1-transcriptiefactoren in pancreasvoorlopercellen afgeleid van menselijke pluripotente stamcellen (hPSC’s) in planaire monolagen te verhogen. Dit wordt bereikt door de verse matrix aan te vullen, de celdichtheid te manipuleren en de endodermale cellen te dissociëren.

Abstract

Menselijke pluripotente stamcellen (hPSC’s) zijn een uitstekend hulpmiddel voor het bestuderen van de vroege ontwikkeling van de alvleesklier en het onderzoeken van de genetische bijdragen aan diabetes. hPSC-afgeleide insuline-afscheidende cellen kunnen worden gegenereerd voor celtherapie en ziektemodellering, echter met beperkte efficiëntie en functionele eigenschappen. hPSC-afgeleide pancreasvoorlopercellen die voorlopers zijn van bètacellen en andere endocriene cellen, specificeren wanneer ze de twee transcriptiefactoren PDX1 en NKX6.1 co-expressie geven, de voorlopers van functionele, insuline-afscheidende bètacellen zowel in vitro als in vivo. hPSC-afgeleide pancreasvoorlopercellen worden momenteel gebruikt voor celtherapie bij type 1 diabetespatiënten als onderdeel van klinische onderzoeken. De huidige procedures genereren echter geen hoog percentage NKX6.1- en pancreasvoorlopercellen, wat leidt tot cogeneratie van niet-functionele endocriene cellen en weinig glucose-responsieve, insuline-afscheidende cellen. Dit werk ontwikkelde dus een verbeterd protocol voor het genereren van hPSC-afgeleide pancreasvoorlopercellen die de co-expressie van PDX1 en NKX6.1 in een 2D-monolaag maximaliseren. De factoren zoals celdichtheid, beschikbaarheid van verse matrix en dissociatie van hPSC-afgeleide endodermale cellen worden gemoduleerd die PDX1- en NKX6.1-niveaus in de gegenereerde pancreasvoorlopercellen verhoogden en de toewijding aan alternatieve leverafstamming geminimaliseerd. De studie benadrukt dat het manipuleren van de fysieke omgeving van de cel tijdens in vitro differentiatie van invloed kan zijn op de afstammingsspecificatie en genexpressie. Daarom vergemakkelijkt het huidige geoptimaliseerde protocol de schaalbare generatie van PDX1 en NKX6.1 co-expressing voorlopers voor celtherapie en ziektemodellering.

Introduction

Diabetes is een complexe stofwisselingsziekte die wereldwijd miljoenen mensen treft. Suppletie van insuline wordt beschouwd als de enige behandelingsoptie voor diabetes. Meer gevorderde gevallen worden behandeld met bètacelvervangingstherapie, bereikt door transplantatie van de hele kadaver alvleesklier of eilandjes 1,2. Verschillende kwesties omringen transplantatietherapie, zoals beperking met de beschikbaarheid en kwaliteit van het weefsel, invasiviteit van transplantatieprocedures naast de voortdurende behoefte aan immunosuppressiva. Dit vereist de noodzaak om nieuwe en alternatieve opties voor bètacelvervangingstherapie te ontdekken 2,3. Menselijke pluripotente stamcellen (hPSC’s) zijn onlangs naar voren gekomen als een veelbelovend hulpmiddel voor het begrijpen van de biologie van de menselijke alvleesklier en als een niet-uitputtende en mogelijk meer gepersonaliseerde bron voor transplantatietherapie 4,5,6,7. hPSC’s, met inbegrip van menselijke embryonale stamcellen (hESCs) en door de mens geïnduceerde pluripotente stamcellen (hiPSC’s), hebben een hoog zelfvernieuwingsvermogen en geven aanleiding tot elk weefseltype van het menselijk lichaam. hESCs zijn afgeleid van de binnenste celmassa van het embryo en hiPSC’s worden geherprogrammeerd uit elke somatische cel 4,8.

