Summary

حيود الإلكترون الجهورالوفولفي للجزيئات الصغيرة

Published: March 15, 2021
doi:

Summary

هنا ، نصف الإجراءات التي تم تطويرها في مختبرنا لإعداد مساحيق بلورات الجزيئات الصغيرة لتجارب حيود الإلكترون البلوري الدقيق (MicroED).

Abstract

تم وصف بروتوكول مفصل لإعداد عينات الجزيئات الصغيرة لتجارب حيود الإلكترون البلوري الدقيق (MicroED). تم تطوير MicroED لحل هياكل البروتينات والجزيئات الصغيرة باستخدام معدات الفحص المجهري الإلكتروني بالتبريد (cryo-EM) القياسية. بهذه الطريقة ، تم مؤخرا تحديد الجزيئات الصغيرة والببتيدات والبروتينات القابلة للذوبان والبروتينات الغشائية بدقة عالية. يتم تقديم البروتوكولات هنا لإعداد شبكات من المستحضرات الصيدلانية ذات الجزيئات الصغيرة باستخدام عقار كاربامازيبين كمثال. يتم تقديم بروتوكولات لفحص وجمع البيانات. يتم تقديم خطوات إضافية في العملية الشاملة ، مثل تكامل البيانات وتحديد الهيكل والتحسين في مكان آخر. يقدر الوقت اللازم لإعداد شبكات الجزيئات الصغيرة بأقل من 30 دقيقة.

Introduction

حيود الإلكترون البلوري الدقيق (MicroED) هو طريقة مجهرية إلكترونية بالتبريد (cryo-EM) لتحديد هياكل الدقة الذرية من بلورات بحجم أقل منميكرومتر 1,2. يتم تطبيق البلورات على شبكات المجهر الإلكتروني القياسي (TEM) ويتم تجميدها إما عن طريق الغطس في الإيثان السائل أو النيتروجين السائل. ثم يتم تحميل الشبكات في TEM تعمل في درجات حرارة مبردة. توجد البلورات على الشبكة ويتم فحصها للتأكد من جودة الحيود الأولية. الدوران المستمر يتم جمع بيانات MicroED من مجموعة فرعية من البلورات التي تم فحصها ، حيث يتم حفظ البيانات باستخدام كاميرا سريعة كفيلم3. يتم تحويل هذه الأفلام إلى تنسيق بلوري قياسي ومعالجتها بشكل متطابق تقريبا كتجربة علم البلورات بالأشعة السينية4.

تم تطوير MicroED في الأصل للتحقيق في بلورات البروتينالدقيقة 1,2. يؤدي عنق الزجاجة في علم بلورات البروتين إلى نمو بلورات كبيرة ومرتبة جيدا لتجارب حيود الأشعة السينية السنكروترونية التقليدية. نظرا لأن الإلكترونات تتفاعل مع أوامر المادة ذات الحجم الأقوى من الأشعة السينية ، فإن قيود حجم البلورة اللازمة لإنتاج حيود يمكن اكتشافه أصغر بكثير5. بالإضافة إلى ذلك ، فإن نسبة أحداث التشتت المرنة إلى غير المرنة أكثر ملاءمة للإلكترونات ، مما يشير إلى أنه يمكن جمع المزيد من البيانات المفيدة مع تعرض إجمالي أصغر5. سمحت التطورات المستمرة بجمع بيانات MicroED من البلورات الدقيقةالأكثر تحديا 6،7،8،9.

في الآونة الأخيرة ، ثبت أن MicroED أداة قوية لتحديد هياكل المستحضرات الصيدلانية ذات الجزيئات الصغيرة من المواد غير المتبلورة على ما يبدو10،11،12،13. يمكن أن تأتي هذه المساحيق مباشرة من زجاجة كاشف تم شراؤها ، أو عمود تنقية ، أو حتى من سحق حبوب منع الحمل إلى مسحوق ناعم10. تبدو هذه المساحيق غير متبلورة بالعين ، ولكنها قد تكون إما مكونة بالكامل من بلورات نانوية أو تحتوي فقط على كميات ضئيلة من الرواسب البلورية النانوية في جزء غير بلوري غير متبلور أكبر. يعد تطبيق المادة على الشبكة أمرا سهلا ، وقد تكون الخطوات اللاحقة لتحديد الكريستال والغربلة وجمع البيانات مؤتمتة في المستقبلالقريب 14. في حين أن البعض الآخر قد يستخدم طرقا مختلفة لإعداد العينات وجمع البيانات ، هنا يتم تفصيل البروتوكولات التي تم تطويرها واستخدامها في مختبر Gonen لإعداد عينات من الجزيئات الصغيرة ل MicroED ولجمع البيانات.

