Summary

Detecção de variantes genéticas no gene CALR usando análise de fusão de alta resolução

Published: August 26, 2020
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Summary

A análise de fusão de alta resolução (HRM) é uma solução sensível e rápida para detecção de variantes genéticas. Depende de diferenças sequenciais que resultam em heteroduplexes mudando a forma da curva de fusão. Ao pentear o HRM e a agarose gel eletroforesis, diferentes tipos de variantes genéticas, como indels, podem ser identificados.

Abstract

A análise de derretimento de alta resolução (HRM) é um método poderoso para genotipagem e varredura de variações genéticas. A maioria das aplicações de HRM dependem de corantes de DNA saturados que detectam diferenças de sequência, e heterodúplexos que mudam a forma da curva de fusão. Excelente resolução de instrumentos e software especial de análise de dados são necessários para identificar as pequenas diferenças de curva de fusão que identificam uma variante ou genótipo. Diferentes tipos de variantes genéticas com diversas frequências podem ser observadas no gene específico para pacientes com uma doença específica, especialmente câncer e no gene CALR em pacientes com neoplasias mieloproliferativas nômodas negativas da Filadélfia. Alterações de nucleotídeos únicos, inserções e/ou exclusões (indels) no gene de interesse podem ser detectadas pela análise do HRM. A identificação de diferentes tipos de variantes genéticas baseia-se principalmente nos controles utilizados no ensaio qPCR HRM. No entanto, à medida que o comprimento do produto aumenta, a diferença entre curvas de tipo selvagem e heterozigoto torna-se menor, e o tipo de variante genética é mais difícil de determinar. Portanto, quando os indels são a variante genética predominante esperada no gene de interesse, um método adicional como a eletroforese de gel de agarose pode ser usado para o esclarecimento do resultado do HRM. Em alguns casos, um resultado inconclusivo deve ser re-verificado/re-diagnosticado pelo sequenciamento Sanger padrão. Neste estudo retrospectivo, aplicamos o método a pacientes JAK2 V617F negativos com MPN.

Introduction

As variantes genéticas somáticas do gene da calreticulina (CALR)foram reconhecidas em 2013 em pacientes com neoplasias mieloproliferativas (MPN), como trombocythemia essencial e mielófibrose primária1,2. Desde então, mais de 50 variantes genéticas no gene CALR foram descobertas, induzindo um quadro de 3 +1 (−1+2). As duas variantes genéticas CALR mais frequentes são uma exclusão de 52 bps (NM_004343,3 (CALR):c.1099_1150del52, p.(Leu367Thrfs*46)), também chamada de mutação tipo 1, e uma inserção de 5 bp (NM_004343,3 (CALR): c.1154_1155insTTGTC, p.(Lys385Asnfs*47)), também chamada de mutação tipo 2. Essas duas variantes genéticas representam 80% de todas as variantes genéticas CALR. Os outros foram classificados como tipo 1- like ou tipo 2 – como usando algoritmos baseados na preservação de uma hélice α perto do tipo selvagem CALR4. Aqui, apresentamos um dos métodos altamente sensíveis e rápidos para detecção de variantes genéticas CALR, o método de análise de fusão de alta resolução (HRM). Este método permite a detecção rápida de variantes genéticas tipo 1 e tipo 2, que representam a maioria das mutações CALR 5. O HRM foi introduzido em combinação com a reação em cadeia de polimerase em tempo real« (qPCR) em 1997 como uma ferramenta para detectar a mutação no fator V Leiden6. Em comparação com o sequenciamento Sanger que representa a técnica padrão dourada, o HRM é um método mais sensível e menos específico5. O método HRM é um bom método de triagem que permite uma análise rápida de um grande número de amostras com um ótimo custo-benefício5. É um método PCR simples realizado na presença de um corante fluorescente e não requer habilidades específicas. Outro benefício é que o procedimento em si não danifica ou destrói a amostra analisada que nos permite reutilizar a amostra para eletroforese ou sequenciamento de Sanger após o procedimento de HRM7. A única desvantagem é que às vezes é difícil interpretar os resultados. Além disso, o HRM não detecta a mutação exata em pacientes com mutações não tipo 1 ou tipo 28. Nesses pacientes, deve-se realizar o sequenciamento Sanger(Figura 1).