Gerichte differentiatieprotocollen zijn geoptimaliseerd om bètacellen van de pancreas te genereren uit hPSC’s die hPSC’s achtereenvolgens door de ontwikkelingsstadia van de pancreas leiden. Deze protocollen genereren hPSC-afgeleide eilandjesorganoïden. Hoewel ze sterk zijn verbeterd in het verhogen van het aandeel bètacellen van de pancreas daarin, is de efficiëntie van protocollen zeer variabel. Het neemt niet toe tot meer dan ~40% van NKX6.1+/INSULIN+ of C-PEPTIDE + cellen 5,9,10,11,12,13. De gegenereerde bètacellen zijn echter niet helemaal identiek aan de volwassen menselijke bètacellen in termen van hun transcriptionele en metabolische profielen en hun respons op glucose 4,5,14. De hPSC-afgeleide bètacellen missen genexpressie van belangrijke bètacelmarkers zoals PCSK2, PAX6, UCN3, MAFA, G6PC2 en KCNK3 in vergelijking met volwassen menselijke eilandjes5. Bovendien hebben de van hPSC afgeleide bètacellen de calciumsignalering verminderd als reactie op glucose. Ze zijn besmet met de co-gegenereerde polyhormonale cellen die geen geschikte hoeveelheden insuline afscheiden als reactie op het verhogen van glucosespiegels5. Aan de andere kant kunnen hPSC-afgeleide pancreasvoorlopers, die eilandjesprecursoren zijn, in vitro efficiënter worden gegenereerd in vergelijking met bètacellen en, wanneer ze in vivo worden getransplanteerd, kunnen uitgroeien tot functionele, insuline-afscheidende bètacellen15,16. Klinische studies zijn momenteel gericht op het aantonen van hun veiligheid en werkzaamheid bij transplantatie bij T1D-proefpersonen.

Met name de expressie van de transcriptiefactoren PDX1 (Pancreas en Duodenale Homeobox 1) en NKX6.1 (NKX6 Homeobox 1) binnen dezelfde pancreasvoorlopercel is cruciaal voor de inzet voor een bètacellijn5. Pancreasvoorlopercellen die NKX6.1 niet tot expressie brengen, geven aanleiding tot polyhormonale endocriene cellen of niet-functionele bètacellen17,18. Daarom is een hoge co-expressie van PDX1 en NKX6.1 in het pancreasvoorloperstadium essentieel voor het uiteindelijk genereren van een groot aantal functionele bètacellen. Studies hebben aangetoond dat een embryoïde lichaam of 3D-cultuur PDX1 en NKX6.1 verbetert in pancreasvoorlopercellen waar de differentiërende cellen worden geaggregeerd, variërend tussen 40% -80% van de PDX1 + / NKX6.1 + populatie12,19. In vergelijking met suspensieculturen zijn 2D-differentiatieculturen echter kosteneffectiever, haalbaarder en handiger voor toepassing op meerdere cellijnen5. We hebben onlangs aangetoond dat monolaagdifferentiatieculturen meer dan 90% van de PDX1+/NKX6.1+ co-expressie van hPSC-afgeleide pancreasvoorlopersopleveren 20,21,22. De gerapporteerde methode verleende een hoge replicerende capaciteit aan de gegenereerde pancreasvoorlopers en voorkwam alternatieve lotspecificaties zoals leverlijn21. Daarom demonstreert dit protocol hierin een zeer efficiënte methode voor de differentiatie van hPSC’s naar pancreas bètacelprecursoren die samen PDX1 en NKX6.1 tot expressie brengen. Deze methode maakt gebruik van de techniek van het dissociëren van hPSC-afgeleid endoderm en het manipuleren van de celdichtheid, gevolgd door een uitgebreide FGF- en Retinoïde-signalering en Egel-remming om PDX1- en NKX6.1-co-expressie te bevorderen (figuur 1). Deze methode kan een schaalbare generatie van hPSC-afgeleide pancreas bètacelprecursoren voor transplantatietherapie en ziektemodellering vergemakkelijken.

Protocol

De studie is goedgekeurd door de bevoegde institutionele ethische commissie voor onderzoek en uitgevoerd volgens de ethische normen zoals vastgelegd in de Verklaring van Helsinki van 1964 en de latere wijzigingen of vergelijkbare ethische normen. Het protocol werd goedgekeurd door de Institutional Review Board (IRB) van HMC (nr. 16260/16) en Qatar Biomedical Research Institute (QBRI) (nr. 2016-003). Dit werk is geoptimaliseerd voor hESCs zoals H1, H9 en HUES8. Bloedmonsters werden verkregen van gezonde personen uit het z…