Protocol

1. تحضير عينات الجزيئات الصغيرة انقل كمية صغيرة (0.01 – 1 مجم) من المسحوق أو السائل أو المواد الصلبة إلى قنينة أو أنبوب صغير. بالنسبة للعينات الموجودة بالفعل في شكل مسحوق ، أغلق الأنبوب باستخدام الغطاء حتى تكون هناك حاجة إلى العينة. جفف العينات السائلة إلى مساحيق قبل محاولات الطريقة …

Representative Results

MicroED هي طريقة cryoEM تستفيد من التفاعلات القوية بين الإلكترونات والمادة ، والتي تسمح بالتحقيق في البلورات الصغيرة المتلاشية12,13. بعد هذه الخطوات ، من المتوقع أن يكون هناك فيلم حيود بتنسيق بلوري تم جمعه من البلورات الدقيقة (الفيلم 1). هنا ، يتم عرض التقني…

Discussion

عادة ما يكون إعداد العينة عملية تكرارية ، حيث يتم إجراء التحسينات بعد جلسات الفحص وجمع البيانات. بالنسبة لعينات الجزيئات الصغيرة ، غالبا ما يكون من الحكمة أولا محاولة تحضير الشبكة دون تفريغ الشبكات المتوهجة ، نظرا لأن العديد من المستحضرات الصيدلانية تميل إلى أن تكون كارهة للماء

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

يتم دعم مختبر جونين بأموال من معهد هوارد هيوز الطبي. تم دعم هذه الدراسة من قبل المعاهد الوطنية للصحة P41GM136508.

Materials

0.1-1.5mL Eppendorf tubes Fisher Scientific 14-282-300 Any vial or tube will do.
Autogrid clips Thermo-Fisher 1036173 Clipped grids are not required for MicroED. They are required for Thermo-Fisher TEMs equipped with an autoloader system.
Autogrid C-rings Thermo-Fisher 1036171
Carbamazapine Sigma C4024-1G Any amount will suffice for these experiments
CMOS based detector Thermo-Fisher CetaD 16M We used a CetaD 16M, but any detector with rolling shutter mode or sufficiently fast readout is acceptable. 
Delphi software Thermo-Fisher N/A Software on Thermo-Fisher TEM systems that allows for manual rotation of the sample stage
EPU-D software Thermo-Fisher N/A Commercial software for the acquisition of MicroED data
Glass cover slides Hampton HR3-231
Glow discharger Pelco easiGlow
High PrecisionTweezers EMS 78325-AC Any high precision tweezer will do
Liquid nitrogen vessel Spear Lab FD-800 A standard foam vessel for handling specimens under liquid nitrogen – 800mL
SerialEM software UC Boulder N/A Free software distributed by D. Mastronarde. Department of Molecular, Cellular, and Developmental Biology
TEM grids Quantifoil/EMS Q310CMA Multi-A 300 mesh grids were used here, but any thin carbon grids will work. For these small molecules, we suggest starting with continuous carbon. 
transmission electron microscope (TEM) Thermo-Fisher Talos Arctica
Whatman circular filter paper Millipore-Sigma WHA1001090 90mm or larger