O HRM baseia-se na amplificação da região específica do DNA na presença de corante fluorescente de DNA saturado, que é incorporado em DNA de dupla cadeia (dsDNA). O corante fluorescente emite luz quando incorporado no dsDNA. Após um aumento progressivo da temperatura, o DSNA se divide em um único DNA encalhado, que pode ser detectado na curva de fusão como uma diminuição repentina da intensidade da fluorescência. A forma da curva de fusão depende da sequência de DNA que é usada para detectar a mutação. Curvas de fusão de amostras são comparadas com curvas de fusão de mutações conhecidas ou tipo selvagem CALR. Curvas de fusão distintas representam uma mutação diferente que não é tipo 1 ou tipo29.

O algoritmo para a detecção de variantes genéticas somáticas no gene CALR por HRM, o método de eletroforese e sequenciamento do gel agarose(Figura 1)foi utilizado e validado no estudo retrospectivo publicado antes do10.

Protocol

O estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética Médica da República da Eslovênia. Todos os procedimentos estavam de acordo com a declaração de Helsinque. 1. Análise quantitativa de PCR (qPCR) e pós-qPCR baseada em fluorescência e análise pós-qPCR pelo HRM Primers resuspend listados na Tabela de Materiais a 100 μM com estéril, RNase e DNase livre H2O (ver Tabela de Materiais). Faça um primer de concentração de trabalho de 10 μM…

Representative Results

A região de interesse do DNA amplificado com sucesso com um aumento exponencial da fluorescência que excede o limiar entre os ciclos 15 e 35 e valores muito estreitos do ciclo de quantificação (Cq) em todas as amostras e controles replicados (Figura 2) é um pré-requisito para a identificação confiável de variantes genéticas pela análise do HRM. Isso é conseguido usando uma determinação precisa do DNA com coloração de fluorescência e uma quantidade igual de DNA no experimento…

Discussion

O derretimento de alta resolução do DNA é uma solução simples para genotipagem e escaneamento de variantesgenéticas 14. Depende de diferenças sequenciais que resultam em heteroduplexes que mudam a forma da curva de fusão. Diferentes tipos de variantes genéticas com frequências diversas podem ser observadas no gene específico para um determinado grupo de pacientes com câncer1,2,15,<s…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores agradecem a todos os especialistas acadêmicos e colaboradores do Laboratório Especializado de Hematologia, Departamento de Hematologia, Divisão de Medicina Interna do Centro Médico Universitário Ljubljana.

Materials

E-Gel EX 4% Agarose Invitrogen, Thermo Fischer Scientific G401004
Fuorometer 3.0 QUBIT Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q33216
Invitrogen E-Gel iBase and E-Gel Safe Imager Combo Kit Invitrogen, Thermo Fischer Scientific G6465EU
MeltDoctor HRM MasterMix 2X Applied Biosystem, Thermo Fischer Scientific 4415440 Components: AmpliTaqGold 360 DNA Polymerase, MeltDoctor trade HRM dye, dNTP blend including dUTP, Magnesium salts and other buffer components, precisely formulated to obtain optimal HRM results
MicroAmp Fast 96-well Reaction Plate (0.1 mL) Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4346907
MicroAmp Optical adhesive film Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4311971
NuGenius Syngene NG-1045 Gel documentation systems
Primer CALRex9 Forward Eurofins Genomics Sequence: 5'GGCAAGGCCCTGAGGTGT'3 (High-Purity, Salt-Free)
Primer CALRex9 Reverse Eurofins Genomics Sequence: 5'GGCCTCAGTCCAGCCCTG'3 (High-Purity, Salt-Free)
QIAamp DNA Mini Kit QIAGEN 51306 DNA isolation kit with the buffer for DNA dilution.
Qubit Assay Tubes Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q32856
QUBIT dsDNA HS assay Invitrogen, Thermo Fischer Scientific Q32854
Trackit 100bp DNA Ladder Invitrogen, Thermo Fischer Scientific 10488058 Ladder consists of 13 individual fragments with the reference bands at 2000, 1500, and 600 bp.
ViiA7 Real-Time PCR System Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific 4453534
Water nuclease free VWR, Life Science 436912C RNase, DNase and Protease free water