Representative Results

De resultaten tonen aan dat het geoptimaliseerde protocol P2-D (figuren 1A) de differentiatie-efficiëntie van pancreasvoorlopers verbeterde door pdx1- en nkx6.1-co-expressie te upreguleren (figuur 2A, B en figuur 3A). In het bijzonder toonden de resultaten aan dat dissociatie van endodermale cellen en hun replating op verse membraanmatrix samen met een langere duur van stadium 3 nkx6.1-expressie in hPSC-afgeleide p…

Discussion

Dit werk beschrijft een verbeterd protocol voor het genereren van pancreasvoorlopercellen uit hPSC’s met een hoge co-expressie van PDX1 en NKX6.1. Dissociatie en replating van het hPSC-afgeleide endoderm bij halve dichtheid op verse matrix resulteerde in hogere PDX1 en NKX6.1 in hPSC-afgeleide pancreasvoorlopers.

Hoewel de groeifactorcocktail voor elke fase sterk lijkt op P1-ND27, is aangetoond dat een meer uitgebreide fase 3-behandeling inclusief FGF- en retinoïdesign…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gefinancierd door een subsidie van qatar National Research Fund (QNRF) (Grant No. NPRP10-1221-160041).

Materials

15 mL, conical, centrifuge tubes Thermo Scientific 339651
20X TBS Tween 20 Thermo Scientific 28360
24-well culture plates, flat bottom with lid Costar 3524
50 mL, conical, centrifuge tubes Thermo Scientific 339652
6- well culture plates, multidish Thermo Scientific 140685
Accutase Stem Cell Technologies 0-7920
Activin A R&D 338-AC Reconstituted in 4 mM HCl
Anti NKX6.1 antibody, mouse monoclonal DSHB F55A12-C Diluted to 1:100 for flow-cytometry and 1:2000 for immunostaining
Anti-PDX1 antibody, guinea pig polyclonal Abcam ab47308 Diluted to 1:100 for flow-cytometry and 1:1000 for immunostaining
B27 minus Vit A ThermoFisher 12587010
Bovine serum albumin, heat shock fraction, fatty acid free Sigma A7030
CHIR 99021 Tocris 4423 Reconstituted in DMSO
DMEM, high glucose ThermoFisher 41965047
Donkey anti-Mouse IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 568 Invitrogen A10037
Donkey anti-Rabbit IgG (H + L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 A-21206
DPBS 1X ThermoFisher 14190144
EGF ThermoFisher PHG0313 Reconstituted in 0.1% BSA in PBS
FGF10 R&D 345-FG Reconstituted in PBS
Glucose Sigma Aldrich G8644
Hoechst 33258 Sigma 23491-45-4
Inverted microscope Olympus IX73
KnockOut DMEM/F-12 (1X) Gibco 12660-012
KnockOut SR serum replacement Gibco 10828-028
L-Ascorbic acid (vitamin C) Sigma A92902 Reconstituted in distilled water
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix Corning 354230 Aliquot the thawed stock and freeze at -20C.
MCDB131 ThermoFisher 10372019
Mouse anti-SOX17 ORIGENE CF500096 Diluted to 1:100 for flow-cytometry and 1:2000 for immunostaining
mTeSR Plus Stem Cell Technologies 85850 Mix the basal media with supplement. Aliquot and store at -20 °C for longer time or at 4 °C for instant use
Nalgene filter units, 0.2 µm PES ThermoFisher 566-0020
Nicotinamide Sigma 72340 Reconstituted in distilled water
NOGGIN R&D 6057-NG Reconstituted in 0.1% BSA in PBS
Paraformaldehyde solution 4% in PBS ChemCruz sc-281692
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) ThermoFisher 15140122
Portable vacuum aspirator
Rabbit anti-FOXA2 Cell signaling technology 3143 Diluted to 1:100 for flow-cytometry and 1:500 for immunostaining
Retinoic Acid Sigma Aldrich R2625 Reconstituted in DMSO
Rock inhibitor (Y-27632) ReproCell 04-0012-02 Reconstituted in DMSO
Round Bottom Polystyrene FACS Tubes with Caps, STERILE Stellar Scientific FSC-9010
SANT-1 Sigma Aldrich S4572 Reconstituted in DMSO
Sodium bicarbonate Sigma S5761-500G
StemFlex ThermoFisher A3349401 Mix the basal media with supplement. Aliquot and store at -20 °C for longer time or at 4 °C for instant use
TALI Cellular Analysis Slide Invitrogen T10794
Tali image-based cytometer automated cell counter Invitrogen T10796
Triton X-100 Sigma 9002-93-1
TrypLE 100 mL ThermoFisher 12563011
Tween 20 Sigma P2287
UltraPure 0.5 M EDTA, pH 8.0 Invitrogen 15575-038

