Summary

Etichettatura balistica dei neuroni piramidali nelle sezioni cerebrali e nella cultura cellulare primaria

Published: April 02, 2020
doi:

Summary

Vi presentiamo un protocollo per etichettare e analizzare i neuroni piramidali, che è fondamentale per valutare potenziali alterazioni morfologiche nei neuroni e nelle spine dendritiche che possono essere alla base di anomalie neurochimiche e comportamentali.

Abstract

È stato riferito che le dimensioni e la forma delle spine dendritiche sono legate alla loro plasticità strutturale. Per identificare la struttura morfologica dei neuroni piramidali e delle spine dendritiche, può essere utilizzata una tecnica di etichettatura balistica. Nel protocollo attuale, i neuroni piramidali sono etichettati con dilC18(3) tintura e analizzati utilizzando un software di ricostruzione neuronale per valutare la morfologia neuronale e le spine dendritiche. Per studiare la struttura neuronale, vengono eseguite analisi di ramificamento dendritiche e analisi Sholl, consentendo ai ricercatori di trarre deduzioni rispettivamente sulla complessità della ramificazione dendritica e sulla complessità neuronale del rogo. La valutazione delle spine dendritiche viene condotta utilizzando un algoritmo di classificazione automatica assistita integrale del software di ricostruzione, che classifica le spine in quattro categorie (ad esempio, sottile, fungo, tozzo, filopodia). Inoltre, vengono scelti altri tre parametri (ad esempio, lunghezza, diametro della testa e volume) per valutare le alterazioni nella morfologia della colonna vertebrale dendritica. Per convalidare il potenziale di ampia applicazione della tecnica di etichettatura balistica, i neuroni piramidali della coltura cellulare in vitro sono stati etichettati con successo. Nel complesso, il metodo di etichettatura balistica è unico e utile per visualizzare i neuroni in diverse regioni del cervello nei ratti, che in combinazione con un sofisticato software di ricostruzione, consente ai ricercatori di chiarire i possibili meccanismi alla base disfunzione neurocognitiva.

Introduction

Nel 2000, Gan et al. ha descritto una tecnica di etichettatura rapida per singoli neuroni e glia nel sistema nervoso che combinava vari coloranti lipofilici, consentendo l’etichettatura simultanea di molte cellule cerebrali con colori diversi1,2. Più recentemente, una tecnica di etichettatura balistica è stata descritta da Seabold et al.3 che ha introdotto coloranti fluorescenti (Dil) nei neuroni delle fette cerebrali. Una tecnica di colorazione versatile, l’etichettatura balistica è apprezzata per la sua capacità di essere utilizzata in più specie animali e in un’ampia gamma di età. Inoltre, può essere combinato con l’immunostaining per identificare le sottopopolazioni di cellule cerebrali3. Rispetto alle tecniche tradizionali (ad esempio, impregnazione dell’argento Golgi-Cox, microiniezione)4, l’etichettatura balistica offre l’opportunità di distinguere più chiaramente le caratteristiche morfologiche, tra cui le spine dendritiche, una caratteristica che è fondamentale per trarre deduzioni sulla complessità neuronale e la connettività sinaptica5 .

I neuroni piramidali eccitatori sono caratterizzati da un singolo, grande dendrite apicale, più dendriti basali più brevi e migliaia di spine dendritiche6. I neuroni piramidali si trovano in più regioni del cervello legate all’elaborazione cognitiva di ordine superiore, tra cui la corteccia prefrontale (PFC) e l’ippocampo. Nel PFC, i neuroni piramidali sono osservati negli strati II/III e nello strato V, con ciascuno che mostra una morfologia unica. In particolare, i neuroni piramidali nello strato II/III del PFC hanno un dendrite apicale più breve e meno ramificati rispetto ai neuroni piramidali nello strato V6. All’interno dell’ippocampo, i neuroni piramidali si trovano sia nelle regioni CA1 che IN CA3, ognuna delle quali mostra morfologie distinte. In particolare, i neuroni piramidali nella regione CA1 presentano una dendrite apicale più distintiva, con ramificature più lontane dal soma, rispetto alla regione CA36.