References

  1. Shi, D., Nannenga, B. L., Iadanza, M. G., Gonen, T. Three-dimensional electron crystallography of protein microcrystals. eLife. 2, 01345 (2013).
  2. Nannenga, B. L., Shi, D., Leslie, A. G. W., Gonen, T. High-resolution structure determination by continuous-rotation data collection in MicroED. Nature Methods. 11 (9), 927-930 (2014).
  3. Hattne, J., Martynowycz, M. W., Penczek, P. A., Gonen, T. MicroED with the Falcon III direct electron detector. IUCrJ. 6 (5), 921-926 (2019).
  4. Hattne, J., et al. MicroED data collection and processing. Acta Crystallographica Section A Foundations and Advances. 71 (4), 353-360 (2015).
  5. Henderson, R. The potential and limitations of neutrons, electrons and X-rays for atomic resolution microscopy of unstained biological molecules. Quarterly Reviews of Biophysics. 28 (2), 171-193 (1995).
  6. Martynowycz, M. W., et al. MicroED structure of the human adenosine receptor determined from a single nanocrystal in LCP. BioRxiv. , 316109 (2020).
  7. Martynowycz, M. W., Zhao, W., Hattne, J., Jensen, G. J., Gonen, T. Collection of continuous rotation MicroED data from ion beam-milled crystals of any size. Structure. 27 (3), 545-548 (2019).
  8. Martynowycz, M. W., Gonen, T. Ligand incorporation into protein microcrystals for MicroED by on-grid soaking. Structure. , (2020).
  9. Martynowycz, M. W., Khan, F., Hattne, J., Abramson, J., Gonen, T. MicroED structure of lipid-embedded mammalian mitochondrial voltage-dependent anion channel. Proceedings of the National Academy of Sciences. 117 (51), 32380-32385 (2020).
  10. Jones, C. G., et al. The CryoEM method MicroED as a powerful tool for small molecule structure determination. ACS Central Science. 4 (11), 1587-1592 (2018).
  11. Dick, M., Sarai, N. S., Martynowycz, M. W., Gonen, T., Arnold, F. H. Tailoring tryptophan synthase TrpB for selective quaternary carbon bond formation. Journal of the American Chemical Society. 141 (50), 19817-19822 (2019).
  12. Gallagher-Jones, M., et al. Sub-ångström cryo-EM structure of a prion protofibril reveals a polar clasp. Nature Structural & Molecular Biology. 25 (2), 131-134 (2018).
  13. Ting, C. P., et al. Use of a scaffold peptide in the biosynthesis of amino acid-derived natural products. Science. 365 (6450), 280-284 (2019).
  14. de la Cruz, M. J., Martynowycz, M. W., Hattne, J., Gonen, T. MicroED data collection with SerialEM. Ultramicroscopy. 201, 77-80 (2019).
  15. Mastronarde, D. N. Automated electron microscope tomography using robust prediction of specimen movements. Journal of Structural Biology. 152 (1), 36-51 (2005).
  16. Schorb, M., Haberbosch, I., Hagen, W. J. H., Schwab, Y., Mastronarde, D. N. Software tools for automated transmission electron microscopy. Nature Methods. 16 (6), 471-477 (2019).
  17. Kabsch, W. XDS. Acta Crystallographica Section D Biological Crystallography. 66 (2), 125-132 (2010).
  18. Winter, G., et al. DIALS: Implementation and evaluation of a new integration package. Acta Crystallographica Section D. 74 (2), 85-97 (2018).
  19. de la Cruz, M. J., et al. Atomic-resolution structures from fragmented protein crystals with the cryoEM method MicroED. Nature Methods. 14 (4), 399-402 (2017).
  20. Shi, D., et al. The collection of MicroED data for macromolecular crystallography. Nature Protocols. 11 (5), 895-904 (2016).
  21. Nannenga, B. L., Shi, D., Hattne, J., Reyes, F. E., Gonen, T. Structure of catalase determined by MicroED. eLife. 3, 03600 (2014).
  22. Martynowycz, M. W., Zhao, W., Hattne, J., Jensen, G. J., Gonen, T. Qualitative Analyses of Polishing and Precoating FIB Milled Crystals for MicroED. Structure. 27 (10), 1594-1600 (2019).

Play Video

Cite This Article
Martynowycz, M. W., Gonen, T. Microcrystal Electron Diffraction of Small Molecules. J. Vis. Exp. (169), e62313, doi:10.3791/62313 (2021).

View Video