References

  1. Rickels, M. R., Robertson, R. P. Pancreatic islet transplantation in humans: Recent progress and future directions. Endocrine Reviews. 40 (2), 631-668 (2019).
  2. Latres, E., Finan, D. A., Greenstein, J. L., Kowalski, A., Kieffer, T. J. Navigating two roads to glucose normalization in diabetes: Automated insulin delivery devices and cell therapy. Cell Metabolism. 29 (3), 545-563 (2019).
  3. Vaithilingam, V., Tuch, B. E. Islet transplantation and encapsulation: An update on recent developments. Review of Diabetic Studies. 8 (1), 51-67 (2011).
  4. Abdelalim, E. M. Modeling different types of diabetes using human pluripotent stem cells. Cellular and Molecular Life Sciences. 78 (6), 2459-2483 (2021).
  5. Memon, B., Abdelalim, E. M. Stem cell therapy for diabetes: Beta cells versus pancreatic progenitors. Cells. 9 (2), 283 (2020).
  6. Balboa, D., Iworima, D. G., Kieffer, T. J. Human pluripotent stem cells to model islet defects in diabetes. Frontiers in Endocrinology (Lausanne). 12, 642152 (2021).
  7. Gaertner, B., Carrano, A. C., Sander, M. Human stem cell models: Lessons for pancreatic development and disease. Genes & Development. 33 (21-22), 1475-1490 (2019).
  8. Abdelalim, E. M., Bonnefond, A., Bennaceur-Griscelli, A., Froguel, P. Pluripotent stem cells as a potential tool for disease modelling and cell therapy in diabetes. Stem Cell Reviews and Reports. 10 (3), 327-337 (2014).
  9. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nature Biotechnology. 32 (11), 1121-1133 (2014).
  10. Pagliuca, F. W., et al. Generation of functional human pancreatic beta cells in vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  11. Nair, G. G., et al. Recapitulating endocrine cell clustering in culture promotes maturation of human stem-cell-derived β cells. Nature Cell Biology. 21 (2), 263-274 (2019).
  12. Russ, H. A., et al. Controlled induction of human pancreatic progenitors produces functional beta-like cells in vitro. EMBO Journal. 34 (13), 1759-1772 (2015).
  13. Veres, A., et al. Charting cellular identity during human in vitro β-cell differentiation. Nature. 569 (7756), 368-373 (2019).
  14. Hrvatin, S., et al. Differentiated human stem cells resemble fetal, not adult, β cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (8), 3038-3043 (2014).
  15. Rezania, A., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors into functional islets capable of treating pre-existing diabetes in mice. Diabetes. 61 (8), 2016-2029 (2012).
  16. Rezania, A., et al. Enrichment of human embryonic stem cell-derived NKX6.1-expressing pancreatic progenitor cells accelerates the maturation of insulin-secreting cells in vivo. Stem Cells Journal. 31 (11), 2432-2442 (2013).
  17. Rezania, A., et al. Enrichment of human embryonic stem cell-derived NKX6.1-expressing pancreatic progenitor cells accelerates the maturation of insulin-secreting cells in vivo. Stem Cells Journal. 31 (11), 2432-2442 (2013).
  18. Bruin, J. E., et al. Characterization of polyhormonal insulin-producing cells derived in vitro from human embryonic stem cells. Stem Cell Research. 12 (1), 194-208 (2014).
  19. Toyoda, T., et al. Cell aggregation optimizes the differentiation of human ESCs and iPSCs into pancreatic bud-like progenitor cells. Stem Cell Research. 14 (2), 185-197 (2015).
  20. Memon, B., Abdelalim, E. M. Highly efficient differentiation of human pluripotent stem cells into pancreatic progenitors co-expressing PDX1 and NKX6.1. Methods in Molecular Biology. , (2020).
  21. Memon, B., Karam, M., Al-Khawaga, S., Abdelalim, E. M. Enhanced differentiation of human pluripotent stem cells into pancreatic progenitors co-expressing PDX1 and NKX6.1. Stem Cell Research & Therapy. 9 (1), 15 (2018).
  22. Aigha, I. I., Memon, B., Elsayed, A. K., Abdelalim, E. M. Differentiation of human pluripotent stem cells into two distinct NKX6.1 populations of pancreatic progenitors. Stem Cell Research & Therapy. 9 (1), 83 (2018).