Spine dendritiche sui neuroni piramidali sia nel PFC che nell’ippocampo sono il sito primario di sinapsi eccitatorie7. Le caratteristiche morfologiche delle spine dendritiche, che sono classicamente caratterizzate in tre categorie primarie (cioè sottili, tozze o funghi8), sono state correlate alla dimensione della sinapsi eccitatoria9. Le spine sottili, caratterizzate da un collo lungo e sottile, una piccola testa bulbosa e densità post-sinaptiche più piccole, sono più instabili e sviluppano connessioni più deboli. Tuttavia, le spine di funghi, che hanno una testa dendritica più grande della colonna vertebrale, sono riconosciute per la formazione di connessioni sinaptiche più forti, un effetto derivante dalle loro dimensioni più grandi. In netto contrasto, le spine tozze sono prive di un collo della colonna vertebrale, mostrando un rapporto di volume testa e collo approssimativamente uguale8. All’interno dell’ippocampo, possono anche essere osservate spine ramificate, per cui la colonna vertebrale ha più teste che emergono dallo stesso collo dendritico della colonna vertebrale10. Pertanto, i cambiamenti morfologici delle spine dendritiche potrebbero riflettere la funzionalità e la capacità strutturale. Inoltre, studi hanno dimostrato che le dimensioni e la forma delle spine dendritiche si riferiscono alla loro plasticità strutturale, portando all’idea che piccole spine sono coinvolte nell’apprendimento e nell’attenzione, mentre le spine più grandi e più stabili, sono coinvolte in processi a lungo termine, compresa la memoria11. Inoltre, la distribuzione delle spine dendritiche lungo la dendrite può essere associata alla connettività sinaptica5,12.

Così, l’attuale carta metodologica ha tre obiettivi: 1) Presentare il nostro protocollo per l’etichettatura balistica, che è stato utilizzato con un tasso di successo (cioè neuroni che soddisfano i criteri di selezione e appropriato per l’analisi) di 83.3%5,12,13 e attraverso più regioni del cervello (cioè, PFC, nucleo accumbens, ippocampo); 2) dimostrare la generalizzabilità della tecnica e la sua applicazione ai neuroni cresciuti in vitro; 3) Dettaglio la metodologia utilizzata nel software di ricostruzione neuronale e le deduzioni che possono essere tratte da tali dati.

Protocol

Tutti i protocolli sugli animali sono stati esaminati e approvati dall’Animal Care and Use Committee dell’Università della Carolina del Sud (numero di garanzia federale: D16-00028). 1. Preparazione del tubo di perline DiI/Tungsten Sciogliere 100 mg di polivinylpyrrolidone (PVP) con 10 mL di ddH2O. Vortex la soluzione PVP leggermente. Riempire il tubo con la soluzione PVP (vedere Tabella dei materiali) e lasciarlo per 20 min. Quindi, espellere la…

Representative Results

Nella Figura 2A , i neuroni piramidali tipici nella regione dell’ippocampo nelle sezioni cerebrali del ratto sono stati identificati dalla tecnologia di etichettatura balistica,caratterizzata da una grande dendrite apicale e diversi dendriti basali più piccoli intorno al soma. La figura 2B mostra il neurone nel software di analisi quantitativa della ricostruzione neuronale dopo che il soma è stato rilevato, sono stati tracciati rami dendritici e sono state ril…

Discussion

In questo protocollo, descriviamo una tecnica di etichettatura versatile per i neuroni sia dal cervello del ratto che da quelli cresciuti in vitro. Inoltre, riportiamo la metodologia per l’utilizzo di software di ricostruzione neuronale e software di analisi quantitativa di ricostruzione neuronale per valutare la morfologia neuronale e le spine dendritiche. La valutazione della morfologia neuronale e delle spine dendritiche offre l’opportunità di determinare le alterazioni della complessità della ramificazione dendriti…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Questo lavoro è stato finanziato da NIH sovvenzioni HD043680, MH106392, DA013137, e NS100624.

Materials

20Gx25mm PrecisionGlide needle BD 305175
24-well cell culture plate Costar 3562
35 mm Glass Bottom Dishes MatTek Corporation P35G-1.5-20-C
Antibiotic-Antimycotic solution Cellgro 30004CI 100X
B-27 supplement Life Technologies 17504-044 50X
Barrel liner BIO-RAD 165-2417
Borax Sigma B9876
Boric acid Sigma B0252
Cartridge holder BIO-RAD 165-2426
Confocal imaging software Nikon EZ-C1 version 3.81b
Confocal microscope Nikon TE-2000E
Cover glass VWR 637-137
DilC18(3) Fisher Scientific D282
DMEM/F12 medium Life Technologies 10565-018
Dumont #5 Forceps World Precision Instruments 14095
Dumont #7 Forceps World Precision Instruments 14097
F344 rat (Harlan Laboratories, Indianapolis, IN)
Glucose VWR 101174Y
GlutaMax Life Technologies 35050-061 100X
HBSS Sigma H4641 10X
Helios diffusion screens BIO-RAD 165-2475
Helios gene gun kit BIO-RAD 165-2411
Helios gene gun system BIO-RAD 165-2431
Helium hose assembly BIO-RAD 165-2412
Iris Forceps World Precision Instruments 15914
Iris Scissors World Precision Instruments 500216
Methylene chloride Fisher Scientific D150-1
Neurobasal medium Life Technologies 21103-049
Neurolucida 360 software mbf bioscience dendritic spine analysis
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 158127-500G
Paraformaldehyde Sigma P6148
Poly-L-Lysine Sigma P9155
Polyvinylpyrrolidone Fisher Scientific 5295
ProLong Gold antifade reagent Fisher Scientific P36930 mounting medium
Rat brain matrix, 300 – 600g, Coronal, 0.5mm Ted Pella 15047
Sevoflurane Merritt Veterinary Supply 347075
Sodium Bicarbonate Life Technologies 25080
SuperFrost Plus Slides Fisher Scientific 12-550-154%
Syringe kit BIO-RAD 165-2421
Tefzel tubing BIO-RAD 165-2441
Trypsin-EDTA Life Technologies 15400-054
Tubing cutter BIO-RAD 165-2422
Tubing Prep station BIO-RAD 165-2418
Tungsten M-25 Microcarrier 1.7 µm BIO-RAD 165-2269
Vannas Scissors World Precision Instruments 500086