References

  1. Nangalia, J., et al. Somatic CALR mutations in myeloproliferative neoplasms with nonmutated JAK2. New England Journal of Medicine. 369, 2391-2405 (2013).
  2. Klampfl, T., et al. Somatic mutations of calreticulin in myeloproliferative neoplasms. New England Journal of Medicine. 369, 2379-2390 (2013).
  3. Vainchenker, W., Kralovics, R. Genetic basis and molecular pathophysiology of classical myeloproliferative neoplasms. Blood. 129, 667-679 (2017).
  4. Pietra, D., et al. Differential clinical effects of different mutation subtypes in CALR-mutant myeloproliferative neoplasms. Leukemia. 30, 431-438 (2016).
  5. Lim, K. H., et al. Rapid and sensitive detection of CALR exon 9 mutations using high-resolution melting analysis. Clinica Chimica Acta. 440, 133-139 (2015).
  6. Lay, M. J., Wittwer, C. T. Real-time fluorescence genotyping of factor V leiden during rapid-cycle PCR. Clinical Chemistry. 43, 2262-2267 (1997).
  7. Vossen, R. H. A. M., Aten, E., Roos, A., Den Dunnen, J. T. High-resolution melting analysis (HRMA) – More than just sequence variant screening. Human Mutation. 30, 860-866 (2009).
  8. Barbui, T., Thiele, J., Vannucchi, A. M., Tefferi, A. Rationale for revision and proposed changes of the WHO diagnostic criteria for polycythemia vera, essential thrombocythemia and primary myelofibrosis. Blood Cancer Journal. 5, 337-338 (2015).
  9. Reed, G. H., Wittwer, C. T. Sensitivity and specificity of single-nucleotide polymorphism scanning by high-resolution melting analysis. Clinical Chemistry. 50, 1748-1754 (2004).
  10. Belcic Mikic, T., Pajic, T., Sever, M. CALR mutations in a cohort of JAK2 V617F negative patients with suspected myeloproliferative neoplasms. Scientific Reports. 9, 19838 (2019).
  11. Invitrogen, Thermo Fischer Scientific. . QubitTM dsDNA HS Assay Kits. Manual (MAN0002326, MP32851, Revision: B.0). , (2015).
  12. Applied Biosystems, Thermo Fisher Scientific. . High Resolution Melt Module for ViiA TM 7 Software v1. Getting Started Guide. Part Number 4443531 Rev. B. , (2011).
  13. Applied Biosystems, Thermo Fischer Scientific. . High-Resolution Melt Analysis for Mutation Scanning Prior to Sequencing. Application Note. , (2010).
  14. Reed, G. H., Kent, J. O., Wittwer, C. T. High-resolution DNA melting analysis for simple and efficient molecular diagnostics. Pharmacogenomics. 8, 597-608 (2007).
  15. Gonzalez-Bosquet, J., et al. Detection of somatic mutations by high-resolution DNA melting (HRM) analysis in multiple cancers. PLoS One. 6, 14522 (2011).
  16. Van Der Stoep, N., et al. Diagnostic guidelines for high-resolution melting curve (HRM) analysis: An interlaboratory validation of BRCA1 mutation scanning using the 96-well LightScanner. Human Mutation. 30, 899-909 (2009).
  17. Singdong, R., et al. Characterization and Prognosis Significance of JAK2 (V617F), MPL, and CALR Mutations in Philadelphia-Negative Myeloproliferative Neoplasms. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention. 17, 4647-4653 (2016).
  18. Erali, M., Wittwer, C. T. High resolution melting analysis for gene scanning. Methods. 50, 250-261 (2010).
  19. Bilbao-Sieyro, C., et al. High Resolution Melting Analysis: A Rapid and Accurate Method to Detect CALR Mutations. PLoS One. 9, 103511 (2014).
  20. Słomka, M., Sobalska-Kwapis, M., Wachulec, M., Bartosz, G., Strapagiel, D. High resolution melting (HRM) for high-throughput genotyping-limitations and caveats in practical case studies. International Journal of Molecular Sciences. 18, 2316 (2017).
  21. Li, X., et al. Comparison of three common DNA concentration measurement methods. Analytical Biochemistry. 451, 18-24 (2014).
  22. Voytas, D. Agarose Gel Electrophoresis. Current Protocols in Immunology. 2, (1992).
  23. Lee, P. Y., Costumbrado, J., Hsu, C. Y., Kim, Y. H. Agarose Gel Electrophoresis for the Separation of DNA Fragments. Journal of Visualized Experiments. , e3923 (2012).
  24. Helling, R. B., Goodman, H. M., Boyer, H. W. Analysis of Endonuclease R·EcoRI Fragments of DNA from Lambdoid Bacteriophages and Other Viruses by Agarose-Gel Electrophoresis. Journal of Virology. , 1235-1244 (1974).

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Cite This Article
Pajič, T., Belčič Mikič, T., Podgornik, H., Klun, J., Šućurović, S., Zver, S., Sever, M. Genetic Variant Detection in the CALR gene using High Resolution Melting Analysis. J. Vis. Exp. (162), e61642, doi:10.3791/61642 (2020).

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