  23. Ali, G., et al. Keratinocytes derived from patient-specific induced pluripotent stem cells recapitulate the genetic signature of psoriasis disease. Stem Cells and Development. 29 (7), 383-400 (2020).
  24. Elsayed, A. K., et al. Generation of a human induced pluripotent stem cell line (QBRIi009-A) from a patient with a heterozygous deletion of FOXA2. Stem Cell Research. 42, 101705 (2020).
  25. Davenport, C., Diekmann, U., Budde, I., Detering, N., Naujok, O. Anterior-posterior patterning of definitive endoderm generated from human embryonic stem cells depends on the differential signaling of retinoic acid, Wnt-, and BMP-signaling. Stem Cells. 34 (11), 2635-2647 (2016).
  26. Schroeder, I. S., et al. Induction and selection of Sox17-expressing endoderm cells generated from murine embryonic stem cells. Cells Tissues Organs. 195 (6), 507-523 (2012).
  27. Nostro, M. C., et al. Efficient generation of NKX6-1+ pancreatic progenitors from multiple human pluripotent stem cell lines. Stem Cell Reports. 4 (4), 591-604 (2015).
  28. Elsayed, A. K., Younis, I., Ali, G., Hussain, K., Abdelalim, E. M. Aberrant development of pancreatic beta cells derived from human iPSCs with FOXA2 deficiency. Cell Death & Disease. 12 (1), 103 (2021).
  29. Mfopou, J. K., Chen, B., Mateizel, I., Sermon, K., Bouwens, L. Noggin, retinoids, and fibroblast growth factor regulate hepatic or pancreatic fate of human embryonic stem cells. Gastroenterology. 138 (7), 1-14 (2010).
  30. Mfopou, J. K., De Groote, V., Xu, X., Heimberg, H., Bouwens, L. Sonic hedgehog and other soluble factors from differentiating embryoid bodies inhibit pancreas development. Stem Cells. 25 (5), 1156-1165 (2007).
  31. Gattazzo, F., Urciuolo, A., Bonaldo, P. Extracellular matrix: A dynamic microenvironment for stem cell niche. Biochimica et Biophysica Acta. 1840 (8), 2506-2519 (2014).
  32. Watt, F. M., Huck, W. T. Role of the extracellular matrix in regulating stem cell fate. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (8), 467-473 (2013).
  33. Shih, H. P., Panlasigui, D., Cirulli, V., Sander, M. ECM signaling regulates collective cellular dynamics to control pancreas branching morphogenesis. Cell Reports. 14 (2), 169-179 (2016).
  34. Raza, A., Ki, C. S., Lin, C. C. The influence of matrix properties on growth and morphogenesis of human pancreatic ductal epithelial cells in 3D. Biomaterials. 34 (21), 5117-5127 (2013).
  35. Lin, H. Y., et al. Fibronectin and laminin promote differentiation of human mesenchymal stem cells into insulin producing cells through activating Akt and ERK. Journal of Biomedical Science. 17, 56 (2010).
  36. Boretti, M. I., Gooch, K. J. Effect of extracellular matrix and 3D morphogenesis on islet hormone gene expression by Ngn3-infected mouse pancreatic ductal epithelial cells. Tissue Engineering Part A. 14 (12), 1927-1937 (2008).
  37. Boretti, M. I., Gooch, K. J. Induced cell clustering enhances islet beta cell formation from human cultures enriched for pancreatic ductal epithelial cells. Tissue Engineering. 12 (4), 939-948 (2006).
  38. Beattie, G. M., Rubin, J. S., Mally, M. I., Otonkoski, T., Hayek, A. Regulation of proliferation and differentiation of human fetal pancreatic islet cells by extracellular matrix, hepatocyte growth factor, and cell-cell contact. Diabetes. 45 (9), 1223-1228 (1996).
  39. Gage, B. K., Webber, T. D., Kieffer, T. J. Initial cell seeding density influences pancreatic endocrine development during in vitro differentiation of human embryonic stem cells. PLoS One. 8 (12), 82076 (2013).

Play Video

Cite This Article
Memon, B., Abdelalim, E. M. Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells Into Pancreatic Beta-Cell Precursors in a 2D Culture System. J. Vis. Exp. (178), e63298, doi:10.3791/63298 (2021).

View Video