References

  1. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, W. T., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Multicolor “DiOlistic” labeling of the nervous system using lipophilic dye combinations. Neuron. 27, 219-225 (2000).
  2. Gan, W. B., Grutzendler, J., Wong, R. O., Lichtman, J. W. Ballistic delivery of dyes for structural and functional studies of the nervous system. Cold Spring Harbor Protocol. 2009 (4), 5202 (2009).
  3. Seabold, G. K., Daunais, J. B., Rau, A., Grant, K. A., Alvarez, V. A. DiOLISTIC labeling of neurons from rodent and non-human primate brain slices. Journal of Visualized Experiments. (41), (2010).
  4. Spacek, J. Dynamics of the Golgi method: a time-lapse study of the early stages of impregnation in single sections. Journal of Neurocytology. 18 (1), 27-38 (1989).
  5. McLaurin, K. A., Li, H., Booze, R. M., Mactutus, C. F. Disruption of Timing: NeuroHIV Progression in the Post-cART Era. Science Reports. 9 (1), 827 (2019).
  6. Spruston, N. Pyramidal neurons: dendritic structure and synaptic integration. Nature Reviews Neurosciences. 9 (3), 206-221 (2008).
  7. Megias, M., Emri, Z., Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal CA1 pyramidal cells. Neuroscience. 102, 527-540 (2001).
  8. Peters, A., Kaiserman-Abramof, I. R. The small pyramidal neuron of the rat cerebral cortex. The perikaryon, dendrites and spines. American Journal of Anatomy. 127, 321-355 (1970).
  9. Harris, K. M., Sultan, P. Variation in the number, location, and size of synaptic vesicles provides an anatomical basis for the nonuniform probability of release at hippocampal CA1 synapses. Neuropharmacology. 34, 1387-1395 (1995).
  10. Sorra, K. E., Fiala, J. C., Harris, K. M. Critical assessment of the involvement of perforations, spinules, and spine branching in hippocampal synapse formation. Journal of Comparative Neurology. 398, 225-240 (1998).
  11. Mancuso, J. J., Chen, Y., Li, X., Xue, Z., Wong, S. T. C. Methods of dendritic spine detection: from Golgi to high-resolution optical imaging. Neuroscience. 251, 129-140 (2012).
  12. McLaurin, K. A., et al. Synaptic connectivity in medium spiny neurons of the nucleus accumbens: A sex-dependent mechanism underlying apathy in the HIV-1 transgenic rat. Frontiers in Behavior Neurosciences. 12, 285 (2018).
  13. Roscoe, R. F., Mactutus, C. F., Booze, R. M. HIV-1 transgenic female rat: synaptodendritic alterations of medium spiny neurons in the nucleus accumbens. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 9 (5), 642-653 (2014).
  14. Li, H., Aksenova, M., Bertrand, S. J., Mactutus, C. F., Booze, R. Quantification of Filamentous Actin (F-actin) Puncta in Rat Cortical Neurons. Journal of Visualized Experiments. (108), e53697 (2016).
  15. Rodriguez, A., Ehlenberger, D. B., Dickstein, D. L., Hof, P. R., Wearne, S. L. Automated Three-Dimensional Detection and Shape Classification of Dendritic Spines from Fluorescence Microscopy Images. PLoS ONE. 3 (10), 1371 (2008).

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Cite This Article
Li, H., McLaurin, K. A., Mactutus, C. F., Booze, R. M. Ballistic Labeling of Pyramidal Neurons in Brain Slices and in Primary Cell Culture. J. Vis. Exp. (158), e60989, doi:10.3791/60989 (2020).

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